DE69635241T2 - Grossflächige transplantate aus submucosalem gewebe und verfahren für ihre herstellung - Google Patents

Grossflächige transplantate aus submucosalem gewebe und verfahren für ihre herstellung Download PDF

Info

Publication number
DE69635241T2
DE69635241T2 DE69635241T DE69635241T DE69635241T2 DE 69635241 T2 DE69635241 T2 DE 69635241T2 DE 69635241 T DE69635241 T DE 69635241T DE 69635241 T DE69635241 T DE 69635241T DE 69635241 T2 DE69635241 T2 DE 69635241T2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
tissue
submucosal
submucosal tissue
strips
construct
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
DE69635241T
Other languages
English (en)
Other versions
DE69635241D1 (de
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
METHODIST HEALTH GROUP Inc
Methodist Health Group Inc Indianapolis
Purdue Research Foundation
Original Assignee
METHODIST HEALTH GROUP Inc
Methodist Health Group Inc Indianapolis
Purdue Research Foundation
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by METHODIST HEALTH GROUP Inc, Methodist Health Group Inc Indianapolis, Purdue Research Foundation filed Critical METHODIST HEALTH GROUP Inc
Application granted granted Critical
Publication of DE69635241D1 publication Critical patent/DE69635241D1/de
Publication of DE69635241T2 publication Critical patent/DE69635241T2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/3683Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix subjected to a specific treatment prior to implantation, e.g. decellularising, demineralising, grinding, cellular disruption/non-collagenous protein removal, anti-calcification, crosslinking, supercritical fluid extraction, enzyme treatment
    • A61L27/3691Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix subjected to a specific treatment prior to implantation, e.g. decellularising, demineralising, grinding, cellular disruption/non-collagenous protein removal, anti-calcification, crosslinking, supercritical fluid extraction, enzyme treatment characterised by physical conditions of the treatment, e.g. applying a compressive force to the composition, pressure cycles, ultrasonic/sonication or microwave treatment, lyophilisation
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61FFILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
    • A61F2/00Filters implantable into blood vessels; Prostheses, i.e. artificial substitutes or replacements for parts of the body; Appliances for connecting them with the body; Devices providing patency to, or preventing collapsing of, tubular structures of the body, e.g. stents
    • A61F2/0063Implantable repair or support meshes, e.g. hernia meshes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/37Digestive system
    • A61K35/38Stomach; Intestine; Goblet cells; Oral mucosa; Saliva
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • A61L27/3604Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix characterised by the human or animal origin of the biological material, e.g. hair, fascia, fish scales, silk, shellac, pericardium, pleura, renal tissue, amniotic membrane, parenchymal tissue, fetal tissue, muscle tissue, fat tissue, enamel
    • A61L27/3629Intestinal tissue, e.g. small intestinal submucosa
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00

