DE3038196A1 - Abtrennung von leukocyten oder lymphocyten von einer leikocyten enthaltenden suspension - Google Patents
Abtrennung von leukocyten oder lymphocyten von einer leikocyten enthaltenden suspensionInfo
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Description
B e s c . h r e i b u η g , r .
oder
Die Erfindung betrifft die Abtrennung von Leukocyten o Lymphocyten von einer Leukocyten enthaltenden Suspension;
sie betrefft insbesondere ein Material, eineciFilterund ein
Verfahren zur Abtrennung von Leukocyten oder Lymphocyten k hd i i
von einer Leukocyten enthaltenden Suspension "sowie die
Verwendung eines solchen Materials und eines solchen Filters
für die Durchführung dieser Abtrennung.
- <- '" ; "Γ'ίΛ"! ! · -c>A— i'~ * "-· O ;
>'f'" : '■?''""' ' '■". ■' *i -^i-" lii-'S ■ ί f5T} J =* .1"/ S T ritr^ i -Ks.-
Unter dem hier verwendeten' "Ausdrucke "Leukocyten enthaltende
Suspension" sind Blut und andere.Leukocyten enthaltende
Körperflüssigkeiten zu verstehen. Dieser Ausdruck ist so
zu interpretieren, daß er auch physikalisch, chemisch und/-
oder biologisch behandeltes Blut und andere Körperflüssigkeiten, wie z.B. Blut, das mit einer, physiologischen Kochsalzlösung
verdünnt worden ist,und Blut, dem ein Erythrocyten-Agglutinierungsmittel
(z.B. Dextran oder Hydroxyäthylstärke) zugesetzt worden ist, umfaßt.
Als Folge der jüngsten Entwicklungen in der Hämatologie
und Immunologie werden Blutkomponententransfusionen, . Leukocytentests,
Inspektionen der Oberflächenantigene von Leukocyten und Messungen in bezug auf die Subpopulationsraten
von Lymphocyten häufig durchgeführt und die Ergebnisse dieser Untersuchungen werden zur Diagnose und Behandlung von
verschiedenen Erkrankungen verwendet. Darüber hinaus wer-* den Tests zur Klassifizierung und Abtrennung von Subkörpern,
wie z.B. HeIfer-T-ZeIlen und Suppressor-T-Zellen in
verschiedenen Krankenhäusern und Forschungsinstituten durchgeführt.
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ORIGINAL INSPECTED
" :ί 303St96
Beispiele für konventioneiie" V^iffähren'"zürn Eimfangen -und
Sammeln von Leukozyten oder Lymphecyteen, die auf die obengenannten
Zwecke angewendet wenden können» sind ein Verfahren, in dem ein Erythrocytön-Agglutin^rungscalttel verwendet
wird, ein zWtrifugenabtrennungsverfahren und ein
'Verfahren, in dem die Adhäsion von Letikocyten oder Lyaphoeyten
an Fasern ausgenutzt wird,
Bei dem Verfahren, bei dem als Erythroeyten-AggLxartinie'*
rungsmittel Dextran,. Hydroxyäthy!stärke oder ein anderes
Erythrocyten-Agglutinierungsmittel dem Blut zugesetzt wird,
laßt man das Blut für eine bestimmte Zeitspanne stehen und dann wird die überstehende Flüssigkeit, die reich an Leukocyten
ist, abgetrennt» Bei dem Zentrifugentrennverfahren wird das Blut einer Zentrifugentrennung unterworfen und eine
ledergelbe, an Leukocyten reiche Überzugsschicht gesammelt,
während bei dem Dichtegradienten-Zentrifugentrennverfahren eine Flüssigkeit mit einem spezifischen Gewicht von 1,077
mit Blut überschichtet wird, die übereinanderstehenden
Schichten zentrifugiert und die Lymphocyten enthaltende Schicht abgetrennt wird. Bekannte Verfahren, in denen die
Adhäsion von Leukocyten oder Lymphocyten an Fasern ausgenutzt wird, sind z.B. ein Verfahren, in dem dafür gesorgt
wird, daß Monocyten und Granulocyten an Fasern haften, und
die anhaftenden Hämatocyteh unter Verwendung einer physiologischen
Kochsalzlösung oder einer mit Phosphorsäure abgepufferten physiologischen Kochsalzlösugg abgetrennt werden,
sowie ein Verfahren, bei dem eine an Leukocyten reiche Fraktion hergestellt wird durch Verwendung eines Koagulationsmittels
oder eines Zentrifugenabscheiders, Einführen
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ORiGfMAL !NSPECTED
der an Leukocyten reichen Fraktion in eine mit Nylonoder Glaswollefasern gefüllte Säule, Halten der Fraktion
für einen Zeitraum von etwa 30 Minuten bei 37 C in der Säule und schließlich Abtrennen der Lymphocyten davon.