Description

  • Technisches Gebiet der Erfindung
  • Diese Erfindung betrifft Gewebetransplantatkonstrukte, die zur Förderung des Neuwachstums und der Heilung von beschädigten oder erkrankten Gewebestrukturen brauchbar sind. Spezifischer ist die Erfindung auf submukosale Gewebetransplantatkonstrukte aus mehreren Streifen Submukosagewebe eines warmblütigen Wirbeltiers und auf Verfahren zu deren Herstellung gerichtet.
  • Technischer Hintergrund und Zusammenfassung der Erfindung
  • Es ist bekannt, daß Zusammensetzungen mit Tunica submucosa, die sowohl von der Tunica muscularis als auch von wenigstens dem lumenalen Teil der Tunica mucosa des Darms eines warmblütigen Wirbeltiers abgeschält wurde, als Gewebetransplantat verwendbar sind. Siehe z. B. US 4,902,508 und US 5,281,422 . Die in diesen Patenten beschriebenen Zusammensetzungen sind durch hervorragende mechanische Eigenschaften gekennzeichnet, darunter hohe Nachgiebigkeit, hoher Berstdruck und wirksamer Porositätsindex, weshalb solche Zusammensetzungen vorteilhaft als Gefäßtransplantatkonstrukte und bei Anwendungen zum Bindegewebsersatz verwendet werden können. Beim Gebrauch in solchen Anwendungen scheint das submukosale Transplantatkonstrukt als Matrix für das Neuwachsen der vom Transplantat ersetzten Gewebe zu dienen. Bemerkenswerterweise hat sich auch in über 600 artenverschiedenen Implantationen von Transplantatzusammensetzungen aus Submukosa nie eine Abstoßungsreaktion des Gewebetransplantats gezeigt.
  • Matrizes aus Submukosa zur erfindungsgemäßen Verwendung sind biologisch abbaubare Matrizes auf Kollagenbasis, die hochgradig konservierte Kollagene, Glykoproteine, Proteoglykane und Glykosaminoglykane in natürlicher Konfiguration und Konzentration enthalten. Submukosagewebe eines warmblütigen Wirbeltiers ist eine extrazelluläre Kollagenmatrix zur erfindungsgemäßen Verwendung. Submukosagewebe kann aus verschiedenen Quellen gewonnen werden, beispielsweise aus Darmgewebe von Tieren, die zur Fleischerzeugung gezüchtet werden, darunter Schweine, Rinder und Schafe oder andere warmblütige Wirbeltiere. Submukosagewebe von Wirbeltieren ist ein reichliches Nebenprodukt der gewerblichen Fleischerzeugung und daher ein kostengünstiges Gewebetransplantatmaterial.
  • Eine Beschränkung der in den oben genannten Patenten beschriebenen Submukosatransplantatkonstrukten besteht darin, daß die Größe der Transplantats durch die Größe des Stammaterials, aus dem das Submukosagewebe hergestellt wird, begrenzt ist. Beispielsweise ist die Größe eines aus Darmgewebe hergestellten Submukosatransplantats durch Länge und Umfang der als Quelle dienenden Darmgewebeteile begrenzt. Verschiedene Verwendungen von Transplantatkonstrukten aus Submukosagewebe, darunter Reparatur von Brüchen, Hauttransplantate, Hirnhautabdeckungen, Reparatur der Gastroschisis (angeborener Bauchwanddefekt) und Ersatz von Organgewebe, erfordern oft größere Blätter von Transplantatmaterial als direkt aus natürlichen Quellen hergestellt werden können.
  • Große Blätter Submukosagewebe können aus kleineren Teilen von Submukosagewebe durch herkömmliche Techniken wie Weben, Stricken oder die Verwendung von Klebstoffen hergestellt werden. Die gewerbliche Realisierung solcher Techniken ist jedoch oft unpraktisch und teuer. Zudem kann die Verwendung von Klebstoffen oder die chemische Vorbehandlung zur Steigerung der Adhäsion die biotropen Eigenschaften des Submuko satransplantats verschlechtern. Daher besteht ein Bedürfnis nach einem kostengünstigen, leicht herstellbaren großflächigen Submukosagewebetransplantat, das seine biotropen Eigenschaften behält.
  • Nach einer erfindungsgemäßen Ausführungsform werden großflächige Submukosagewebetransplantate aus mehreren Stücken von Matrizes aus Wirbeltiersubmukosa gebildet. Einheitliche Blätter von Submukosagewebe (d. h. Transplantate aus einem Stück) werden erfindungsgemäß durch Miteinanderverschmelzen von mehreren Streifen Submukosagewebe unter Bildung eines Gewebeblatts mit einer Oberfläche größer als jeder der Submukosagewebe-Teilstreifen hergestellt. Dieser Prozeß umfaßt die Schritte Überlappen zumindest eines Teils eines Streifens Submukosagewebe mit zumindest einem Teil eines anderen Streifens Submukosagewebe und Anwendung von Druck auf zumindest die überlappenden Teile unter Bedingungen, welche die Entwässerung des Submukosagewebes zulassen. Unter diesen Bedingungen werden die überlappenden Teile "verschmolzen" und bilden ein einheitliches großes Gewebeblatt. Das erfindungsgemäß gebildete großflächige Transplantat besteht im Wesentlichen aus Submukosagewebe, frei von möglicherweise verschlechternden Klebstoffen und chemischer Vorbehandlung, und weisen eine größere Fläche und höhere mechanische Festigkeit als die bei der Bildung des Transplantats verwendeten Einzelstreifen auf.
  • Aus Gewebe warmblütiger Wirbeltiere hergestellte Einzelstreifen Submukosagewebe haben richtungsspezifische mechanische Eigenschaften (d. h. die physikalischen Eigenschaften sind längs verschiedener Achsen unterschiedlich). Diese Richtungseigenschaften werden hauptsächlich durch die Ausrichtung des Kollagens im Gewebe bestimmt. Im Darmsubmukosagewebe sind die Kollagenfasern die lastaufnehmenden Bestandteile und diese sind hauptsächlich parallel zur Achse des Darmlumens ausgerichtet. Diese Längsausrichtung des Kollagens im Darmsubmuko sagewebe trägt zur Richtungsabhängigkeit der physikalischen Eigenschaften der Submukosagewebekonstrukte bei.
  • Nach einer erfindungsgemäßen Ausführungsform wird ein einheitliches pseudoisotropes Mehrschicht-Transplantat aus vielen Streifen Submukosagewebe hergestellt. Der hier verwendete Ausdruck "pseudoisotrop" beschreibt ein Transplantat mit annähernd gleichen physikalischen Eigenschaften in jeder Achsenrichtung des Materials. Die erfindungsgemäßen pseudoisotropen Mehrschicht-Transplantate werden aus einzelnen Streifen Submukosagewebe oder aus Blättern von Submukosagewebe, die Streifen von Submukosagewebe enthalten, hergestellt. Das Herstellungsverfahren für die pseudoisotropen Transplantate umfaßt das Überlappen eines Teils eines ersten Streifens (oder Blatts) mit einem zweiten Streifen (oder Blatt), wobei der zweite Streifen (oder das Blatt) in einer zum ersten Streifen (oder Blatt) parallelen Ebene ausgerichtet, aber so gedreht ist, daß die Längsachse des ersten Streifens (oder Blatts) mit der Achse des zweiten Streifens (oder Blatts) einen Winkel bildet. Weitere Streifen (oder Blätter) können in gleicher Weise zugefügt werden, um eine Mehrschichtstruktur mit der gewünschten Anzahl laminierter Schichten zu schaffen. Die einzelnen Streifen (oder Blätter) Submukosa werden dann durch Anwendung von Druck auf wenigstens die überlappenden Teile Submukosagewebe aneinander fixiert und bilden ein einheitliches pseudoisotropes Mehrschichtkonstrukt.
  • Kurze Beschreibung der Zeichnungen
  • 1 ist eine schematische Darstellung eines aus mehreren Streifen Submukosagewebe gebildeten Homolaminat-Transplantats;
  • 2 ist eine schematische Darstellung eines aus vier Streifen Submukosagewebe gebildeten pseudoisotropen Heterolaminat-Transplantats;
  • 3 ist eine schematische Darstellung eines aus drei Blättern Submukosagewebe gebildeten pseudoisotropen Heterolaminat-Transplantats, wobei jedes Blatt aus mehreren Streifen Submukosagewebe gebildet ist; und
  • 4 ist eine schematische Darstellung einer erfindungsgemäß zur Ausbildung von Perforationen in Submukosagewebetransplantaten geeigneten Vorrichtung.
  • Eingehende Beschreibung bevorzugter Ausführungsformen
  • Erfindungsgemäß wird ein Verfahren zur Bildung von Gewebetransplantatkonstrukten mit großflächigen Blättern aus Submukosagewebe bereitgestellt. Ferner gibt die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung von pseudoisotropen Mehrschichtblättern aus Submukosagewebe an. Das Verfahren umfaßt den Schritt des Verschmelzens mehrerer Streifen Submukosagewebe unter Bildung einheitlicher Blätter Submukosagewebe.
  • Für die Verwendung zur Bildung der vorliegenden Transplantatkonstrukte geeignetes Submukosagewebe umfaßt natürlich verknüpfte extrazelluläre Matrixproteine, Glykoproteine und andere Faktoren. Eine Quelle für Submukosagewebe ist Darmgewebe warmblütiger Wirbeltiere. Eine bevorzugte Quelle für Submukosagewebe zur Verwendung in dieser Erfindung ist Dünndarmgewebe.
  • Geeignetes Darmsubmukosagewebe umfaßt typischerweise die sowohl von der Tunica muscularis als auch zumindest vom lumenalen Teil der Tunica mucosa abgeschälte Tunica submucosa. In einer erfindungsgemäßen Ausführungsform umfaßt das Darmsubmukosagewebe die Tunica submucosa und Basisteile der Tunica mucosa einschließlich der Lamina muscularis mucosa und des Stratum compactum. Diese Schichten variieren bekanntermaßen je nach der Wirbeltierart in Dicke und Ausprägung.
  • Die Herstellung des Submukosagewebes zur erfindungsgemäßen Verwendung ist in US 4,902,508 beschrieben. Ein Wirbeltierdarmsegment, bevorzugt von Schweine-, Schaf- oder Rinderarten, jedoch ohne andere Arten auszuschließen, wird der Abtragung durch eine Längswischbewegung zur Entfernung der äußeren, das glatte Muskelgewebe umfassenden Schichten und der innersten Schicht, d. h. des lumenalen Teils der Tunica mucosa, unterworfen. Das Submukosagewebe wird dann mit Salzlösung gespült und ggf. sterilisiert.
  • Die erfindungsgemäßen Mehrschicht-Submukosagewebe-Transplantatkonstrukte können mit herkömmlichen Sterilisationstechniken sterilisiert werden, darunter Glutaraldehydgerbung, Formaldehydgerbung bei saurem pH, Behandlung mit Propylen- oder Ethylenoxid, Gasplasmasterilisation, Gammastrahlung, Elektronenstrahl, Peressigsäuresterilisation. Bevorzugt sind Sterilisationstechniken, welche die mechanische Festigkeit, die Struktur und die biotropen Eigenschaften des Submukosagewebes nicht nachteilig beeinflussen. Beispielsweise kann starke Gammastrahlung bei den Blättern aus Submukosagewebe einen Verlust an Festigkeit verursachen. Zu bevorzugten Sterilisationstechniken gehört Einwirken von Peressigsäure auf das Transplantat, 1–4 Mrad Gammabestrahlung (mehr bevorzugt 1–2,5 Mrad Gammabestrahlung), Behandlung mit Ethylenoxid oder Gasplasmasterilisation; Peressigsäuresterilisation ist das meist bevorzugte Sterilisationsverfahren. Typischerweise wird das Submukosagewebe zwei oder mehreren Sterilisationsprozessen unterworfen. Nach der Sterilisation des Submukosagewebes, beispielsweise durch chemische Behandlung, kann es in einen Umschlag aus Kunststoff oder Folie eingeschlagen und erneut mit Elektronen- oder Gammastrahlen sterilisiert werden.
  • Das Submukosagewebe kann in hydratisiertem oder entwässertem Zustand gelagert werden. Gefrier- oder luftgetrocknetes Submukosagewebe kann wieder befeuchtet und ohne wesentlichen Verlust seiner biotropen und mechanischen Eigenschaften erfindungsgemäß verwendet werden.
  • Bei einer erfindungsgemäßen Ausführungsform werden großflächige nachgiebige Blätter aus Submukosagewebe aus vielen Streifen Submukosagewebe gebildet. Die Abmessungen der einzelnen Submukosagewebestreifen sind nicht kritisch und der hier verwendete Ausdruck "Submukosagewebestreifen" soll Submukosagewebe von einer oder mehreren Wirbeltierquellen oder -organen in einer großen Vielfalt von Größen und Formen umfassen. In einer Ausführungsform werden die Streifen aus einem abgeschälten Teil Darmgewebe gebildet, das gegebenenfalls, aber bevorzugt, geschnitten und flach ausgelegt wird, um längliche Streifen Submukosagewebe mit zwei allgemein parallelen Seiten und gegenüberliegenden Enden zu bilden. Der hier verwendete Ausdruck "Submukosagewebeblatt" soll Gewebekonstrukte mit mehreren Submukosagewebestreifen umfassen, wobei die Streifen so überlappend übereinandergelegt sind, daß sie ein Konstrukt mit größerer Oberfläche als die jedes der einzelnen für die Bildung dieses Konstrukt verwendeten Streifen bilden. Der Ausdruck "Submukosagewebeschichten" bezieht sich auf die einzelnen Schichten eines Mehrschicht-Submukosagewebekonstrukts.
  • Einheitliche großflächige Submukosagewebeblätter werden erfindungsgemäß durch Überlappen einzelner Submukosagewebestreifen und Anwenden von Druck auf die überlappenden Teile gebildet, wobei die Gewebe miteinander verschmolzen werden. In einer Ausführungsform wird der Druck auf die überlappenden Teile unter Bedingungen angelegt, welche eine Entwässerung des Submukosagewebes zulassen. Die großflächigen Submukosagewebeblätter können entweder als homolaminares oder als heterola minares Blatt gebildet werden. Der hier verwendete Ausdruck "heterolaminar" bezieht sich auf ein Mehrschichtgewebe mit einer an verschiedenen Punkten des einheitlichen Transplantatkonstrukts unterschiedlichen Anzahl von Submukosaschichten, die übereinandergelegt (und verschmolzen) sind. Der hier verwendete Ausdruck "homolaminar" bezieht sich auf ein Mehrschicht-Gewebetransplantatkonstrukt mit einer einheitlichen Anzahl von Submukosaschichten an allen Stellen des einheitlichen Transplantats.
  • In einer Ausführungsform umfaßt das Verfahren zur Bildung großer Submukosagewebeblätter die Schritte Überlappen zumindest eines Teils eines Submukosagewebestreifens mit zumindest einem Teil eines zweiten Submukosagewebestreifens und Anwendung von Druck zumindest auf den überlappenden Teil unter Bedingungen, die eine Entwässerung des Submukosagewebes zulassen. Das Ausmaß der Überlappung zwischen benachbarten Submukosagewebestreifen kann je nach der beabsichtigten Verwendung und den gewünschten Eigenschaften des großflächigen Transplantats verändert werden, vorausgesetzt, daß zumindest ein Teil eines jeden Submukosagewebestreifens mit einem Teil eines anderen Submukosagewebestreifens überlappt. Der angewendete Druck verschmilzt die Submukosagewebestreifen an den überlappenden Teilen miteinander und erzeugt ein nachgiebiges einheitliches heterolaminares Submukosagewebeblatt.
  • In einer anderen Ausführungsform kann ein einheitliches homolaminares Submukosagewebeblatt aus Submukosagewebestreifen hergestellt werden. Das Verfahren zur Bildung des homolaminaren Gewebetransplantatkonstrukts umfaßt die Schritte Bildung einer ersten Submukosagewebeschicht, in der Submukosagewebestreifen auf einer ersten Oberfläche nebeneinander angeordnet sind. Die Submukosagewebestreifen der ersten Schicht sind aneinander angrenzend angeordnet, so daß die Ränder der einzelnen Streifen sich berühren ohne sich wesentlich zu überlap pen. Auf die erste Submukosagewebeschicht wird dann eine zweite Submukosagewebeschicht aufgelegt. Die Submukosagewebestreifen der zweiten Schicht sind ähnlich wie die Submukosagewebestreifen der ersten Schicht aneinander angrenzend angeordnet (d. h. aneinander angrenzend angeordnet, so daß die Ränder der einzelnen Streifen sich berühren ohne sich wesentlich zu überlappen). In einer Ausführungsform sind die Submukosagewebestreifen der zweiten Schicht in derselben Richtung ausgerichtet wie die Submukosagewebestreifen der ersten Schicht, aber gegen die Submukosagewebestreifen der ersten Schicht versetzt, so daß die sich berührenden Ränder der einzelnen Submukosagewebestreifen der ersten Schicht von den Submukosagewebestreifen der zweiten Schicht überbrückt werden (siehe 1). Die Überlappungsteile der Submukosagewebestreifen werden dann zwischen zwei Oberflächen unter Bedingungen, die eine wenigstens teilweise Entwässerung des komprimierten Submukosagewebes zulassen, zusammengedrückt, wobei wenigstens eine der Oberflächen wasserdurchlässig ist.
  • Vorteilhaft bestehen die erfindungsgemäß gebildeten sowohl hetero- als auch homolaminaren großflächigen Blätter im Wesentlichen aus Submukosagewebe, haben erhöhte mechanische Festigkeit und eine größere Oberfläche als jeder der zur Bildung der Submukosablätter verwendeten Einzelstreifen.
  • Submukosagewebe besitzt typischerweise eine innere (lumenale) und eine äußere (ablumenale) Oberfläche. Die lumenale Oberfläche ist die dem Lumen des Quellorgans zugewandte Oberfläche und ist typischerweise in vivo einer inneren Mukosaschicht benachbart, während die ablumenale Oberfläche die vom Lumen des Quellorgans abgewandte Oberfläche der Submukosa und typischerweise in vivo in Kontakt mit glattem Muskelgewebe ist. Mehrere Submukosagewebestreifen können so überlappt werden, daß die ablumenale Oberfläche die lumenale Oberfläche, daß die lumenale Oberfläche die lumenale Oberfläche oder daß die ablumenale Oberfläche die ablumenale Oberfläche eines angrenzenden Submukosagewebestreifens kontaktiert. Alle diese Überlappungskombinationen von Submukosagewebestreifen von demselben oder von verschiedenen Wirbeltieren oder Quellorganen erzeugen erfindungsgemäß bei Kompression zumindest der überlappenden Teile unter Bedingungen, welche eine Entwässerung des Gewebes zulassen, ein großflächiges Submukosagewebeblatt
  • Die erfindungsgemäßen Submukosagewebestreifen können konditioniert werden, wie in US 5,275,826 beschrieben, um die viskoelastischen Eigenschaften des Submukosagewebes zu verändern. Nach einer Ausführungsform wird das von der Tunica muscularis und vom lumenalen Teil der Tunica mucosa abgeschälte Submukosagewebe so konditioniert, daß es eine Dehnung von nicht mehr als 20% aufweist. Das Submukosagewebe wird durch Recken, chemische Behandlung, enzymatische Behandlung oder indem man es anderen Umwelteinflüssen aussetzt konditioniert. In einer Ausführungsform werden Darmsubmukosagewebestreifen durch Recken in Längs- oder Querrichtung so konditioniert, daß sie eine Dehnung von nicht mehr als 20% haben. Die konditionierten Submukosastreifen können erfindungsgemäß zur Bildung von großflächigen Blättern oder Mehrschichtstrukturen verwendet werden. Alternativ kann das Submukosamaterial nach der Bildung von großflächigen Blättern oder Mehrschichtkonstrukten konditioniert werden, um ein Submukosagewebematerial mit einer Dehnung von nicht mehr als 20% zu erzeugen.
  • Während der Bildung der großflächigen Submukosagewebeblätter wird auf die überlappenden Teile durch Zusammendrücken des Submukosagewebes zwischen zwei Oberflächen Druck ausgeübt. Die beiden Oberflächen können aus einer Vielzahl von Materialien und in jeglicher Form ausgebildet sein, je nach der gewünschten Form und Spezifikation des einheitlichen Transplantatkonstrukts. Typischerweise sind die beiden Oberflächen als flache Platten ausgebildet; sie können aber auch andere Formen umfassen wie Siebe, sich gegenüberstehende Zylinder oder Walzen und komplementäre nicht-ebene Flächen. Jede dieser Oberflächen kann ggf. geheizt oder perforiert sein. In bevorzugten Ausführungsformen ist wenigstens eine der Oberflächen wasserdurchlässig. Der hier verwendete Ausdruck wasserdurchlässige Oberfläche schließt mikro- oder makroporöse wasseraufnehmende Oberflächen ein. Makroporöse Materialien umfassen perforierte Platten oder Netze aus Kunststoff, Metall, Keramik oder Holz.
  • Nach einer Ausführungsform wird das Submukosagewebe zusammengedrückt, indem man die überlappenden Submukosagewebestreifen auf eine erste Oberfläche legt und eine zweite Oberfläche auf die freiliegende Submukosafläche auflegt. Dann wird eine Kraft angelegt, welche die beiden Oberflächen gegeneinander drückt, wobei das Submukosamaterial zwischen beiden Oberflächen zusammengedrückt wird. Die Druckkraft kann nach jedem dem Fachmann bekannten Verfahren erzeugt werden, einschließlich des Durchführens der Vorrichtung durch ein Paar Quetschwalzen (wobei der Abstand der Oberflächen der Walzen kleiner als der ursprüngliche Abstand zwischen beiden Platten ist), dem Anbringen eines Gewichts auf der oberen Platte und der Verwendung einer hydraulischen Presse oder von atmosphärischem Druck auf die beiden Oberflächen.
  • In einer bevorzugten Ausführungsform werden die Submukosagewebestreifen Bedingungen unterworfen, welche eine Entwässerung des Submukosagewebes gleichzeitig mit der Kompression zulassen. Der Ausdruck "Bedingungen, welche eine Entwässerung des Submukosagewebes zulassen" soll jede mechanische oder Umweltbedingung umfassen, welche zumindest an den Überlappungspunkten das Entfernen des Wassers aus dem Submukosagewebe fördert oder einleitet. Um die Entwässerung des komprimierten Submukosagewebes zu fördern, kann zumindest eine der beiden das Gewebe zusammendrückenden Oberflächen wasserdurchlässig sein. Die Entwässerung des Gewebes kann ggf. durch Anwenden von saugfähigem Material, durch Heizen des Gewebes oder durch Blasen von Luft über das Äußere der beiden komprimierenden Oberflächen weiter gesteigert werden.
  • Die mehreren Submukosagewebestreifen werden typischerweise 12–48 h bei Raumtemperatur komprimiert, obwohl auch Wärme angewendet werden kann. Beispielsweise kann auf das Äußere der komprimierenden Oberflächen eine Heizdecke aufgelegt werden, wodurch die Temperatur des komprimierten Gewebes auf etwa 40 bis etwa 50 °C gesteigert wird. Die Kompressionszeit der überlappenden Teile wird gewöhnlich durch das Ausmaß der Entwässerung des Gewebes bestimmt. Anwendung von Wärme erhöht die Entwässerungsgeschwindigkeit und vermindert so die Zeitdauer, während der die überlappenden Gewebeteile komprimiert werden müssen. Typischerweise wird das Gewebe so lange komprimiert, daß ein steifes, aber flexibles Material entsteht. Ausreichende Entwässerung des Gewebes wird auch durch Anwachsen der Impedanz eines durch das Gewebes fließenden elektrischen Stroms angezeigt. Wenn die Impedanz um 100–200 Ohm angestiegen ist, wurde das Gewebe hinreichend entwässert und der Druck kann aufgehoben werden.
  • Das komprimierte Submukosagewebe kann von den beiden Oberflächen als einheitliches nachgiebiges großflächiges Gewebekonstrukt abgenommen werden. Das Konstrukt kann weiterbehandelt (d. h. geschnitten, gefaltet, genäht usw.) werden, um an unterschiedliche medizinischen Anwendungen, welche das erfindungsgemäße Submukosamaterial benötigen, angepaßt zu sein.
  • Ggf. kann während der Kompression an das Submukosagewebe ein Vakuum angelegt werden. Das angelegte Vakuum verstärkt die Entwässerung das Gewebes und kann die Kompression des Gewebes unterstützen. Alternativ kann das Anlegen des Vakuum die alleinige Kompressionskraft zum Zusammendrücken der überlap penden Teile der Mehrzahl von Submukosagewebestreifen liefern. Beispielsweise wird das überlappende Submukosagewebe zwischen zwei Oberflächen ausgelegt, von denen bevorzugt eine wasserdurchlässig ist. Die Vorrichtung wird mit saugfähigem Material abgedeckt, um Wasser aufzusaugen, und mit einer Entlüftungsfolie (breather blanket), um einen Luftabfluß zu ermöglichen. Die Vorrichtung wird dann in eine Vakuumkammer gestellt und en Vakuum, allgemein zwischen 14 bis 70 Zoll Hg (7–35 psi,48–241 kPa) angelegt. Bevorzugt hat das angelegte Vakuum etwa 51 Zoll Hg (25 psi, 172 kPa). Ggf. kann oben auf die Kammer eine Heizdecke aufgelegt werden, um das Submukosagewebe während der Kompression zu erwärmen. Für diese Ausführungsform geeignete Kammern sind dem Fachmann bekannt und umfassen jede Vorrichtung, die mit einem Vakuumanschluß versehen ist. Die resultierende Abnahme des atmosphärischen Drucks wirkt mit den beiden Oberflächen bei der Kompression und gleichzeitigen Entwässerung des Submukosagewebes zusammen.
  • Ggf. können großflächige Gewebetransplantate in verschiedenen Formen für die Gewebetransplantationsanwendungen gebildet werden. Beispielsweise können für die Anwendung zur Organrekonstruktion die großflächigen Blätter in Form von Halbkugeln oder Taschen ausgebildet werden. Ein solches geformtes Konstrukt ist vorteilhaft beim Ersatz von großen Bereichen der Harnblase oder des Magens. Diese geformten Submukosagewebekonstrukte können mit herkömmlichen Techniken wie Schneiden und Nähen des Gewebes zur gewünschten Form gebracht werden.
  • Alternativ können Submukosagewebestreifen mittels eines einfachen Herstellungsverfahrens zu einem großen Submukosagewebeblatt mit nicht-ebener Form geformt werden. Das Verfahren umfaßt die Schritte Einlegen mehrerer Submukosagewebestreifen zwischen zwei komplementäre nicht-ebene Oberflächen und Zusammendrücken der überlappenden Submukosagewebestreifen zwischen den beiden Oberflächen. Die komplementär geformten Oberflächen sind so geformt, daß die beiden Oberflächen zusammengepreßt werden können, so daß die Oberflächen sich dicht aneinanderlegen, ohne zwischen sich eine wesentliche Luftblase zu lassen. Bevorzugt ist wenigstens eine der beiden komplementären Oberflächen wasserdurchlässig.
  • Ein Verfahren zur Bildung eines geformten Submukosakonstrukts umfaßt das Auflegen mehrerer Submukosagewebestreifen auf eine nicht-eben geformte poröse Oberfläche, so daß das Submukosagewebe sich an den Umriß der porösen Oberfläche anschmiegt. Bevorzugt wird das Submukosagewebe ohne Recken des Materials auf die poröse aufgelegt, jedoch kann das Submukosagewebe gereckt werden, um das Bedecken der geformten porösen Oberfläche zu erleichtern. Jeder Submukosagewebestreifen wird so auf der porösen Oberfläche positioniert, daß er zumindest einen Teil eines benachbarten Submukosagewebestreifens überlappt. Die überlappenden Submukosagewebeteile werden mit einer zur ersten porösen Oberfläche komplementär geformten zweiten Oberfläche bedeckt und es wird Druck angelegt, um das Submukosagewebe zwischen den beiden Oberflächen unter Bedingungen, welche eine Entwässerung des Submukosagewebes zulassen, zusammenzudrücken.
  • Alternativ können die erfindungsgemäßen großflächigen Blätter durch einen Formpreßvorgang in nicht-ebene Gestalt geformt werden, wobei das Submukosagewebe von einem porösen Stempel unter entwässernden Bedingungen in nicht-eben Form gepreßt wird, so daß das geformte Gewebetransplantat seine Form beibehält. Bevorzugt wird in einem solchen Verfahren ein großflächiges Mehrschichtblatt verwendet.
  • Mehrschichtige Submukosagewebekonstrukte werden erfindungsgemäß durch Überlappen eines Teils eines Submukosagewebestreifens mit einem Teil eines anderen Submukosagewebestrei fens gebildet. Auf ähnliche Weise können erfindungsgemäß großflächige Mehrschicht-Gewebetransplantatkonstrukte durch Überlappen eines Submukosagewebeblatts (gebildet wie oben beschrieben) mit zumindest einem Teil eines zweiten Submukosagewebeblatts gebildet werden. Größe und physikalische Eigenschaften des Mehrschicht-Gewebetransplantatkonstrukts können durch die Anzahl der überlappenden Submukosagewebestreifen und den prozentualen Anteil des überlappenden Teils jedes Streifens gesteuert werden.
  • Erfindungsgemäß werden die Mehrschicht-Gewebetransplantatkonstrukte durch Überlappen eines Teils eines Submukosagewebestreifens mit einem Teil eines anderen Submukosagewebestreifens zur Bildung eines ersten Blatts gebildet. Auf die überlappenden Teile des ersten Blatts werden weiter Submukosagewebestreifen zur Bildung eines zweiten Blatts aufgelegt, wobei die Ränder der Streifen des zweiten Blatts ggf. einen spitzen Winkel mit den Streifenrändern des ersten Blatts bilden können und wobei das so gebildete zweite Blatt koplanar mit dem ersten Blatt ist. Die Submukosagewebestreifen des zweiten Blatts können so positioniert werden, daß zumindest ein Teil eines Submukosagewebestreifens des zweiten Blatts mit zumindest einem Teil eines anderen Submukosagewebestreifens des zweiten Blatts überlappt. Um weitere Submukosagewebeschichten bereitzustellen, können weitere Submukosagewebestreifen auf die überlappenden Teile des ersten und zweiten Blatts aufgelegt werden. Die mehreren Submukosagewebeschichten werden dann unter entwässernden Bedingungen komprimiert und bilden ein mehrschichtiges heterolaminares Submukosagewebekonstrukt mit einer Fläche größer jeder der für die Bildung des Mehrschichtkonstrukts verwendeten einzelnen Submukosagewebestreifen.
  • In einer erfindungsgemäßen Ausführungsform wird Submukosagewebe in Streifen geschnitten, wobei jeder Streifen all gemein parallele Seiten hat, und zur Bildung erfindungsgemäßer heterolaminarer Mehrschichtblätter verwendet. Bei dieser Ausführungsform werden die Submukosagewebestreifen der zweiten Schicht auf die überlappenden Teile der ersten Schicht aufgelegt, so daß die Ränder der Submukosastreifen der ersten Schicht in einem Winkel zu den Rändern der Submukosastreifen der zweiten Schicht stehen. Die überlappenden Submukosagewebeteile werden unter entwässernden Bedingungen komprimiert und bilden das heterolaminare Mehrschichtblatt. Diese Blätter können geschnitten werden ohne auszufasern und delaminieren nicht beim Einweichen in Wasser über einen Zeitraum (mehr als eine Stunde), welcher der zum Implantieren des Blatts in einen Wirt benötigten Zeit entspricht. Wenn das Blatt richtig implantiert ist, so daß es an allen Seiten vernäht ist, sollte nach der Implantation keine Delaminierung auftreten.
  • Erfindungsgemäß wird ein Gewebetransplantatkonstrukt mit pseudoisotropen Eigenschaften aus Submukosagewebestreifen gebildet. Die pseudoisotropen Gewebetransplantatkonstrukte umfassen mehrere miteinander verschmolzene Submukosagewebestreifen in einer Mehrschichtstruktur ohne Klebstoffe oder Nähte. Das pseudoisotrope Mehrschicht-Gewebetransplantat wird erfindungsgemäß aus mindestens drei Darmsubmukosagewebestreifen hergestellt, die sowohl von der Tunica muscularis als auch vom lumenalen Teil der Tunica mucosa eines warmblütigen Wirbeltiers abgeschält sind. Jeder der Darmsubmukosagewebestreifen ist durch eine Längsachse gekennzeichnet, welche der vorherrschenden Ausrichtung der Kollagenfasern in den Submukosagewebestreifen entspricht. Das Herstellungsverfahren der pseudoisotropen Transplantatkonstrukte umfaßt das Auflegen eines ersten Submukosagewebestreifens auf eine erste Oberfläche, das Auflegen von zumindest zwei weiteren Submukosagewebestreifen auf den ersten Streifen, so daß die Längsachse eines jeden einzelnen Submukosagewebestreifens einen Winkel von etwa 180°/N mit den Längsachsen von mindestens zwei anderen das he terolaminare Transplantat bildenden Submukosagewebestreifen bildet, wobei N die Gesamtzahl der Submukosagewebestreifen ist (siehe 2). Beispielsweise hat ein aus vier (4) Submukosagewebestreifen gebildetes pseudoisotropes Transplantatkonstrukt einen Winkel von 45° (180°/4 = 45°) zwischen den Mittenlängsachsen eines jeden Streifens und zwei der drei anderen das Transplantatkonstrukt bildenden Streifen (siehe 2). Das Submukosagewebe (zumindest die überlappenden Teile) wird dann zwischen der ersten und der zweiten Oberfläche komprimiert. In einer Ausführungsform wird das Gewebe unter Bedingungen komprimiert, die eine zumindest teilweise Entwässerung des Submukosagewebes zulassen, und in einer bevorzugten Ausführungsform ist mindestens eine der Oberflächen wasserdurchlässig.
  • Großflächige Gewebetransplantatkonstrukte mit pseudoisotropen Eigenschaften können auch aus großflächigen Submukosagewebeblättern hergestellt werden. Diese pseudoisotropen Gewebetransplantatkonstrukte umfassen mehrere Schichten großflächiger Submukosagewebeblätter, wobei diese überlappende Submukosagewebestreifen enthalten. Die überlappende Submukosagewebestreifen enthaltenden Submukosagewebeblätter können als homolaminare oder heterolaminare Gewebekonstrukte gebildet werden, wie in dieser Beschreibung oben beschrieben (siehe 3).
  • Ein Herstellungsverfahren für ein großflächiges Mehrschicht-Gewebetransplantatkonstrukt mit pseudoisotropen Eigenschaften umfaßt das Bilden eines ersten Submukosagewebeblatts aus mehreren Submukosagewebestreifen und das Überlagern des ersten Blatts mit mindestens zwei weiteren Blättern. Die in jedem Blatt enthaltenen einzelnen Submukosagewebestreifen haben eine Längsachse, welche der vorherrschenden Ausrichtung der Kollagenfasern in den Submukosagewebestreifen entspricht. Das erste Blatt wird auf einer ersten Oberfläche gebildet, in dem die einzelnen Submukosagewebestreifen so überlappt werden, daß jeder Streifen mit den angrenzenden Streifen fluchtet und die Längsachse aller Submukosagewebestreifens zueinander parallel sind. Daher sind die Kollagenfasern des ersten Blatts vorherrschend in einer Richtung orientiert, so daß dem Blatt eine Längsachse entsprechend der vorherrschenden Ausrichtung der Kollagenfasern zugeschrieben werden kann.
  • Wie oben beschrieben, können großflächige Submukosagewebeblätter aus überlappendem Submukosagewebe gebildet werden, wobei sie entweder heterolaminare oder homolaminare Submukosagewebeblätter bilden. Sowohl heterolaminare als auch homolaminare Blätter sind zur Bildung der erfindungsgemäßen großflächigen pseudoisotropen Gewebetransplantatkonstrukte geeignet.
  • Nach Auflegen des ersten Submukosagewebeblatts auf die erste Oberfläche werden auf dem ersten Blatt weitere Schichten von Submukosablättern auf die gleiche Weise wie das erste Blatt gebildet (d. h. jedes Submukosagewebeblatt des Multilaminats enthält überlappende Submukosagewebestreifen, wobei die Längsachsen der in jedem Blatt enthaltenen Submukosagewebestreifen im Wesentlichen zueinander parallel sind). Jedes einzelne Blatt ist auf ein anderes Blatt aufgelegt, so daß die Längsachsen der Submukosagewebestreifen des aufgelegten Blatts einen Winkel von etwa 180°/S (S = Gesamtzahl der Submukosagewebeblätter) mit den Längsachsen der Submukosagewebestreifen von mindestens zwei der anderen das Mehrschichtkonstrukt bildenden Blätter bilden. Nach Auflegen aller Blätter werden die Submukosagewebeblätter zwischen einer ersten und einer zweiten Oberfläche unter Bedingungen, welche eine zumindest teilweise Entwässerung des komprimierten Submukosagewebes zulassen, komprimiert. In einer bevorzugten Ausführungsform ist mindestens eine dieser Oberflächen wasserdurchlässig.
  • In einer Ausführungsform werden, nachdem mehrere Submukosagewebestreifen miteinander überlappt wurden, die überlappenden Teile zur Entfernung eingeschlossener Luft und größerer Wassermengen behandelt, bevor die Streifen zu einem einzigen Blatt verschmolzen werden. Im allgemeinen werden Luftblasen und größere Wassermengen durch Anwendung einer über die Oberfläche der überlappenden Teile bewegten Kompressionskraft herausgequetscht. Die Kompressionskraft kann die Form eines über die Oberfläche der überlappenden Teile gerollten Zylinders haben oder alternativ können die überlappenden Teile zwischen zwei oder mehreren Walzen hindurchgeführt werden, wobei der Abstand zwischen den Oberflächen gegenüberliegender Walzen geringer als die Dicke des Submukosablatts ist. Die überlappenden Teile können dann, wenn notwendig, eine weitere Zeit lang unter entwässernden Bedingungen komprimiert werden, um die mehreren Streifen erfindungsgemäß zu einem einzigen Submukosagewebeblatt zu verschmelzen.
  • Die überschüssigen Teile der pseudoisotropen Mehrschicht-Transplantate (d. h. jene Teile des Transplantats mit einer Anzahl Schichten kleiner als N oder S) können nach Bildung des Multilaminats entfernt werden. Ferner können die mechanischen Eigenschaften des Mehrschicht-Submukosamaterials an die Bedürfnisse der medizinischen Anwendung angepaßt werden, indem der Überlappungsprozentsatz zwischen benachbarten Submukosagewebestreifen eingestellt, der Winkel benachbarter Schichten zueinander verändert, die Wasserdurchlässigkeit und/oder die Zusammensetzung der komprimierenden Oberflächen verändert, die Form der Kompressionsflächen ausgewählt und die zur Kompression des überlappenden Submukosagewebes angewandte Kraft verändert wird.
  • Das erfindungsgemäße pseudoisotrope Submukosamaterial kann ferner so abgewandelt werden, daß es eine Vielzahl von Perforationen enthält. Neuere Versuche haben gezeigt, daß der Remodelling-Prozeß bei implantierten Mehrschicht-Submukosagewebe-Transplantatkonstrukten langsamer als bei Submukosagewebetransplantaten mit einer oder zwei Schichten ist. Außerdem neigen Mehrschicht-Submukosagewebe-Transplantatkonstrukte dazu, in Weichteilbereichen (wie den muskulären Körperwänden von Ratten) während der ersten 14 bis 28 Tage nach Implantation Gewebeflüssigkeit in zystenartigen Taschen zwischen benachbarten Schichten anzusammeln. Flüssigkeitstaschen stehen der Wundheilung entgegen, weil sie das Einwachsen von Bindegewebe verzögern, ein für Bakterien förderliches Umfeld darstellen und die Anbringung von natürlichem (eigenem) Körpergewebe, das Heilung und Zugfestigkeit fördert, verhindern.
  • Es wurde gefunden, daß das Perforieren der Mehrschicht-Transplantatkonstrukte die Remodelling-Eigenschaften des Transplantats in vivo und die Adhäsion der Gewebetransplantatschichten aneinander verbessert. Es wird angenommen, daß die Perforationen den Kontakt des Submukosagewebes mit endogenen Flüssigkeiten und Zellen fördert(durch Erhöhung des Oberfläche des implantierten Transplantats) und daß die Perforationen auch als Leitung dienen, wodurch die extrazelluläre Flüssigkeit durch das Transplantat hindurchtreten kann.
  • Erfindungsgemäß bezeichnet der Ausdruck "Perforation" ein Loch, das sich durch das ganze Transplantatkonstrukt erstreckt. Jedoch liegen Gewebetransplantatkonstrukte mit "Löchern", hier als Hohlraum definiert, der in das Gewebe eindringt, sich aber nicht durch das ganze Transplantat erstreckt, ebenfalls im Bereich der vorliegenden Erfindung. Abstand und Größe der Perforationen wie auch ihre Eindringtiefe in das Gewebe können je nach der gewünschten mechanischen Festigkeit, Porosität, Größe und Dicke (Anzahl der Schichten) und anderer sich auf die medizinische Anwendung des Gewebetransplantats beziehenden Faktoren verändert werden. Die Größe der Perforationen reicht von 0,5 bis 3 mm, mehr bevorzugt von 0,6 bis 2 mm. In einer Ausführungsform sind die Perforationen äquidistant mit einem Abstand von 2 bis 20, mehr bevorzugt von 3 bis 7 mm.
  • Typischerweise werden die Perforationen im Submukosagewebe gebildet, während das Gewebe wenigstens teilweise hydratisiert bleibt. Bei den erfindungsgemäßen pseudoisotropen Mehrschicht-Submukosagewebematerialien werden die Perforationen bevorzugt nach Bildung des Mehrschichtkonstrukts hergestellt, wenn das Gewebe auf einen Wassergehalt von etwa 10–20 Gew.-% (10–20% hydratisiert) getrocknet wurde. Die ausreichende Trocknung des Gewebes kann durch Wiegen des frischen Gewebes und Trocknen bis auf 10–20% des Frischgewichts oder durch Impedanzmessung wie oben beschrieben festgestellt werden. Nach der Perforation wird das Submukosagewebe einer Schlußsterilisation unterworfen und gelagert wie oben beschrieben.
  • In einer Ausführungsform können Löcher (die sich nur teilweise durch das Gewebe erstrecken) oder Perforationen auf beiden Seiten des Gewebetransplantats gebildet werden. Zusätzlich kann das Gewebe so abgewandelt werden, daß es sowohl Perforationen als auch Löcher, die sich nur teilweise durch das Gewebe erstrecken, enthält. Ferner kann das Submukosagewebe so modifiziert werden, daß es eine Vielzahl von Löchern aufweist, wobei verschiedene Untergruppen von Löchern sich im Vergleich zu anderen Löchern in unterschiedliche Tiefen in das Gewebe erstrecken. Dies kann beispielsweise erreicht werden, indem man die einzelnen Submukosagewebeschichten vor dem Überlappen zur Bildung des Mehrschichtkonstrukts perforiert. Wenn einige der Schichten nicht perforiert sind oder die Perforationen der einzelnen Schichten nicht fluchten, haben die gebildeten Mehrschichtkonstrukte Löcher, die sich zu unterschiedlicher Tiefe in das Gewebe erstrecken. Bevorzugt wird das Gewebe mit einheitlicher Verteilung über die Gewebetransplantatoberfläche perforiert, wodurch eine Reihe von Löchern gebildet wird, welche eine flüssige Verbindung zwischen einer ersten ebenen Oberfläche zu einer zweiten gegenüberliegenden ebenen Oberfläche des Transplantats ermöglicht.
  • In einer Ausführungsform sind die Perforationen senkrecht zur Oberfläche des Gewebetransplantatkonstrukts ausgebildet, d. h. die Längsachse der Perforation/des Lochs bildet mit der die Oberfläche des Transplantats definierenden Ebene einen Winkel von 90°. Alternativ können die Perforationen so ausgebildet werden, daß die Achse der Perforation nicht senkrecht zur Oberfläche des Transplantats steht (d. h. so daß die zu der die Perforation/das Loch begrenzenden Wand parallele Längsachse einen von 90° verschiedenen Winkel mit der Ebene des Transplantats bildet). Nach einer Ausführungsform sind die Perforationen mit einem Winkel von 45 bis 90° bezüglich der Transplantatoberfläche ausgebildet.
  • Mehrschicht-Gewebetransplantate können geschnitten werden ohne auszufasern und delaminieren nicht beim Einweichen in Wasser über einen Zeitraum (mehr als eine Stunde), welcher der zum Implantieren des Blatts in einen Wirt benötigten Zeit entspricht. Jedoch neigen Mehrschicht-Submukosagewebe-Transplantatkonstrukte dazu, in Weichteilbereichen (wie den muskulären Körperwänden von Ratten) während der ersten 14 bis 28 Tage nach Implantation Gewebeflüssigkeit in zystenartigen Taschen zwischen benachbarten Schichten anzusammeln. Perforationen der erfindungsgemäßen pseudoisotropen Mehrschicht-Transplantatkonstrukte vermindern die Ansammlung von Flüssigkeit zwischen den Schichten des Mehrschichtkonstrukts, indem sie eine Ableitung liefern, durch die Flüssigkeit aus dem Gewebe abfließen kann. Außerdem haben die Perforationen eine "Heftklammer"-Wirkung, welche die Adhäsion der Schichten untereinander verstärkt.
  • Demgemäß bietet das Anbringen von Löchern in Mehrschicht-Gewebetransplantaten über die gesamte oder über ein Teil der Dicke gegenüber nicht perforierten Mehrschichtblättern die folgenden Vorteile:
    • 1. Erhöhter Durchtritt von Flüssigkeiten (einschließlich von Gewebeflüssigkeit) durch das Material und
    • 2. Erhöhte Adhäsionskraft zwischen benachbarten Schichten.
  • Das Submukosagewebe kann mit einer Vielzahl von dem Fachmann bekannten Vorrichtungen perforiert werden. Das zum Perforieren angewandte Verfahren ist nicht kritisch, vorausgesetzt, daß die zusammengesetzte strukturelle Integrität des Submukosagewebes erhalten bleibt.
  • In bevorzugten Ausführungsformen führt die Perforation des Submukosagewebes nicht zur Entfernung wesentlicher Anteile des Gewebes. Beispielsweise werden die Perforationen durch Hindurchpressen eines spitzes festen Gegenstands durch das Gewebe gebildet, wobei während des Einführens des festen Gegenstands das Gewebe zur Seite gedrückt wird, im Gegensatz zum Ausbohren des Materials. Andere Mittel zum Perforieren des Gewebes umfassen die Anwendung des Schießens, von Schneidgeräten, Laserstrahlen oder enzymatischer/chemischer Behandlung.
  • In einer Ausführungsform wird das Submukosagewebe durch Pressen eines Stifts oder einer festen Nadel in/durch das Gewebe perforiert. Typischerweise wird zur Bildung der Perforation eine feste Nadel von 20–23 gauge (0,51–0,58 mm) verwendet. Auf diese Weise wird bei der Bildung der Perforationen keine wesentliche Menge Gewebe entfernt, sondern es wird ein Teil einer jeden Schicht zerrissen und in die benachbarte Schicht gestoßen, wodurch eine Heftklammerwirkung entsteht. Diese "Heftklammer"-Wirkung kann weiter verstärkt werden, wenn man ein Teil der Perforationen von einer Seite des Transplan tats und die restlichen Perforationen von der entgegengesetzten Seite des Transplantats erzeugt.
  • 4 veranschaulicht eine Ausführungsform einer Vorrichtung zum Perforieren der Submukosagewebetransplantatkonstrukte. Die Vorrichtung umfaßt eine Grundplatte (1) und eine Vielzahl in der Grundplatte (1) eingebetteter Edelstahlnadeln (2), die sich durch die Oberfläche der Grundplatte nach außen erstrecken. Die Grundplatte umfaßt Teile aus Epoxy (E) und Delrin (D) und hat eine Länge von 3,2 Zoll (81 mm) eine Breite von 1,85 Zoll (47 mm) und ist 0, 5 Zoll (12,7 mm) dick. Nach dieser Ausführungsform sind die Nadeln (2) im Wesentlichen zueinander parallel und bilden mit der Oberfläche der Grundplatte einen Winkel von 90°. Die Nadeln (2) haben eine Durchmesser von 0,040 Zoll (0,10 mm) und einen gegenseitigen Abstand von 0,264 Zoll (6,7 mm) (Mitte zu Mitte benachbarter Nadeln) mit einem Abstand von 0,4 Zoll (10,2 mm) vom Rand der Vorrichtung und stehen 0,25 Zoll (6,35 mm) aus der Grundplatte hervor. So enthält die Vorrichtung insgesamt 50 Nadeln.
  • Beispiel 1
  • Aus Wirbeltierdarmgewebe wurde nach dem in der US 4,902,508 beschriebenen Verfahren Submukosagewebe hergestellt. Die Submukosagewebestreifen wurden aus einem Abschnitt von Darmgewebe eines warmblütigen Wirbeltiers hergestellt, wobei der Abschnitt die sowohl von der Tunica muscularis als auch von zumindest dem lumenalen Teil der Tunica mucosa abgeschälte Tunica submucosa dieses Darmgewebeabschnitts umfaßte. Der Darmgewebeabschnitt wurde längs der Längsachse des Abschnitts geschnitten und flach ausgelegt. Das Gewebe wurde dann weiter in eine Reihe von Streifen mit allgemein parallelen Seiten geschnitten.
  • Mehrere Submukosagewebestreifen wurden auf einer gelochten Edelstahlplatte von 12 mal 12 Zoll (30,5 mal 30,5 cm) angeordnet, wobei ein Teil eines Submukosagewebestreifens ein Teil des benachbarten Submukosagewebestreifens überlappte. Dann wurde eine zweite gelochte Edelstahlplatte von 12 mal 12 Zoll auf das Submukosagewebe gelegt. Die bei dieser Ausführungsform verwendeten Edelstahlplatten hatten Perforationen von 0,045 Zoll (1,14 mm), gerade mittig (straight center) mit einem Abstand von 0,066 Zoll (1,68 mm) voneinander angeordnet. Ein Gewicht von 50–100 pounds (22,7–45,3 kg) wurde auf die zweite Edelstahlplatte aufgelegt und das Gewebe wurde 24 h bei Zimmertemperatur komprimiert.
  • Beispiel 2
  • Submukosagewebestreifen wurden hergestellt wie in Beispiel 1 beschrieben. Mehrere Submukosagewebestreifen wurden zwischen zwei perforierten Edelstahlplatten ausgelegt, so daß ein Teil eines Submukosagewebestreifens ein Teil des benachbarten Submukosagewebestreifens überlappte. Die Vorrichtung aus "Platte-Submukosa-Platte" wurde auf eine flache Oberfläche gelegt und mit einem saugfähigen Material bedeckt, um das Wasser abzusaugen, und mit einer Entlüftungsfolie, um einen Luftabfluß zu ermöglichen. Die Vorrichtung wurde dann in einen Nylonbeutel eingeschweißt, der einen Vakuumanschluß hatte. Ein Vakuum (größer als 28 Zoll Hg – 950 hPa) wurde angelegt, um die Luft aus dem Vakuumbeutel zu saugen und der sich ergebende Luftdruckabfall komprimierte und entwässerte das Submukosagewebe gleichzeitig. Nach 24 h Anlegen des Vakuums war das erzeugte Blatt feucht und sehr biegsam. Es waren keine Säume der Submukosagewebeschichten sichtbar und die mit der Kugelberstprüfung bestimmte Festigkeit eines Prototypblatts von 8 Dicken war 80 pounds (36,3 kg).
  • Beispiel 3
  • Submukosagewebestreifen wurden wie in Beispiel 1 beschrieben hergestellt. Die Submukosagewebestreifen wurden auf einem Sieb angeordnet, so daß ein eines Submukosagewebestreifens ein Teil eines benachbarten Submukosagewebestreifens überlappte. Nachdem das Sieb mit einer Schicht Submukosagewebe bedeckt war, wurde eine zweite Schicht Submukosagewebe auf die erste Schicht aufgelegt, so daß die Ränder der Submukosastreifen der zweiten Schicht einen Winkel mit den Rändern der Submukosastreifen der ersten Schicht bildeten.
  • Nachdem alle Submukosagewebestreifen auf dem Sieb aufgelegt waren, wurde ein anderes Sieb auf die Submukosagewebeschichten aufgelegt und der "Sieb-Submukosagewebe-Sieb"-Sandwich wurde mit einem Gewicht komprimiert und getrocknet. Das Verfahren ergab ein getrocknetes großflächiges Submukosablatt, das als einheitliches Transplantatkonstrukt vom Sieb abgeschält wurde.
  • Beispiel 4
  • Sterilisation von Submukosagewebe mit Peressigsäure
  • Submukosagewebe wird in eine Peressigsäure/Ethanollösung 2 h bei Zimmertemperatur bei einem Verhältnis von 20:1 oder mehr (ml Peressigsäure:Gramm Submukosagewebe) eingeweicht. Die Peressigsäure/Ethanollösung enthält 4% Ethanol, 0,1% (V/V) Peressigsäure und der Rest ist Wasser. Der 1-proz. Peressigsäurebestandteil ist eine Verdünnung einer 35-proz. Peressigsäure-Vorratslösung, die im Handel erhältlich ist und in Tabelle 1 definiert ist. Bevorzugt wird das Submukosagewebe während des Einweichens in der Peressigsäurelösung auf einer Schüttelmaschine geschüttelt. Nach 2 h wird die Peressigsäurelösung abgegossen und durch die äquivalente Menge Ringer- Laktat-Lösung oder phosphatgepufferter Kochsalzlösung (PBS) ersetzt und (unter Schütteln) 15 min eingeweicht. Das Submukosagewebe wird vier weiteren Waschzyklen mit Ringer-Laktat-Lösung oder PBS unterworfen und dann weitere 15 min mit sterilem Wasser gewaschen.
  • Tabelle 1
    Figure 00270001
  • Sterilisation von Submukosagewebe mit Ethylenoxid
  • Nach Herstellung der Mehrschichtkonstrukte unter sterilen Bedingungen wird das Material verpackt und einem zweiten Sterilisationszyklus (Schlußsterilisation) unterworfen. Das Gewebe kann in Kunststoff verpackt werden, der für Ethylenoxid durchlässig ist und nach Verfahren mit Ethylenoxid sterilisiert werden, die dem Fachmann bekannt sind. Im Wesentlichen wird das verpackte Material dem Ethylenoxid 4 h lang bei 115 °F (46 °C) ausgesetzt. Während der Sterilisation wird das Material mindestens 75 min der 4 h unter 65% relativer Feuchte gehalten. Die hohe Feuchte verstärkt die Aufnahme des Ethylenoxids durch das Gewebe. Nach 4 h werden Ethylenoxid, Ethy lenchlorhydrin und Ethylenglykol mit Stickstoff und Luft ausgespült.
  • Beispiel 5
  • Kugelberstfestigkeitsprüfung mittels Kompressionskäfig und MTS-Zugfestigkeitsprüfer
  • Die Festigkeit von Mehrschicht-Submukosagewebetransplantaten wird unter Anwendung des Zugfestigkeitsprüfers eines Materialprüfsystems (MTS) bestimmt. Das Mehrschicht-Gewebekonstrukt wird in einer Klammer mit vierseitigem Rahmen (Probenklammer) befestigt, um die Spannung über das Gewebekonstrukt gleichmäßig zu verteilen. Die Befestigungshöhe zu Beginn wird so eingestellt, daß das Oberste der Kugel sich unmittelbar unter der Probenebene befindet. Der Griff der Probenklammer wird in seine höchste Lage gehoben, damit die Backen der Klammer die Probe aufnehmen können. Das Submukosagewebekonstrukt wird passend zur Probenklammer geschnitten. Die Öffnung der Klammer hat einen Durchmesser von eindreiviertel Zoll (44,5 mm). Am Umfang der Probe sollte ein Materialüberschuß von einem halben Zoll (12,7 mm) vorhanden sein, damit genügend Klemmfläche gesichert ist. Das Submukosagewebe wird in die Backen der Klammer eingelegt und befestigt, wobei die Klemmkraft durch eine Einstellschraube an der oberen Backe geregelt wird.
  • Das eingeklemmte Submukosagewebe wird dann mit geregelter Geschwindigkeit über eine Metallkugel abwärtsgedrückt, wobei zur Regelung und Messung der auf die Probe wirkenden Kraft eine Schnittstelle mit Zugprüfungssoftware verwendet wird. Die Kraft wird bis zum Bruch der Probe gesteigert. Bruch bedeutet die Höchstbelastung, die dem ersten Erscheinen der Kugel durch sichtbare unnatürliche Diskontinuitäten in der Probenebene entspricht. Falls die höchste Lage vor dem Bruch erreicht wird, greift die Software ein und beendet den Versuch. Die auf dem Microprofiler 458.01 angezeigte Spitzenlast wird aufgezeichnet und die Probe wird entfernt.
  • Beispiel 6
  • Ein Mehrschicht-Gewebetransplantatkonstrukt wurde wie folgt hergestellt:
    Aus Wirbeltierdarm wird eine reichliche Menge Submukosagewebe hergestellt, geschnitten, flach ausgelegt und wie in Beispiel 4 beschrieben mit Peressigsäure desinfiziert (für eine Vorrichtung 10 × 15 cm braucht man etwa 70 g Submukosagewebe). Nach der Sterilisation des Gewebes mit Peressigsäure sollten Gummihandschuhe, Gesichtsmaske und Haarschutz getragen werden, um die Verunreinigung mit organischem Material und Staubteilchen zu minimieren.
  • Submukosagewebestreifen werden auf eine erste Edelstahlplatte mit der gewünschten Ausrichtung aufgelegt. Die verwendeten Edelstahlplatten sind mit runden Perforationen von 0,045 Zoll (1,14 mm) mit gerade ausgerichteten Mittelpunkten (straight centers) gelocht, die 0,066 Zoll (1,68 mm) voneinander entfernt sind. Nach Ausbildung einer Submukosagewebeschicht wird das Submukosagewebe glattgestrichen, um Luftblasen zu entfernen. Weitere Schichten werden aufgelegt bis die Vorrichtung fertig ist. Mit einer Schere wird überschüssiges Material um die Mehrschichtstruktur entfernt. Das Gewicht des Submukosa-Multilaminats wird notiert. Auf das Mehrschichtkonstrukt wird eine zweite Edelstahlplatte (perforiert mit 0,045 Zoll (1,14 mm) runden Perforationen auf geraden Mittelpunkten, 0,066 Zoll (1,68 mm) voneinander entfernt) aufgelegt.
  • Das Mehrschichtkonstrukt kann ggf. "walzengequetscht" werden, um eingeschlossene Luft und Wasser zu entfernen. Zum Walzenquetschen des Materials werden die beiden das Submukosagewebe umgebenden perforierten Metallplatten zwischen zwei Polypropylenblätter (Kimberley Clark, class 100 "Crew Wipe")gelegt und die ganze Anordnung wird zwischen zwei Schichten Nylonverpackungsfolie (ZipVac, Auburn WA) gelegt, die größer als 1' × 1' (305 × 305 mm) sind. Dann wird ein belasteter Zylinder mehrmals (mindestens dreimal) über die Anordnung gerollt.
  • Um das mehrschichtige Submukosagewebetransplantatkonstrukt zu perforieren, wird die Anordnung teilweise auseinandergenommen, um die obere Oberfläche des Gewebetransplantats freizulegen, und unmittelbar auf die oberste Submukosagewebeschicht wird ein Stück Nylonverpackungsfolie aufgelegt. Das mehrschichtige Submukosagewebetransplantatkonstrukt wird dann umgekehrt auf eine Arbeitsfläche aus Polystyrolschaum (Styrofoam) gelegt und die erste Edelstahlplatte wird vorsichtig entfernt. Die freiliegende Submukosaoberfläche wird dann mit einem Stück Nylonverpackungsfolie bedeckt. Dann wird das Gewebetransplantatkonstrukt perforiert und danach die obere Nylonverpackungsfolie entfernt. Das mehrschichtige Submukosagewebetransplantatkonstrukt wird dann wieder umgedreht und auf die gelochte Edelstahlplatte zurückgelegt. Die Nylonverpackungsfolie wird von der oberen Submukosaoberfläche entfernt und eine zweite perforierte Edelstahlplatte auf die Oberseite des mehrschichtigen Submukosagewebetransplantatkonstrukts aufgelegt.
  • Das mehrschichtige Submukosagewebetransplantatkonstrukt wird dann unter entwässernden Bedingungen wie folgt komprimiert:
    Eine Schicht saugfähigen Materials (NuGauze), größer als die perforierten Platten, wird auf eine Tischplatte (oder eine andere glatte Oberfläche) aufgelegt. Die Edelstahlplatten mit dem mehrschichtigen Submukosagewebetransplantatkonstrukt dazwischen wird auf das saugfähige Material gelegt. Eine weitere Schicht saugfähiges Material (etwa von derselben Größe wie die erste Schicht) wird auf die Edelstahlplatten gelegt. Eine Entlüftungsfolie (ZipVac, Auburn, WA) wird auf das saugfähige Material gelegt. Bevorzugt ist die Entlüftungsfolie etwas größer als die von ihr bedeckten Gegenstände.
  • Ggf. können Elektroden in Kontakt mit dem Submukosagewebe angebracht werden, um die Impedanz quer zum Gewebe zu messen. Typischerweise wird das Gewebe solange komprimiert, bis ein steifes aber flexibles Material erzeugt wird. Ausreichende Entwässerung des Materials wird durch einen Anstieg der Impedanz für den das Gewebe durchfließenden elektrischen Strom angezeigt. Wenn die Impedanz um 100–200 Ohm angestiegen ist, wurde das Gewebe hinreichend entwässert und der Druck kann aufgehoben werden.
  • Um die Vorrichtung und das durch Vakuum zu komprimierende Gebiet herum wird auf der Tischplatte eine Einfassung aus doppelt klebendem Band angebracht. Die Schutzfolie wird vom Band abgezogen und ein Stück Nylonverpackungsfolie, das bereits mit einem Düsenanschluß versehen ist, wird auf das vom Klebeband umfaßte Gebiet aufgelegt (siehe 3a und 3b) und am Band fixiert. Die Heizdecke, falls verwendet, und die Vakuumpumpe werden eingeschaltet. Der Beutel wird auf Falten (ggf. glattstreichen) und auf unzureichende Dichtung zwischen Klebeband und Nylonverpackungsfolie (ggf. korrigieren) untersucht. Das Vakuum wird bis zu einem Unterdruck von 25–30 psivac (172–207 kPa) gezogen. Nach Vakuumbehandlung zum gewünschten Feuchtegrad (etwa 24 h) wird die Dichtung des Beutels am Klebeband geöffnet, die Vakuumpumpe ausgeschaltet und das einheitliche perforierte mehrschichtige Submukosagewebetransplantatkonstrukt entnommen. Teile des Gewebetransplan tats, die nicht das gesamte Maß an Überlappung erhalten haben, können mit einer Schere abgeschnitten werden.
  • Beispiel 7
  • Das Submukosagewebetransplantatkonstrukt kann auch nach Bildung des einheitlichen Mehrschichtkonstrukts wie folgt perforiert werden. Das Mehrschichtkonstrukt wird entsprechend Beispiel 3 gebildet. Der Sandwich aus Sieb und Submukosagewebe wurde aus der Trockenvorrichtung entfernt und das Gewebe wurde perforiert. Das Transplantat wurde perforiert, indem an mehreren Stellen der Transplantatoberfläche ein Nagel zwischen die Maschen des Siebs eingeführt und durch das Gewebe gedrückt wurde. Das perforierte Mehrschicht-Submukosagewebe wurde dann quadratisch geschnitten (4 ½ × 4 ½ Zoll; 114 × 114 mm) und zur Identifizierung markiert.
  • Beispiel 8
  • Ein perforiertes pseudoisotropes Laminatkonstrukt wurde wie folgt hergestellt: Submukosagewebestreifen wurden auf einem Drahtsieb in 4 Schichten angeordnet. Die erste Schicht wurde direkt auf dem Sieb abgelegt und die restlichen drei Schichten wurden im Winkel von 45, 90 bzw. 135° relativ zur ersten Schicht daraufgelegt (siehe 2). Ein zweites Sieb wurde auf das Submukosagewebe gelegt und das Gewebe wurde zwischen die Siebe eingelegt und an das Trockengestell angeklammert. Vor dem Gestell wurde ein Ventilator aufgestellt und eingeschaltet. Unter Verwendung des Siebs als Führung wurden Löcher im Schachbrettmuster durch das Gewebe gestanzt (d. h. zum Perforieren wurden die Stellen des Siebs abwechselnd benutzt). Demgemäß erschien das Muster wie folgt:
    Figure 00330001
  • Die Perforation des Gewebes wurde vor Fertigstellung abgebrochen, weil das Submukosagewebe zerriß. Daher wurde das Submukosagewebe 25 min bei hoher Einstellung des Ventilators getrocknet. Dann wurden die restlichen Perforationen entsprechend dem ursprünglichen Muster angebracht.
  • Man ließ das Blatt über Nacht trocknen, entnahm es, schnitt es in Quadrate und etikettierte es zur Identifizierung.

Claims (44)

  1. Gewebetransplantatkonstrukt umfassend eine nachgiebige Lage aus submucosalem Gewebe, welches aus einer Vielzahl von überlappenden Streifen aus submucosalem Gewebe gebildet ist, wobei die nachgiebige Lage aus submucosalem Gewebe einen größeren Oberflächenbereich aufweist als jeder der einzelnen zur Bildung der nachgiebigen Lage aus submucosalem Gewebe verwendeten Streifen.
  2. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 1, wobei die Streifen aus submucosalem Gewebe im Wesentlichen aus der Tunica submucosa, der Muscularis mucosa und dem Stratum compactum der Tunica Mucosa bestehen.
  3. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 1, wobei die Streifen aus submucosalem Darmgewebe konditioniert sind, eine Dehnung von nicht mehr als 20% zu haben.
  4. Verfahren zur Bildung eines unitären homolaminaren Gewebetransplantatkonstrukts aus einer Vielzahl von Streifen aus submucosalem Gewebe, welche von sowohl der Tunica muscularis und dem luminalen Bereich der Tunica mucosa eines warmblütigen Wirbeltieres abgeschält ist, wobei das Konstrukt einen größeren Oberflächenbereich als jeder der einzelnen zur Bildung des Konstruktes verwendeten Streifen aufweist, wobei das Verfahren die Schritte umfasst: Bildung einer ersten Schicht aus submucosalem Gewebe durch Anordnung von Streifen aus submucosalem Gewebe auf einer ersten Oberfläche, wobei die Streifen aus submucosalem Gewebe der ersten Schicht einander benachbart und ohne wesentliche Überlappung untereinander in Kontakt miteinander sind; Überlappung der ersten Schicht aus submucosalem Gewebe mit einer zweiten Schicht aus Streifen aus submucosalem Gewebe, wobei die Streifen aus submucosalem Gewebe der zweiten Schicht benachbart einander und in Kontakt miteinander ohne wesentliche Überlappung untereinander sind, und wobei die Streifen aus submucosalem Gewebe der zweiten Schicht in Bezug auf die submucosalen Streifen der ersten Schicht versetzt sind, so dass wenigstens ein Bereich der kontaktierenden Kanten der individuellen Streifen aus submucosalem Gewebe der ersten Schicht durch Streifen aus submucosalem Gewebe der zweiten Schicht überbrückt sind; und Zusammendrücken der überlappenden Bereiche der Streifen aus submucosalem Gewebe zwischen der ersten Oberfläche und einer zweiten Oberfläche unter Bedingungen, die wenigstens eine teilweise Dehydratation des komprimierten submucosalen Gewebes gestatten.
  5. Verfahren nach Anspruch 4, welches des Weiteren den Schritt der Anwendung eines Vakuums auf das submucosale Gewebe während der Kompression desselben umfasst.
  6. Verfahren nach Anspruch 5, wobei das angewandte Vakuum mit den zwei Oberflächen zusammenwirkt, um das submucosale Gewebe zusammenzudrücken.
  7. Verfahren nach Anspruch 4, welches des Weiteren den Schritt der Anwendung von Wärme auf das submucosale Gewebe während der Kompression desselben umfasst.
  8. Verfahren nach Anspruch 4, wobei wenigstens eine der Ober flächen wasserdurchlässig ist.
  9. Verfahren nach Anspruch 4, wobei die zwei Oberflächen komplementäre nicht planare Oberflächen sind, wobei eine Kompression zwischen den beiden Oberflächen ein Gewebetransplantatkonstrukt erzeugt, welches in eine Form gebracht ist, um mit diesen Oberflächen übereinzustimmen.
  10. Mehrfach laminiertes Gewebetransplantatkonstrukt, welches im Wesentlichen aus submucosalem Darmgewebe besteht, wobei das mehrfach laminierte Konstrukt geformt ist, um pseudoisotrope Eigenschaften aufzuweisen.
  11. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 10, wobei das submucosale Darmgewebe im Wesentlichen aus der Tunica submucosa, der Muscularis mucosa und dem Stratum compactum der Tunica mucosa besteht.
  12. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 10, wobei das submucosale Gewebe konditioniert ist, um eine Dehnung von nicht mehr als 20% aufzuweisen.
  13. Verfahren zur Herstellung eines mehrfach laminierten Gewebetransplantatkonstrukts mit pseudoisotropen Eigenschaften, wobei das Konstrukt aus wenigstens drei Streifen aus submucosalem Darmgewebe gebildet ist, die von sowohl der Tunica muscularis und dem luminalen Bereich der Tunica mucosa eines warmblütigen Wirbeltieres abgeschält ist, wobei jeder Streifen aus submucosalem Darmgewebe eine Längsachse hat, die mit der vorherrschenden Orientierung der Kollagenfasern in den submucosalen Gewebestreifen korrespondiert, wobei das Verfahren die folgenden Schritte aufweist: Übereinanderlegen des ersten Streifens mit wenigstens zwei zusätzlichen Streifen aus submucosalem Gewebe, so dass die Längsachse von jedem der einzelnen Streifen aus submucosalem Gewebe einen Winkel von ungefähr 180°/N mit den Längsachsen von wenigstens zwei anderen Streifen des darüber gelegten submucosalen Gewebes bildet, wobei N = die Gesamtanzahl von Streifen aus submucosalem Gewebe ist; Zusammendrücken von wenigstens der überlappenden Bereiche der Streifen aus submucosalem Gewebe zwischen zwei Oberflächen unter Bedingungen, die eine wenigstens teilweise Dehydratation des zusammengedrückten submucosalen Gewebes ermöglichen.
  14. Verfahren nach Anspruch 13, wobei wenigstens eine der Oberflächen wasserdurchlässig ist.
  15. Verfahren zur Herstellung eines mehrfach laminierten Gewebetransplantatkonstrukts mit pseudoisotropen Eigenschaften, wobei das Konstrukt aus einer Vielzahl von Lagen aus submucosalem Darmgewebe gebildet ist, wobei jede der Lagen überlappende Streifen aus submucosalem Gewebe aufweist, die von sowohl der Tunica muscularis und dem luminalen Bereich der Tunica mucosa eines warmblütigen Wirbeltieres abgeschält sind, wobei jeder der Streifen eine Längsachse aufweist, welche mit der vorherrschenden Orientierung der Kollagenfasern in den submucosalen Gewebestreifen korrespondiert, wobei die Längsachsen der Streifen aus submucosalem Gewebe von jeder Lage im Wesentlichen parallel zueinander angeordnet sind, wobei das Verfahren die folgenden Schritte aufweist: Übereinanderlegen der ersten Schicht aus submucosalem Gewebe mit wenigstens zwei zusätzlichen Lagen aus submucosalem Gewebe, so dass die Längsachsen der Streifen aus submucosalem Gewebe aus einer Lage einen Winkel von ungefähr 180°/S mit den Längsachsen der Streifen aus submucosalem Gewebe von wenigstens zwei der übereinandergelegten Lagen aus submucosalem Gewebe bilden, wobei S = die Gesamtanzahl der Lagen aus submucosalem Gewebe ist; und Zusammendrücken der Lagen aus submucosalem Gewebe zwischen zwei Oberflächen unter Bedingungen, die wenigstens eine teilweise Dehydratation des zusammengedrückten submucosalen Gewebes gestatten.
  16. Verfahren nach Anspruch 15, welches des Weiteren den Schritt der Anwendung eines Vakuums auf das submucosale Gewebe während der Kompression desselben umfasst.
  17. Verfahren nach Anspruch 16, wobei das angewandte Vakuum mit den zwei Oberflächen zusammenwirkt, um das submucosale Gewebe zusammenzudrücken.
  18. Verfahren nach Anspruch 15, welches des Weiteren den Schritt der Anwendung von Wärme auf das submucosale Gewebe während der Kompression desselben umfasst.
  19. Verfahren nach Anspruch 15, wobei wenigstens eine der Oberflächen wasserdurchlässig ist.
  20. Verfahren nach Anspruch 15, wobei die zwei Oberflächen komplementäre nicht Planare Oberflächen sind, wobei die Kompression zwischen den beiden Oberflächen ein Gewebetransplantatkonstrukt erzeugt, welches geformt ist, um mit diesen Oberflächen übereinzustimmen.
  21. Mehrfach laminiertes Gewebetransplantatkonstrukt mit pseudoisotropen Eigenschaften, wobei das Konstrukt aus einer Vielzahl von Lagen aus submucosalem Gewebe gebildet ist, wobei jede der Lagen überlappende Streifen aus submucosalem Gewebe aufweist, wobei jeder der Streifen eine Längsachse hat, die mit der vorherrschenden Orientierung der Kollagenfasern in den submucosalen Gewebestreifen korres pondiert, wobei die Längsachsen der Streifen aus submucosalem Gewebe jeder der jeweiligen Lagen im Wesentlichen parallel zueinander sind.
  22. Mehrfach laminiertes Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 21, wobei die überlappenden Streifen aus submucosalem Gewebe submucosale Gewebestreifen aufweisen, von denen jeder einen Bereich aufweist, der mit einem Bereich eines benachbarten Streifens aus submucosalem Gewebe überlappt ist.
  23. Mehrfach laminiertes Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 21, wobei die überlappenden Streifen aus submucosalem Gewebe eine erste Schicht aus submucosalen Gewebestreifen aufweisen, welche mit einer zweiten Schicht aus submucosalen Gewebestreifen überlagert ist, wobei die Streifen aus submucosalem Gewebe von jeder der jeweiligen Schichten benachbart zu und in Kontakt miteinander ohne wesentliche Überlappung zwischen den benachbarten Streifen aus submucosalem Gewebe angeordnet sind, wobei die Streifen aus submucosalem Gewebe der zweiten Schicht in Bezug auf die submucosalen Streifen der ersten Schicht versetzt sind, so dass wenigstens ein Bereich der Berührungskanten der einzelnen Streifen aus submucosalem Gewebe der ersten Schicht durch die Streifen aus submucosalem Gewebe der zweiten Schicht überbrückt sind.
  24. Transplantat nach Anspruch 21, wobei die Streifen aus submucosalem Gewebe im Wesentlichen aus der Tunica submucosa, der Muscularis mucosa und dem Stratum compactum der Tunica mucosa bestehen.
  25. Transplantat nach Anspruch 21, wobei die Streifen aus submucosalem Darmgewebe konditioniert sind, um eine Dehnung von nicht mehr als 20% aufzuweisen.
  26. Gewebetransplantatmaterial nach Anspruch 21, wobei das submucosale Gewebe die Tunica submucosa und basilares Gewebe der Tunica mucosa aufweist.
  27. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 1, wobei das submucosale Gewebe submucosales Darmgewebe ist.
  28. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 1, wobei das submucosale Gewebe von sowohl der Tunica muscularis und dem luminalen Bereich der Tunica mucosa eines warmblütigen Wirbeltieres abgeschält ist.
  29. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 1, wobei das Konstrukt chemisch behandelt ist.
  30. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 1, wobei das Konstrukt erwärmt ist.
  31. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 29, wobei das Konstrukt erwärmt ist.
  32. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 29, wobei das Konstrukt mit einem chemischen Sterilisierungsmittel behandelt ist.
  33. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 29, wobei das chemisch behandelte Konstrukt eine Dehnung von weniger als 20% aufweist.
  34. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 1, welches für eine Hernie-Wiederherstellung, Hauttransplantation, Hirnhautbedeckung, Gastroschisis-Wiederherstellung oder einen Organgewebeersatz konfiguriert ist.
  35. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 34, welches zur Hernie-Wiederherstellung konfiguriert ist.
  36. Verwendung einer Vielzahl von Streifen aus submucosalem Gewebe mit überlappenden Kanten bei der Herstellung einer unitären mehrfach laminierten nachgiebigen Lage aus submucosalem Gewebe zur Hernie-Wiederherstellung.
  37. Verfahren nach Anspruch 4, welches des Weiteren den Schritt der chemischen Behandlung des Konstrukts umfasst.
  38. Verfahren nach Anspruch 37, welches des Weiteren den Schritt der Erwärmung des Konstrukts umfasst.
  39. Verfahren nach Anspruch 4, wobei das Konstrukt mit einem chemischen Sterilisierungsmittel behandelt ist.
  40. Verfahren nach Anspruch 37, wobei das chemisch behandelte Konstrukt eine Dehnung von weniger als 20% aufweist.
  41. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 10, wobei das submucosale Gewebe submucosales Darmgewebe ist.
  42. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 10, wobei das submucosale Gewebe von sowohl der Tunica muscularis und dem luminalen Bereich der Tunica mucosa eines warmblütigen Wirbeltieres abgeschält ist.
  43. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 21, wobei das submucosale Gewebe submucosales Darmgewebe ist.
  44. Gewebetransplantatkonstrukt nach Anspruch 21, wobei das submucosale Gewebe von sowohl der Tunica muscularis und dem luminalen Bereich der Tunica mucosa eines warmblütigen Wirbeltieres abgeschält ist.
DE69635241T 1995-04-07 1996-04-05 Grossflächige transplantate aus submucosalem gewebe und verfahren für ihre herstellung Expired - Lifetime DE69635241T2 (de)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US418515 1995-04-07
US08/418,515 US5711969A (en) 1995-04-07 1995-04-07 Large area submucosal tissue graft constructs
PCT/US1996/004721 WO1996031226A1 (en) 1995-04-07 1996-04-05 Large area submucosal graft constructs and method for making the same

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE69635241D1 DE69635241D1 (de) 2006-02-16
DE69635241T2 true DE69635241T2 (de) 2006-09-28

Family

ID=23658441

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE69635241T Expired - Lifetime DE69635241T2 (de) 1995-04-07 1996-04-05 Grossflächige transplantate aus submucosalem gewebe und verfahren für ihre herstellung

Country Status (10)

Country Link
US (3) US5711969A (de)
EP (1) EP0821590B1 (de)
JP (1) JP3061643B2 (de)
AR (1) AR001564A1 (de)
AT (1) ATE305792T1 (de)
AU (1) AU690455B2 (de)
CA (1) CA2211727C (de)
DE (1) DE69635241T2 (de)
DK (1) DK0821590T3 (de)
WO (1) WO1996031226A1 (de)

Families Citing this family (367)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE10237531A1 (de) * 2002-08-16 2004-02-26 Tutogen Medical Gmbh Implantat
US6334872B1 (en) 1994-02-18 2002-01-01 Organogenesis Inc. Method for treating diseased or damaged organs
US6485723B1 (en) * 1995-02-10 2002-11-26 Purdue Research Foundation Enhanced submucosal tissue graft constructs
US20020095218A1 (en) 1996-03-12 2002-07-18 Carr Robert M. Tissue repair fabric
US5788625A (en) * 1996-04-05 1998-08-04 Depuy Orthopaedics, Inc. Method of making reconstructive SIS structure for cartilaginous elements in situ
US5755791A (en) * 1996-04-05 1998-05-26 Purdue Research Foundation Perforated submucosal tissue graft constructs
WO1998006445A1 (en) * 1996-08-16 1998-02-19 Children's Medical Center Corporation Bladder submucosa seeded with cells for tissue reconstruction
US6171344B1 (en) * 1996-08-16 2001-01-09 Children's Medical Center Corporation Bladder submucosa seeded with cells for tissue reconstruction
DE69725592T2 (de) * 1996-08-23 2004-08-05 Cook Biotech, Inc., West Lafayette Verfahren zur gewinnung einer gereignigten matrix auf kollagenbasis aus submukosa gewebe
US8716227B2 (en) * 1996-08-23 2014-05-06 Cook Biotech Incorporated Graft prosthesis, materials and methods
US6666892B2 (en) * 1996-08-23 2003-12-23 Cook Biotech Incorporated Multi-formed collagenous biomaterial medical device
WO1998010775A1 (en) * 1996-09-16 1998-03-19 Purdue Research Foundation Composition and method for repairing neurological tissue
EP1430899B1 (de) * 1996-09-16 2010-07-07 Purdue Research Foundation Gewebetransplantat aus der Magensubmukosa zur Reparatur neurologischen Gewebes
US6096347A (en) * 1996-11-05 2000-08-01 Purdue Research Foundation Myocardial graft constructs
AU5520898A (en) * 1996-12-10 1998-07-03 Purdue Research Foundation Stent with reduced thrombogenicity
CA2274033C (en) * 1996-12-10 2010-05-11 Purdue Research Foundation Biomaterial derived from vertebrate liver tissue
EP1671604B1 (de) * 1996-12-10 2009-07-22 Purdue Research Foundation Ventil aus synthetischem Gewebe
JP4074666B2 (ja) * 1996-12-10 2008-04-09 クック バイオテック、インク. 精製粘膜下組織からの管状移植片
AU774634B2 (en) * 1996-12-10 2004-07-01 Purdue Research Foundation Tubular submucosal graft constructs
WO1999015095A1 (en) 1997-09-24 1999-04-01 Depuy Orthopaedics, Inc. Acl fixation pin and method
ATE424147T1 (de) * 1998-06-05 2009-03-15 Organogenesis Inc Biotechnisch erzeugte gefässprothese für die implantation
EP1083843A4 (de) * 1998-06-05 2005-06-08 Organogenesis Inc Biotechnisch hergestelltes gefässimplantat
ATE423577T1 (de) * 1998-06-05 2009-03-15 Organogenesis Inc Biologisch modellierte implantierbare prothesen
MXPA00012062A (es) * 1998-06-05 2003-04-22 Organogenesis Inc Protesis biodisenadas de injerto de hoja plana.
US6458109B1 (en) * 1998-08-07 2002-10-01 Hill-Rom Services, Inc. Wound treatment apparatus
US6918396B1 (en) 1998-12-01 2005-07-19 Purdue Research Foundation Method for vocal cord reconstruction
ATE410119T1 (de) * 1998-12-01 2008-10-15 Univ Washington Vorrichtung zur intravaskulären embolisierung
US8882850B2 (en) * 1998-12-01 2014-11-11 Cook Biotech Incorporated Multi-formed collagenous biomaterial medical device
AU4316399A (en) * 1998-12-01 2000-06-19 Cook Biotech, Inc. A multi-formed collagenous biomaterial medical device
US20020165611A1 (en) 1998-12-22 2002-11-07 Robert-Jan Enzerink Graft material convenience package
US7185657B1 (en) 1999-04-07 2007-03-06 Johnson George M Method and device for treating gastroesophageal reflux disease
US6338345B1 (en) 1999-04-07 2002-01-15 Endonetics, Inc. Submucosal prosthesis delivery device
WO2001010355A1 (en) * 1999-08-06 2001-02-15 Cook Biotech Incorporated Tubular graft construct
US6824533B2 (en) 2000-11-29 2004-11-30 Hill-Rom Services, Inc. Wound treatment apparatus
US6764462B2 (en) 2000-11-29 2004-07-20 Hill-Rom Services Inc. Wound treatment apparatus
US6576265B1 (en) * 1999-12-22 2003-06-10 Acell, Inc. Tissue regenerative composition, method of making, and method of use thereof
US6579538B1 (en) 1999-12-22 2003-06-17 Acell, Inc. Tissue regenerative compositions for cardiac applications, method of making, and method of use thereof
US20040043006A1 (en) * 2002-08-27 2004-03-04 Badylak Stephen F. Tissue regenerative composition
DE60041611D1 (de) 1999-12-22 2009-04-02 Acell Inc Zusammensetzung zur Geweberegeneration
DK1255510T5 (da) 2000-01-31 2009-12-21 Cook Biotech Inc Stentventilklapper
DE60127530T2 (de) 2000-02-03 2007-12-13 Cook Inc., Bloomington Implantierbare vaskuläre vorrichtung
ATE416718T1 (de) 2000-05-04 2008-12-15 Univ Oregon Health & Science Endovaskulärer stent- graft
US20010043943A1 (en) * 2000-05-22 2001-11-22 Coffey Arthur C. Combination SIS and vacuum bandage and method
US6638312B2 (en) 2000-08-04 2003-10-28 Depuy Orthopaedics, Inc. Reinforced small intestinal submucosa (SIS)
US8366787B2 (en) 2000-08-04 2013-02-05 Depuy Products, Inc. Hybrid biologic-synthetic bioabsorbable scaffolds
EP1320390A2 (de) * 2000-09-18 2003-06-25 Organogenesis Inc. Bioartifizielle flache schichtförmige prothesen und ihre verwendung
US6685681B2 (en) * 2000-11-29 2004-02-03 Hill-Rom Services, Inc. Vacuum therapy and cleansing dressing for wounds
US6855135B2 (en) * 2000-11-29 2005-02-15 Hill-Rom Services, Inc. Vacuum therapy and cleansing dressing for wounds
JP2004529711A (ja) * 2001-05-07 2004-09-30 クロスカート インコーポレイテッド 粘膜下異種移植片
US20060004408A1 (en) * 2001-06-08 2006-01-05 Morris Edward J Method and apparatus for sealing access
US7993365B2 (en) * 2001-06-08 2011-08-09 Morris Innovative, Inc. Method and apparatus for sealing access
AU2002320189B2 (en) * 2001-06-28 2007-04-26 Cook Biotech Incorporated Graft prosthesis devices containing renal capsule collagen
WO2003007790A2 (en) * 2001-07-16 2003-01-30 Depuy Products, Inc. Hybrid biologic/synthetic porous extracellular matrix scaffolds
AU2002354915B8 (en) * 2001-07-16 2008-04-17 Depuy Products, Inc. Porous extracellular matrix scaffold and method
US7163563B2 (en) * 2001-07-16 2007-01-16 Depuy Products, Inc. Unitary surgical device and method
EP1416866A4 (de) 2001-07-16 2007-04-18 Depuy Products Inc Vorrichtungen aus natürlich vorkommenden mitteln biologischer herkunft
US7819918B2 (en) * 2001-07-16 2010-10-26 Depuy Products, Inc. Implantable tissue repair device
US7201917B2 (en) * 2001-07-16 2007-04-10 Depuy Products, Inc. Porous delivery scaffold and method
EP1416888A4 (de) * 2001-07-16 2007-04-25 Depuy Products Inc Vorrichtung und verfahren zur regeneration des meniskus
AU2002313694B2 (en) * 2001-07-16 2007-08-30 Depuy Products, Inc. Cartilage repair apparatus and method
EP1416886A4 (de) * 2001-07-16 2007-04-18 Depuy Products Inc Gerüst und verfahren für die knorpelreparatur und regeneration
US8025896B2 (en) * 2001-07-16 2011-09-27 Depuy Products, Inc. Porous extracellular matrix scaffold and method
US8465516B2 (en) * 2001-07-26 2013-06-18 Oregon Health Science University Bodily lumen closure apparatus and method
KR100947468B1 (ko) * 2001-07-26 2010-03-17 쿠크 바이오텍, 인코포레이티드 혈관 폐쇄 부재 및 전달 장치
US20060052821A1 (en) 2001-09-06 2006-03-09 Ovalis, Inc. Systems and methods for treating septal defects
US6776784B2 (en) 2001-09-06 2004-08-17 Core Medical, Inc. Clip apparatus for closing septal defects and methods of use
US6702835B2 (en) 2001-09-07 2004-03-09 Core Medical, Inc. Needle apparatus for closing septal defects and methods for using such apparatus
CA2462877A1 (en) * 2001-10-11 2003-04-17 Hill-Rom Services, Inc. Waste container for negative pressure therapy
DK1438081T3 (da) * 2001-10-26 2008-07-07 Cook Biotech Inc Medicinsk transplantatanordning med mesh mönstret struktur
US7318833B2 (en) 2001-12-19 2008-01-15 Nmt Medical, Inc. PFO closure device with flexible thrombogenic joint and improved dislodgement resistance
EP1467661A4 (de) 2001-12-19 2008-11-05 Nmt Medical Inc Septumverschlusseinrichtung und zugehörige verfahren
US20030118560A1 (en) * 2001-12-20 2003-06-26 Kelly Sheila J. Composite biocompatible matrices
CA2468307A1 (en) * 2001-12-26 2003-07-17 Hill-Rom Services, Inc. Vacuum bandage packing
WO2003057070A2 (en) * 2001-12-26 2003-07-17 Hill-Rom Services Inc. Vented vacuum bandage and method
CA2468309A1 (en) * 2001-12-26 2003-07-17 Robert Petrosenko Wound vacuum therapy dressing kit
WO2003059061A1 (en) * 2002-01-11 2003-07-24 Purdue Research Foundation Biomaterial derived from vertebrate liver tissue
AU2003210510A1 (en) 2002-01-14 2003-07-30 Nmt Medical, Inc. Patent foramen ovale (pfo) closure method and device
US8529956B2 (en) * 2002-03-18 2013-09-10 Carnell Therapeutics Corporation Methods and apparatus for manufacturing plasma based plastics and bioplastics produced therefrom
US20100254900A1 (en) * 2002-03-18 2010-10-07 Campbell Phil G Biocompatible polymers and Methods of use
AU2003220502A1 (en) 2002-03-25 2003-10-13 Nmt Medical, Inc. Patent foramen ovale (pfo) closure clips
WO2003086232A2 (en) 2002-04-10 2003-10-23 Hill-Rom Services, Inc. Access openings in vacuum bandage
US7377928B2 (en) 2002-04-15 2008-05-27 Cook Biotech Incorporated Apparatus and method for producing a reinforced surgical staple line
WO2003092546A2 (en) * 2002-04-30 2003-11-13 Cook Urological Inc. Sling for supporting tissue
AU2003234317B2 (en) 2002-05-02 2009-04-09 Purdue Research Foundation Vascularization enhanced graft constructs
NZ536564A (en) * 2002-05-02 2008-05-30 Purdue Research Foundation Vascularization enhanced graft constructs which comprise a matrix composition consisting of liver basement membrane
AU2003231248B2 (en) 2002-05-02 2009-03-05 Purdue Research Foundation Vascularization enhanced graft constructs
EP1585426A4 (de) * 2002-05-02 2006-09-20 Cook Biotech Inc Mit zellen beimpfte extrazelluläre matrix-transplantate
US20040117004A1 (en) * 2002-05-16 2004-06-17 Osborne Thomas A. Stent and method of forming a stent with integral barbs
US7828839B2 (en) * 2002-05-16 2010-11-09 Cook Incorporated Flexible barb for anchoring a prosthesis
AU2003243334A1 (en) * 2002-05-29 2003-12-19 Cook Incorporated Multi-piece prosthesis deployment apparatus
WO2003101312A1 (en) 2002-06-03 2003-12-11 Nmt Medical, Inc. Device with biological tissue scaffold for intracardiac defect closure
US7431729B2 (en) 2002-06-05 2008-10-07 Nmt Medical, Inc. Patent foramen ovale (PFO) closure device with radial and circumferential support
ATE533433T1 (de) * 2002-06-26 2011-12-15 Cook Medical Technologies Llc Stent-graft befestigung
US20040166169A1 (en) * 2002-07-15 2004-08-26 Prasanna Malaviya Porous extracellular matrix scaffold and method
NZ538071A (en) * 2002-07-16 2007-05-31 Biogentis Inc Method for fusing adjacent layers of living tissue in a multi-layered engineered tissue construct
AU2003265468B2 (en) 2002-08-15 2009-01-08 Cook Medical Technologies Llc Implantable vascular device
US7550004B2 (en) * 2002-08-20 2009-06-23 Cook Biotech Incorporated Endoluminal device with extracellular matrix material and methods
JP2005536275A (ja) 2002-08-21 2005-12-02 ヒル−ロム サービシズ,インコーポレイテッド 創傷閉鎖を防止するための創傷用パッキング
EP1556117A1 (de) 2002-10-25 2005-07-27 NMT Medical, Inc. Expandierbare hülle
US7682392B2 (en) * 2002-10-30 2010-03-23 Depuy Spine, Inc. Regenerative implants for stabilizing the spine and devices for attachment of said implants
US20040093017A1 (en) * 2002-11-06 2004-05-13 Nmt Medical, Inc. Medical devices utilizing modified shape memory alloy
US20040187877A1 (en) * 2002-12-04 2004-09-30 Badylak Stephen F. Method for repair of liver tissue
US20040191226A1 (en) * 2002-12-04 2004-09-30 Badylak Stephen F. Method for repair of body wall
EP1567093B1 (de) * 2002-12-04 2009-01-21 Cook Incorporated Verfahren und vorrichtung zur behandlung bei aortasektion
ES2626981T3 (es) 2002-12-09 2017-07-26 W.L. Gore & Associates, Inc. Dispositivo de cierre septal
US20040176855A1 (en) * 2003-03-07 2004-09-09 Acell, Inc. Decellularized liver for repair of tissue and treatment of organ deficiency
US20040175366A1 (en) * 2003-03-07 2004-09-09 Acell, Inc. Scaffold for cell growth and differentiation
US7658747B2 (en) 2003-03-12 2010-02-09 Nmt Medical, Inc. Medical device for manipulation of a medical implant
US7105001B2 (en) * 2003-05-21 2006-09-12 Mandelbaum Jon A Surgical method and composition utilizing submucosal tissue to prevent incisional hernias
US20040260315A1 (en) * 2003-06-17 2004-12-23 Dell Jeffrey R. Expandable tissue support member and method of forming the support member
EP1644011A1 (de) 2003-06-25 2006-04-12 Stephen F. Badylak Konditionierte matrix-zusammensetzungen zur gewebe-wiederherstellung
WO2005006990A2 (en) 2003-07-14 2005-01-27 Nmt Medical, Inc. Tubular patent foramen ovale (pfo) closure device with catch system
US9861346B2 (en) 2003-07-14 2018-01-09 W. L. Gore & Associates, Inc. Patent foramen ovale (PFO) closure device with linearly elongating petals
US8480706B2 (en) 2003-07-14 2013-07-09 W.L. Gore & Associates, Inc. Tubular patent foramen ovale (PFO) closure device with catch system
DE602004017750D1 (de) 2003-08-19 2008-12-24 Nmt Medical Inc Expandierbarer Schleusenschlauch
GB2424586B (en) 2003-08-25 2008-05-28 Cook Biotech Inc Graft materials containing bioactive substances, and methods for their manufacture
US7645229B2 (en) * 2003-09-26 2010-01-12 Armstrong David N Instrument and method for endoscopic visualization and treatment of anorectal fistula
WO2005032473A2 (en) * 2003-10-02 2005-04-14 Depuy Spine, Inc. Chemical treatment for removing cellular and nuclear material from naturally occurring extracellular matrix-based biomaterials
EP1673037B1 (de) * 2003-10-10 2009-08-26 The Cleveland Clinic Foundation Endoluminale prothese mit verbindbaren modulen
US8043357B2 (en) 2003-10-10 2011-10-25 Cook Medical Technologies Llc Ring stent
AU2004279458B2 (en) * 2003-10-10 2009-12-10 Cook Incorporated Fenestrated stent grafts
EP1682042B1 (de) 2003-10-10 2015-09-02 Cook Medical Technologies LLC Komposit-stentimplantat
US6976679B2 (en) * 2003-11-07 2005-12-20 The Boeing Company Inter-fluid seal assembly and method therefor
US20050273119A1 (en) 2003-12-09 2005-12-08 Nmt Medical, Inc. Double spiral patent foramen ovale closure clamp
JP5080087B2 (ja) * 2004-01-21 2012-11-21 クック メディカル テクノロジーズ エルエルシー 瘻を閉じるための移植可能な移植片
US20050192626A1 (en) 2004-01-30 2005-09-01 Nmt Medical, Inc. Devices, systems, and methods for closure of cardiac openings
US8337545B2 (en) 2004-02-09 2012-12-25 Cook Medical Technologies Llc Woven implantable device
AU2005212334B2 (en) 2004-02-09 2011-06-16 Cook Medical Technologies Llc Stent graft devices having collagen coating
GB2451777B (en) * 2004-02-17 2009-04-08 Cook Biotech Inc Medical devices and methods useful for applying bolster material
JP2007526087A (ja) 2004-03-03 2007-09-13 エヌエムティー メディカル, インコーポレイティッド 中隔オクルーダー用の送達/回収システム
GB2451785B (en) * 2004-03-29 2009-03-25 Cook Biotech Inc Medical graft products with differing regions
DE602005025324D1 (de) * 2004-03-31 2011-01-27 Cook Inc Stentablagevorrichtung
JP2007532153A (ja) * 2004-03-31 2007-11-15 クック インコーポレイテッド Ecmを基材としたグラフト材料
US7244444B2 (en) * 2004-03-31 2007-07-17 Cook Incorporated Graft material, stent graft and method
US9498322B2 (en) * 2004-03-31 2016-11-22 Cook Medical Technologies Llc Multi-portion endoluminal prosthesis
US8216299B2 (en) * 2004-04-01 2012-07-10 Cook Medical Technologies Llc Method to retract a body vessel wall with remodelable material
US20050267524A1 (en) 2004-04-09 2005-12-01 Nmt Medical, Inc. Split ends closure device
US8361110B2 (en) 2004-04-26 2013-01-29 W.L. Gore & Associates, Inc. Heart-shaped PFO closure device
US7569233B2 (en) * 2004-05-04 2009-08-04 Depuy Products, Inc. Hybrid biologic-synthetic bioabsorbable scaffolds
US20050249772A1 (en) * 2004-05-04 2005-11-10 Prasanna Malaviya Hybrid biologic-synthetic bioabsorbable scaffolds
US8308760B2 (en) 2004-05-06 2012-11-13 W.L. Gore & Associates, Inc. Delivery systems and methods for PFO closure device with two anchors
US7842053B2 (en) 2004-05-06 2010-11-30 Nmt Medical, Inc. Double coil occluder
WO2005110240A1 (en) 2004-05-07 2005-11-24 Nmt Medical, Inc. Catching mechanisms for tubular septal occluder
US7704268B2 (en) 2004-05-07 2010-04-27 Nmt Medical, Inc. Closure device with hinges
WO2006014592A1 (en) * 2004-07-07 2006-02-09 Cook Incorporated Graft, stent graft and method for manufacture
US20060029633A1 (en) * 2004-08-03 2006-02-09 Arthrotek, Inc Biological patch for use in medical procedures
US8764848B2 (en) 2004-09-24 2014-07-01 W.L. Gore & Associates, Inc. Occluder device double securement system for delivery/recovery of such occluder device
WO2006050459A2 (en) * 2004-10-28 2006-05-11 Cook Incorporated Methods and systems for modifying vascular valves
US7513866B2 (en) * 2004-10-29 2009-04-07 Depuy Products, Inc. Intestine processing device and associated method
US7905826B2 (en) * 2004-11-03 2011-03-15 Cook Incorporated Methods for modifying vascular vessel walls
US8137382B2 (en) 2004-11-05 2012-03-20 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for coupling anatomical features
US7658751B2 (en) * 2006-09-29 2010-02-09 Biomet Sports Medicine, Llc Method for implanting soft tissue
US7909851B2 (en) 2006-02-03 2011-03-22 Biomet Sports Medicine, Llc Soft tissue repair device and associated methods
US7749250B2 (en) 2006-02-03 2010-07-06 Biomet Sports Medicine, Llc Soft tissue repair assembly and associated method
US9017381B2 (en) 2007-04-10 2015-04-28 Biomet Sports Medicine, Llc Adjustable knotless loops
US8840645B2 (en) 2004-11-05 2014-09-23 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for coupling soft tissue to a bone
US8298262B2 (en) 2006-02-03 2012-10-30 Biomet Sports Medicine, Llc Method for tissue fixation
US7857830B2 (en) * 2006-02-03 2010-12-28 Biomet Sports Medicine, Llc Soft tissue repair and conduit device
US8303604B2 (en) 2004-11-05 2012-11-06 Biomet Sports Medicine, Llc Soft tissue repair device and method
US9801708B2 (en) 2004-11-05 2017-10-31 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for coupling soft tissue to a bone
US8128658B2 (en) 2004-11-05 2012-03-06 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for coupling soft tissue to bone
US8361113B2 (en) 2006-02-03 2013-01-29 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for coupling soft tissue to a bone
US8088130B2 (en) 2006-02-03 2012-01-03 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for coupling soft tissue to a bone
US8118836B2 (en) 2004-11-05 2012-02-21 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for coupling soft tissue to a bone
US7905904B2 (en) 2006-02-03 2011-03-15 Biomet Sports Medicine, Llc Soft tissue repair device and associated methods
US8998949B2 (en) 2004-11-09 2015-04-07 Biomet Sports Medicine, Llc Soft tissue conduit device
US8329202B2 (en) * 2004-11-12 2012-12-11 Depuy Products, Inc. System and method for attaching soft tissue to an implant
WO2006062862A1 (en) * 2004-12-06 2006-06-15 Cook Incorporated Inflatable occlusion devices, methods, and systems
WO2006062976A2 (en) 2004-12-07 2006-06-15 Cook Incorporated Methods for modifying vascular vessel walls
WO2006065644A1 (en) * 2004-12-17 2006-06-22 William A. Cook Australia Pty. Ltd. Stented side branch graft
US7354627B2 (en) * 2004-12-22 2008-04-08 Depuy Products, Inc. Method for organizing the assembly of collagen fibers and compositions formed therefrom
EP1833384B1 (de) * 2004-12-30 2017-08-16 Cook Medical Technologies LLC Invertierende okklusionsvorichtungen und systeme
US20060206139A1 (en) * 2005-01-19 2006-09-14 Tekulve Kurt J Vascular occlusion device
US9138445B2 (en) * 2005-03-09 2015-09-22 Cook Biotech Incorporated Medical graft materials with adherent extracellular matrix fibrous mass
EP1868507A1 (de) 2005-03-18 2007-12-26 NMT Medical, Inc. Riegelelement für pfo-okkludierer
US8197534B2 (en) * 2005-03-31 2012-06-12 Cook Medical Technologies Llc Valve device with inflatable chamber
AU2006270499B2 (en) * 2005-04-29 2011-10-06 Cook Biotech Incorporated Fistula graft with deformable sheet-form material
JP4995811B2 (ja) * 2005-04-29 2012-08-08 クック・バイオテック・インコーポレーテッド 瘻治療用容積式移植片並びに関連の方法及びシステム
WO2006121887A2 (en) * 2005-05-05 2006-11-16 Cook Biotech Incorporated Implantable materials and methods for inhibiting tissue adhesion formation
GB2441098B (en) * 2005-05-16 2010-05-26 Purdue Research Foundation Engineered extracellular matrices
US7897167B2 (en) * 2005-06-21 2011-03-01 Cook Incorporated Implantable graft to close a fistula
US20060292227A1 (en) * 2005-06-23 2006-12-28 Mcpherson Timothy B Extracellular matrix material particles and methods of preparation
US7850985B2 (en) 2005-07-05 2010-12-14 Cook Biotech Incorporated Tissue augmentation devices and methods
US8579936B2 (en) 2005-07-05 2013-11-12 ProMed, Inc. Centering of delivery devices with respect to a septal defect
US9271817B2 (en) * 2005-07-05 2016-03-01 Cook Biotech Incorporated Tissue augmentation devices and methods
WO2007014088A2 (en) * 2005-07-25 2007-02-01 Cook Incorporated Intraluminal prosthesis and stent
WO2007126411A2 (en) 2005-07-28 2007-11-08 Carnegie Mellon University Biocompatible polymers and methods of use
US7595062B2 (en) 2005-07-28 2009-09-29 Depuy Products, Inc. Joint resurfacing orthopaedic implant and associated method
CN1903143A (zh) * 2005-07-29 2007-01-31 广东冠昊生物科技有限公司 生物型人工血管及其制备方法
CN1903144A (zh) * 2005-07-29 2007-01-31 广东冠昊生物科技有限公司 生物型人工韧带及其制备方法
CN100482178C (zh) * 2005-08-04 2009-04-29 广东冠昊生物科技有限公司 带生物膜的血管瘤夹
US20070038299A1 (en) * 2005-08-12 2007-02-15 Arthrotek, Inc Multilayer microperforated implant
US8771340B2 (en) * 2005-08-25 2014-07-08 Cook Medical Technologies Llc Methods and devices for the endoluminal deployment and securement of prostheses
US8470022B2 (en) * 2005-08-31 2013-06-25 Cook Biotech Incorporated Implantable valve
US7846179B2 (en) 2005-09-01 2010-12-07 Ovalis, Inc. Suture-based systems and methods for treating septal defects
US7797056B2 (en) 2005-09-06 2010-09-14 Nmt Medical, Inc. Removable intracardiac RF device
US9259267B2 (en) 2005-09-06 2016-02-16 W.L. Gore & Associates, Inc. Devices and methods for treating cardiac tissue
WO2007064819A2 (en) * 2005-12-02 2007-06-07 Cook Incorporated Devices, systems, and methods for occluding a defect
CN1986001B (zh) * 2005-12-20 2011-09-14 广东冠昊生物科技股份有限公司 生物护创膜
CN1986007B (zh) * 2005-12-20 2011-09-14 广东冠昊生物科技股份有限公司 生物型外科补片
CN1986006A (zh) * 2005-12-20 2007-06-27 广州知光生物科技有限公司 生物型神经导管
CN1985778B (zh) * 2005-12-20 2010-10-13 广东冠昊生物科技股份有限公司 生物型人工角膜
WO2007073566A1 (en) 2005-12-22 2007-06-28 Nmt Medical, Inc. Catch members for occluder devices
US7815923B2 (en) 2005-12-29 2010-10-19 Cook Biotech Incorporated Implantable graft material
EP1965732B1 (de) * 2005-12-29 2010-05-05 Med Institute, Inc. Endoluminale vorrichtung mit einem mechanismus zur proximalen oder distalen befestigung sowie verschluss und verwendungsverfahren dafür
WO2007081530A2 (en) * 2006-01-03 2007-07-19 Med Institute, Inc. Endoluminal medical device for local delivery of cathepsin inhibitors
WO2007084278A2 (en) 2006-01-06 2007-07-26 University Of Pittsburgh-Of The Commonwealth System Of Higher Education Extracellular matrix based gastroesophageal junction reinforcement device
GB2479480B (en) 2006-01-31 2012-03-14 Cook Biotech Inc Fistula grafts and related methods and systems for treating fistulae
US8801783B2 (en) 2006-09-29 2014-08-12 Biomet Sports Medicine, Llc Prosthetic ligament system for knee joint
US8506597B2 (en) 2011-10-25 2013-08-13 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for interosseous membrane reconstruction
US8652171B2 (en) 2006-02-03 2014-02-18 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for soft tissue fixation
US8562645B2 (en) 2006-09-29 2013-10-22 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for forming a self-locking adjustable loop
US8251998B2 (en) * 2006-08-16 2012-08-28 Biomet Sports Medicine, Llc Chondral defect repair
US8562647B2 (en) 2006-09-29 2013-10-22 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for securing soft tissue to bone
US9468433B2 (en) 2006-02-03 2016-10-18 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for forming a self-locking adjustable loop
US10517587B2 (en) 2006-02-03 2019-12-31 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for forming a self-locking adjustable loop
US11259792B2 (en) 2006-02-03 2022-03-01 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for coupling anatomical features
US9271713B2 (en) 2006-02-03 2016-03-01 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for tensioning a suture
US8771352B2 (en) 2011-05-17 2014-07-08 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for tibial fixation of an ACL graft
US8652172B2 (en) 2006-02-03 2014-02-18 Biomet Sports Medicine, Llc Flexible anchors for tissue fixation
US8968364B2 (en) 2006-02-03 2015-03-03 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for fixation of an ACL graft
US8574235B2 (en) 2006-02-03 2013-11-05 Biomet Sports Medicine, Llc Method for trochanteric reattachment
US8597327B2 (en) 2006-02-03 2013-12-03 Biomet Manufacturing, Llc Method and apparatus for sternal closure
US9538998B2 (en) 2006-02-03 2017-01-10 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for fracture fixation
US9078644B2 (en) 2006-09-29 2015-07-14 Biomet Sports Medicine, Llc Fracture fixation device
US11311287B2 (en) 2006-02-03 2022-04-26 Biomet Sports Medicine, Llc Method for tissue fixation
US9149267B2 (en) 2006-02-03 2015-10-06 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for coupling soft tissue to a bone
WO2007115125A2 (en) 2006-03-31 2007-10-11 Nmt Medical, Inc. Deformable flap catch mechanism for occluder device
US8870913B2 (en) 2006-03-31 2014-10-28 W.L. Gore & Associates, Inc. Catch system with locking cap for patent foramen ovale (PFO) occluder
US8551135B2 (en) 2006-03-31 2013-10-08 W.L. Gore & Associates, Inc. Screw catch mechanism for PFO occluder and method of use
GB2437491A (en) * 2006-04-11 2007-10-31 O Pro Mouthguards Mouthguard including projections to improve moulding
EP2007313B1 (de) 2006-04-19 2018-05-16 Cook Medical Technologies, LLC Stentprothese
WO2007136634A1 (en) * 2006-05-16 2007-11-29 Purdue Research Foundation Three dimensional purified collagen matrices
US20070269476A1 (en) * 2006-05-16 2007-11-22 Voytik-Harbin Sherry L Engineered extracellular matrices control stem cell behavior
US9307995B2 (en) * 2006-06-15 2016-04-12 Cook Medical Technologies Llc Methods, systems and devices for the delivery of endoluminal prostheses
AU2007260914B2 (en) * 2006-06-21 2012-11-29 Cook Biotech Incorporated Fistula grafts and related methods and systems useful for treating gastrointestinal fistulae
US8974542B2 (en) 2006-06-27 2015-03-10 University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education Biodegradable elastomeric patch for treating cardiac or cardiovascular conditions
US8535719B2 (en) * 2006-07-07 2013-09-17 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Biohybrid elastomeric scaffolds and methods of use thereof
CN101332314B (zh) * 2008-07-22 2012-11-14 广东冠昊生物科技股份有限公司 生物型关节软骨修补件
US20100023129A1 (en) * 2008-07-22 2010-01-28 Guo-Feng Xu Jawbone prosthesis and method of manufacture
CN101332316B (zh) * 2008-07-22 2012-12-26 广东冠昊生物科技股份有限公司 生物型鼻梁植入体
US8372437B2 (en) 2006-08-17 2013-02-12 Mimedx Group, Inc. Placental tissue grafts
US8021412B2 (en) * 2006-08-18 2011-09-20 William A. Cook Australia Pty. Ltd. Iliac extension with flared cuff
CA2661527C (en) * 2006-08-24 2011-11-01 Wilson-Cook Medical Inc. Devices and methods for occluding a fistula
US8084055B2 (en) * 2006-09-21 2011-12-27 Purdue Research Foundation Collagen preparation and method of isolation
US8500818B2 (en) 2006-09-29 2013-08-06 Biomet Manufacturing, Llc Knee prosthesis assembly with ligament link
US9918826B2 (en) 2006-09-29 2018-03-20 Biomet Sports Medicine, Llc Scaffold for spring ligament repair
US11259794B2 (en) 2006-09-29 2022-03-01 Biomet Sports Medicine, Llc Method for implanting soft tissue
US8672969B2 (en) 2006-09-29 2014-03-18 Biomet Sports Medicine, Llc Fracture fixation device
US8529959B2 (en) 2006-10-17 2013-09-10 Carmell Therapeutics Corporation Methods and apparatus for manufacturing plasma based plastics and bioplastics produced therefrom
AU2007325460B2 (en) * 2006-10-23 2013-09-05 Cook Biotech Incorporated Processed ECM materials with enhanced component profiles
US7871440B2 (en) * 2006-12-11 2011-01-18 Depuy Products, Inc. Unitary surgical device and method
AU2008204786A1 (en) * 2007-01-10 2008-07-17 Cook Biotech Incorporated Implantable devices useful for reinforcing a surgically created stoma
US8343536B2 (en) 2007-01-25 2013-01-01 Cook Biotech Incorporated Biofilm-inhibiting medical products
WO2008109407A2 (en) 2007-03-02 2008-09-12 University Of Pittsburgh-Of The Commonwealth System Of Higher Education Extracellular matrix-derived gels and related methods
US10117977B2 (en) * 2007-03-14 2018-11-06 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Devices and methods for application of reduced pressure therapy
US9005242B2 (en) 2007-04-05 2015-04-14 W.L. Gore & Associates, Inc. Septal closure device with centering mechanism
WO2008124361A2 (en) * 2007-04-06 2008-10-16 Cook Biotech Incorporated Fistula plugs having increased column strength and fistula plug delivery apparatuses and methods
WO2008131167A1 (en) 2007-04-18 2008-10-30 Nmt Medical, Inc. Flexible catheter system
US8591930B2 (en) * 2007-04-27 2013-11-26 Cook Biotech Incorporated Growth factor modified extracellular matrix material preparation and methods for preparation and use thereof
US20080279833A1 (en) * 2007-05-10 2008-11-13 Matheny Robert G Laminate sheet articles for tissue regeneration
WO2008151040A2 (en) * 2007-05-31 2008-12-11 Cook Biotech Incorporated Analgesic coated medical product
US8535349B2 (en) * 2007-07-02 2013-09-17 Cook Biotech Incorporated Fistula grafts having a deflectable graft body portion
US9113851B2 (en) 2007-08-23 2015-08-25 Cook Biotech Incorporated Fistula plugs and apparatuses and methods for fistula plug delivery
CA2736663C (en) 2007-09-07 2018-01-02 Surgical Biologics, Llc. Placental tissue grafts and improved methods of preparing and using the same
US20090069843A1 (en) * 2007-09-10 2009-03-12 Agnew Charles W Fistula plugs including a hydration resistant component
WO2009036250A1 (en) 2007-09-12 2009-03-19 Cook Incorporated Enhanced remodelable materials for occluding bodily vessels and related methods and systems
US20090082816A1 (en) 2007-09-20 2009-03-26 Graham Matthew R Remodelable orthopaedic spacer and method of using the same
WO2009042768A1 (en) * 2007-09-25 2009-04-02 University Of Pittsburgh-Of The Commonwealth System Of Higher Education Triggerably dissolvable hollow fibers for controlled delivery
US9023342B2 (en) 2007-09-27 2015-05-05 Carlos A. Alvarado Tissue grafting method
US20100135964A1 (en) * 2007-09-27 2010-06-03 Alvarado Carlos A Tissue grafting method
US8246590B2 (en) * 2007-10-11 2012-08-21 Spiracur, Inc. Closed incision negative pressure wound therapy device and methods of use
US20090112238A1 (en) * 2007-10-26 2009-04-30 Vance Products Inc., D/B/A Cook Urological Inc. Fistula brush device
JP5214223B2 (ja) * 2007-11-15 2013-06-19 船井電機株式会社 プロジェクタ
US7846199B2 (en) * 2007-11-19 2010-12-07 Cook Incorporated Remodelable prosthetic valve
CA2708615C (en) * 2007-12-10 2019-12-31 Purdue Research Foundation Collagen-based matrices with stem cells
US8679176B2 (en) 2007-12-18 2014-03-25 Cormatrix Cardiovascular, Inc Prosthetic tissue valve
US20090157177A1 (en) * 2007-12-18 2009-06-18 Matheny Robert G Sewing Ring for a Prosthetic Tissue Valve
US8257434B2 (en) 2007-12-18 2012-09-04 Cormatrix Cardiovascular, Inc. Prosthetic tissue valve
US20090157170A1 (en) * 2007-12-18 2009-06-18 Matheny Robert G Trileaflet Semi-Lunar Prosthetic Tissue Valve
CA2912889C (en) 2008-02-14 2018-06-05 Spiracur Inc. Devices and methods for treatment of damaged tissue
US8956378B2 (en) 2008-02-29 2015-02-17 Cook Biotech Incorporated Coated embolization device
US20130165967A1 (en) 2008-03-07 2013-06-27 W.L. Gore & Associates, Inc. Heart occlusion devices
US8709096B2 (en) 2008-04-29 2014-04-29 Proxy Biomedical Limited Tissue repair implant
WO2009137755A2 (en) * 2008-05-09 2009-11-12 University Of Pittsburgh- Commonwealth System Of Higher Education Biologic matrix for cardiac repair
US9295757B2 (en) 2008-06-10 2016-03-29 Cook Biotech Incorporated Quilted implantable graft
CN102056634B (zh) * 2008-06-10 2015-11-25 库克生物科技公司 绗缝植入式移植物
US8118832B1 (en) 2008-06-16 2012-02-21 Morris Innovative, Inc. Method and apparatus for sealing access
JP2011526811A (ja) 2008-07-01 2011-10-20 クック・バイオテック・インコーポレイテッド 漿膜下筋膜を含む分離された細胞外マトリクス材料
ES2829971T3 (es) 2008-09-02 2021-06-02 Tautona Group Lp Hilos de ácido hialurónico y/o derivados de los mismos, métodos para fabricar los mismos y usos de los mismos
WO2010037092A1 (en) 2008-09-29 2010-04-01 University Of Pittsburgh-Of The Commonwealth System Of Higher Education Self-regulating device for modulating inflammation
AU2009324913A1 (en) * 2008-11-25 2010-06-17 Spiracur Inc. Device for delivery of reduced pressure to body surfaces
WO2010071624A1 (en) * 2008-12-19 2010-06-24 C. R. Bard, Inc. Implantable prosthesis
US8361043B2 (en) * 2009-01-07 2013-01-29 Spiracur Inc. Reduced pressure therapy of the sacral region
WO2010091223A1 (en) * 2009-02-06 2010-08-12 David Cheung Biphasic collagen membrane or capsule for guided tissue regeneration
KR20120033299A (ko) * 2009-02-18 2012-04-06 코매트릭스 카디오바스컬라 인코포레이티드 심장 부정맥을 예방하기 위한 조성물 및 방법
US8728045B2 (en) * 2009-03-04 2014-05-20 Spiracur Inc. Devices and methods to apply alternating level of reduced pressure to tissue
EP2410945B1 (de) 2009-03-26 2012-11-21 William A. Cook Australia Pty. Ltd. Stentgraftprothese
US8444614B2 (en) 2009-04-10 2013-05-21 Spiracur, Inc. Methods and devices for applying closed incision negative pressure wound therapy
EP3235525B1 (de) * 2009-04-10 2018-11-07 KCI Licensing, Inc. Geräte zur verabreichung einer vakuum-wundtherapie auf eine geschlossene schnittwunde
CA2760889C (en) 2009-05-06 2017-09-19 Hansa Medical Products, Inc. Self-adjusting medical device
US20100305710A1 (en) 2009-05-28 2010-12-02 Biomet Manufacturing Corp. Knee Prosthesis
US8956389B2 (en) 2009-06-22 2015-02-17 W. L. Gore & Associates, Inc. Sealing device and delivery system
US20120029556A1 (en) 2009-06-22 2012-02-02 Masters Steven J Sealing device and delivery system
US8298586B2 (en) 2009-07-22 2012-10-30 Acell Inc Variable density tissue graft composition
US8652500B2 (en) 2009-07-22 2014-02-18 Acell, Inc. Particulate tissue graft with components of differing density and methods of making and using the same
US8663086B2 (en) * 2009-09-28 2014-03-04 Cook Biotech Incorporated Medical reinforcement graft
AU2010201676B1 (en) 2010-04-23 2010-07-22 Cook Medical Technologies Llc Curve forming stent graft
WO2011150328A1 (en) 2010-05-27 2011-12-01 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Wet-electrospun biodegradable scaffold and uses therefor
US8753322B2 (en) 2010-08-10 2014-06-17 Spiracur Inc. Controlled negative pressure apparatus and alarm mechanism
US8795246B2 (en) 2010-08-10 2014-08-05 Spiracur Inc. Alarm system
WO2012024390A2 (en) 2010-08-17 2012-02-23 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Biohybrid composite scaffold
JP2013536246A (ja) 2010-08-24 2013-09-19 ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニア 心臓治療のための組成物及び方法
EP2525742B1 (de) 2010-10-29 2015-03-18 Cook Medical Technologies LLC System zur verarbeitung medizinischer vorrichtungen und einsatzverfahren dafür
WO2012116372A1 (en) 2011-02-25 2012-08-30 Rosen Richard A Biomaterials for soft and hard tissue repair
AU2011200858B1 (en) 2011-02-28 2012-04-05 Cook Medical Technologies Llc Stent graft with valve arrangement
KR20140026541A (ko) 2011-05-27 2014-03-05 코매트릭스 카디오바스컬라 인코포레이티드 세포외 기질 판막 도관 및 이의 제조 방법
US9549715B2 (en) 2011-08-09 2017-01-24 Cook Regentec Llc Vial useable in tissue extraction procedures
US9770232B2 (en) 2011-08-12 2017-09-26 W. L. Gore & Associates, Inc. Heart occlusion devices
US9357991B2 (en) 2011-11-03 2016-06-07 Biomet Sports Medicine, Llc Method and apparatus for stitching tendons
US9370350B2 (en) 2011-11-10 2016-06-21 Biomet Sports Medicine, Llc Apparatus for coupling soft tissue to a bone
US9357992B2 (en) 2011-11-10 2016-06-07 Biomet Sports Medicine, Llc Method for coupling soft tissue to a bone
US9381013B2 (en) 2011-11-10 2016-07-05 Biomet Sports Medicine, Llc Method for coupling soft tissue to a bone
EP2782535B1 (de) 2011-11-24 2016-10-19 Cook Biotech Incorporated Medizinische modifizierbare transplantate sowie entsprechende vorrichtungen
EP2811939B8 (de) 2012-02-10 2017-11-15 CVDevices, LLC Produkt aus biologischem gewebe für stents und herstellungsverfahren
WO2013158742A2 (en) 2012-04-18 2013-10-24 Cook Biotech Incorporated Surgical grafts, and implements for delivering same
US10828019B2 (en) 2013-01-18 2020-11-10 W.L. Gore & Associates, Inc. Sealing device and delivery system
US20140228937A1 (en) 2013-02-11 2014-08-14 Joshua Krieger Expandable Support Frame and Medical Device
US9757119B2 (en) 2013-03-08 2017-09-12 Biomet Sports Medicine, Llc Visual aid for identifying suture limbs arthroscopically
US9918827B2 (en) 2013-03-14 2018-03-20 Biomet Sports Medicine, Llc Scaffold for spring ligament repair
WO2014168964A1 (en) 2013-04-08 2014-10-16 Asana Medical, Inc. Method and composition for treating inflammatory bowel disease without colectomy
US9861662B2 (en) 2013-07-03 2018-01-09 University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education Bone-derived extra cellular matrix gel
CA2919504A1 (en) 2013-08-01 2015-02-05 Christine BRONIKOWSKI Tissue adjustment implant
CA2923019A1 (en) * 2013-09-02 2015-03-05 Muffin Incorporated Cell-seeded compositions and methods useful for treating bone regions
WO2015031882A1 (en) * 2013-09-02 2015-03-05 Muffin Incorporated Products comprising an extracellular matrix tissue material and osteogenic protein
US9878071B2 (en) 2013-10-16 2018-01-30 Purdue Research Foundation Collagen compositions and methods of use
AU2013254913B1 (en) 2013-11-04 2014-09-25 Cook Medical Technologies Llc Stent graft with valve arrangement
US10136886B2 (en) 2013-12-20 2018-11-27 Biomet Sports Medicine, Llc Knotless soft tissue devices and techniques
US9814571B2 (en) 2014-01-08 2017-11-14 Cook Medical Technologies Llc ECM strip to plug percutaneous heart valve leaks
US10286119B2 (en) 2014-01-24 2019-05-14 University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education Extracellular matrix mesh coating
CN103877619B (zh) * 2014-01-24 2015-10-07 北京大清生物技术有限公司 复合sis组织修复材料及其制备方法
JP6681872B2 (ja) 2014-03-21 2020-04-15 ユニバーシティ オブ ピッツバーグ −オブ ザ コモンウェルス システム オブ ハイヤー エデュケイション 細胞外マトリクス由来最終滅菌ヒドロゲルの調製方法
US9615822B2 (en) 2014-05-30 2017-04-11 Biomet Sports Medicine, Llc Insertion tools and method for soft anchor
US9700291B2 (en) 2014-06-03 2017-07-11 Biomet Sports Medicine, Llc Capsule retractor
US9808230B2 (en) 2014-06-06 2017-11-07 W. L. Gore & Associates, Inc. Sealing device and delivery system
US10039543B2 (en) 2014-08-22 2018-08-07 Biomet Sports Medicine, Llc Non-sliding soft anchor
US10959826B2 (en) 2014-10-16 2021-03-30 Cook Medical Technology LLC Support structure for scalloped grafts
EP3237028B1 (de) 2014-12-22 2021-01-27 Aroa Biosurgery Limited Laminiertes gewebetransplantatprodukt
US9238090B1 (en) 2014-12-24 2016-01-19 Fettech, Llc Tissue-based compositions
US9955980B2 (en) 2015-02-24 2018-05-01 Biomet Sports Medicine, Llc Anatomic soft tissue repair
US9974534B2 (en) 2015-03-31 2018-05-22 Biomet Sports Medicine, Llc Suture anchor with soft anchor of electrospun fibers
WO2016172365A1 (en) 2015-04-21 2016-10-27 Purdue Research Foundation Office Of Technology Commercialization Cell-collagen-silica composites and methods of making and using the same
WO2017049167A1 (en) 2015-09-18 2017-03-23 University Of Pittsburgh-Of The Commonwealth System Of Higher Education Non-gelling soluble extracellular matrix with biological activity
US10173027B2 (en) 2015-10-07 2019-01-08 Cook Medical Technologies Llc Methods, medical devices and kits for modifying the luminal profile of a body vessel
EP3400031A4 (de) * 2016-01-08 2019-08-07 CryoLife, Inc. Transplantatprodukte aus menschlichem plazentagewebe, verfahren und vorrichtungen
AU2017235321A1 (en) 2016-03-14 2018-11-01 Regentys Corporation Method and composition for treating inflammatory Bowel Disease
EP3585313A4 (de) 2017-02-23 2020-12-30 University of Pittsburgh - of The Commonwealth System of Higher Education Zur lebendgeweberegeneration fähige, stentlose biopolymerherzklappe
EP4252842A3 (de) 2017-03-02 2023-10-25 University of Pittsburgh- Of the Commonwealth System of Higher Education Ecm-hydrogel zur behandlung von ösophagealer entzündung
CN110352064B (zh) 2017-03-02 2023-11-10 联邦高等教育系统匹兹堡大学 用于癌症治疗的胞外基质(ecm)水凝胶及其可溶级分
EP3592397A4 (de) 2017-03-06 2020-12-30 Tei Biosciences, Inc. Perforiertes gewebetransplantat
US11739291B2 (en) 2017-04-25 2023-08-29 Purdue Research Foundation 3-dimensional (3D) tissue-engineered muscle for tissue restoration
WO2018204848A1 (en) 2017-05-05 2018-11-08 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education Ocular applications of matrix bound vesicles (mbvs)
WO2019079195A1 (en) 2017-10-16 2019-04-25 University Of Pittsburgh - Of The Commonwealth System Of Higher Education GENETICALLY MODIFIED MESENCHYMAL STEM CELLS FOR USE IN CARDIOVASCULAR PROSTHESES
US11291570B2 (en) 2018-04-27 2022-04-05 Cook Medical Technologies Llc Hybrid stent and delivery system
WO2022146725A1 (en) 2020-12-29 2022-07-07 Acell, Inc. Medical graft devices and methods of making thereof
WO2022146730A1 (en) 2020-12-29 2022-07-07 Acell, Inc. Implantable pouch device and methods of making thereof
US11826490B1 (en) 2020-12-29 2023-11-28 Acell, Inc. Extracellular matrix sheet devices with improved mechanical properties and method of making

Family Cites Families (16)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2127903A (en) * 1936-05-05 1938-08-23 Davis & Geck Inc Tube for surgical purposes and method of preparing and using the same
AT261800B (de) * 1966-08-22 1968-05-10 Braun Internat Gmbh B Verfahren zur Herstellung von röhrenförmigen, glatten bzw. mit einem Gewinde versehenen Gewebe-Blutgefäß-Prothesen
SE444640B (sv) * 1980-08-28 1986-04-28 Bergentz Sven Erik I djur eller menniska implanterbar kerlprotes samt sett for dess framstellning
US5002572A (en) * 1986-09-11 1991-03-26 Picha George J Biological implant with textured surface
US5350583A (en) * 1988-03-09 1994-09-27 Terumo Kabushiki Kaisha Cell-penetrable medical material and artificial skin
US4956178A (en) * 1988-07-11 1990-09-11 Purdue Research Foundation Tissue graft composition
US4902508A (en) * 1988-07-11 1990-02-20 Purdue Research Foundation Tissue graft composition
US5219361A (en) * 1988-09-16 1993-06-15 Clemson University Soft tissue implant with micron-scale surface texture to optimize anchorage
DE69111021T2 (de) * 1990-10-31 1996-01-04 Gendler El Flexible Membrane hergestellt aus organischer Knochenmatrix zum Ausbessern und Wiederherstellen von Knochen.
US5348788A (en) * 1991-01-30 1994-09-20 Interpore Orthopaedics, Inc. Mesh sheet with microscopic projections and holes
US5281422A (en) * 1991-09-24 1994-01-25 Purdue Research Foundation Graft for promoting autogenous tissue growth
US5496372A (en) * 1992-04-17 1996-03-05 Kyocera Corporation Hard tissue prosthesis including porous thin metal sheets
US5275826A (en) * 1992-11-13 1994-01-04 Purdue Research Foundation Fluidized intestinal submucosa and its use as an injectable tissue graft
US5352463A (en) * 1992-11-13 1994-10-04 Badylak Steven F Tissue graft for surgical reconstruction of a collagenous meniscus and method therefor
TW335351B (en) * 1993-08-31 1998-07-01 Depuy Inc Orthopaedic appliance, absorbable orthopaedic appliance, and method for forming an orthopaedic appliance
CA2188563C (en) * 1994-04-29 2005-08-02 Andrew W. Buirge Stent with collagen

Also Published As

Publication number Publication date
US5885619A (en) 1999-03-23
WO1996031226A1 (en) 1996-10-10
US5955110A (en) 1999-09-21
EP0821590B1 (de) 2005-10-05
AU690455B2 (en) 1998-04-23
JPH10506125A (ja) 1998-06-16
US5711969A (en) 1998-01-27
DE69635241D1 (de) 2006-02-16
JP3061643B2 (ja) 2000-07-10
CA2211727A1 (en) 1996-10-10
EP0821590A1 (de) 1998-02-04
DK0821590T3 (da) 2006-05-22
AU5536096A (en) 1996-10-23
EP0821590A4 (de) 2000-05-24
ATE305792T1 (de) 2005-10-15
CA2211727C (en) 2002-02-26
AR001564A1 (es) 1997-11-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69635241T2 (de) Grossflächige transplantate aus submucosalem gewebe und verfahren für ihre herstellung
DE69737285T2 (de) Perforierte Transplantatkonstruktionen aus submukosalem Gewebe
DE69724827T2 (de) Rohrförmige transplantatkonstruktionen aus submucosalem gewebe
DE60016455T2 (de) Chirurgische prothese
DE60225824T2 (de) Medizinisches implantat mit netzartiger struktur
DE60018814T2 (de) Nähbare Membran zur Adhäsionsverhinderung
DE69224847T3 (de) Vorrichtung zum behandeln von gewebeschäden
DE60212311T2 (de) Adhäsionsverhindernde Membranen, Verfahren zur Herstellung eines Kollageneinzelstranges, Verfahren und Vorrichtung zur Herstellung eines Kollagenvliesses
DE60108818T2 (de) Verstärkte Submucosaschicht des Dünndarms
DE69525692T3 (de) Implantierbare Rohrprothese aus Polytetrafluorethylen
DE602004000323T2 (de) Zubereitungen zur Wiederherstellung und Regeneration humaner Dura Mater
DE2631909C2 (de) Synthetische Haut
EP1948260B8 (de) Verbundmaterial, insbesondere für die medizinische anwendung, und verfahren zu dessen herstellung
DE102009060623B4 (de) Künstlicher Knochen, der von autogenem Knochen absorbierbar und ersetzbar ist, sowie sein Herstellungsverfahren
DE3526320A1 (de) Gelprothesen
DE112011102907T5 (de) Kits, Komponeten und Verfahren zur Geweberekonstrution
DE102009057545A1 (de) Künstlicher Knochen, der von autogenem Knochen absorbierbar und ersetzbar ist, sowie sein Herstellungsverfahren
WO1990003811A1 (de) Verfahren zur herstellung von rinder-pericard-materialien und ihre verwendung
EP2147687B1 (de) Flächiges Implantat
AT398373B (de) Biologisches resorbierbares implantationsmaterial sowie verfahren zur herstellung desselben
CA2248212C (en) Perforated submucosal tissue graft constructs
WO2007057178A2 (de) Angiogenese förderndes substrat
DE1492300C (de) Verfahren zur Herstellung von Wundauflagen

Legal Events

Date Code Title Description
8364 No opposition during term of opposition