Diese bekannten Verfahren sind jedoch insofern nicht zufriedenstellend
als in den gesammelten Leukocyten- oder Lytnphocytenfraktionen verhältnismäßig große Mengen an Erythrocyten
und Blutplättchen enthalten sind. Wenn große Mengen an Erythrocyten und Blutplättchen darin enthalten
sind, werden dadurch während der verschiedenen Inspektionen unter Verwendung von Leukocyten und Lymphocyten häufig
große Fehler verursacht und häufig werden die Inspektionen unmöglich gemacht.
Insbesondere ist in dem Verfahren, in dem ein Erythrocyten-Agglutinierungsmittel
verwendet wird, die Anzahl der eingeschbssenenErythrocyten
mehrere Male bis etwa 15 mal so groß wie die Anzahl der Leukocyten und die Anzahl der einge~
schbssenenBlutplättchen ist einige Bruchteile mal so groß wie die Anzahl der Leukocyten. Bei dem Zentrifugentrennverfahren,
in dem ein ledergelber Überzug verwendet wird, ist die Anzahl der zugegebenen Erythrocyten und Blutplättchen
mehrere Male bis etwa 15 mal so groß wie die Anzahl der Leukocyten und bei dem Dichtegradienten-Zentrifugentrennverfahren
ist die Anzahl der eingeschlossenen Blutplättchen mehrere Male so groß wie die Anzahl der Lymphocyten.
In dem Dichtegradienten-Zentrifugentrennverfahren kann die Anzahl der Erythrocyten auf weniger als 1/10 der Anzahl der
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Lymphocyten vermindert werden. Wenn jedoch das spezifische
Gewicht in einigen der Erythrocyten wie im Blut von
Patienten herabgesetzt wird, ist die Anzahl der Erythrocyten häufig mehrere Male bis etwa 15 mal so groß wie die
Anzahl der Lymphocyten. Da die Operation kompliziert ist und eine sehr lange Zeit zur Vervollständigung der Abtrennung
erforderlich ist, werden die erhaltenen Leukocyten beschädigt und es ist häufig eine Verminderung der Funktionen
der Leukocyten ader eine Herabsetzung des ÜberIebens-Mengenanteils
der Leukocyten zu beobachten. Bei dem Verfahren,in dem die Adhäsion von Hämatocyten an Fasern
ausgenutzt wird, ist die Anzahl der Erythrocyten oder Blutplättchen häufig mehrere Male bis etwa 15 mal so groß wie
die Anzahl der Lymphocyten oder Granulocyten.
Hauptziel der vorliegenden Erfindung ist es daher, die Abtrennung von Leukocyten oder Lymphocyten von einer Leukocyten
enthaltenden Suspension zu ermöglichen, wobei die Zugabe (Einschluß) von anderen Komponenten^, wie Erythrocyten
und Blutplättchen? zu der gesammelten^ an Leukocyten
oder Lymphocyten reichen Suspension minimal gehalten wird.
Weitere Ziele, Merkmale und Vorteile der Erfindung gehen aus der nachfolgenden Beschreibung hervor»
Gemäß einem ersten Aspekt betrifft die vorliegende Erfindung ein Material zur Abtrennung von Leukocyten von einer
Leukocyten enthaltenden Suspension, bei dem es sich handelt um ein faserförmiges Material mit einer Oberflächenschicht
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aus einer Substanz, die in Wasser stufenweise gelöst werden kann.
Gemäß einem zweiten Aspekt betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Abtrennung von Leukocyten von einer
Leukocyten enthaltenden Suspension, das darin besteht, daß die Leukocyten enthaltende Suspension mit dem obengenannten
Leukocyten-Abtrennmaterial in Kontakt gebracht wird, wodurch ein beträchtlicher Teil der Leukocyten in dem Leukocyten-Abtrennmaterial
eingefangen wird, und daß dann die in dem Leukocyten-Abtrennmaterial eingefangenen Leukocyten
gesammelt werden.
Gemäß einem dritten Aspekt betrifft die vorliegende Erfindung einen Filter zur Abtrennung von Leukccyten von einer
Leukocyten enthaltenden Suspension, bei dem es sich um das obengenannte Leukocyten-Abtrennmaterial handelt, das in
einen Behälter eingefüllt ist.
Gemäß einem vierten Aspekt betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Herstellung eines Filters für die
Abtrennung von Leukocyten von einer Leukocyten enthaltenden Suspension, das die folgenden Stufen umfaßt:
Füllen eines Behälters mit offenen Fasern, Inkontaktbringen der eingefüllten Fasern mit einer Beschichtung
slösung,
Entfernen der überschüssigen Menge der in Form einer Schicht aufgebrachten Lösung von den eingefüllten Fasern
und
anschließendes Trocknen der in Form einer Schicht aufge-
anschließendes Trocknen der in Form einer Schicht aufge-
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brachten Lösung.
Gemäß einem fünften Aspekt betrifft die vorliegende Erfindung ein Verfahren zur Abtrennung von Lymphocyten von einer
Lymphocyten enthaltenden Suspension mit einem verminderten
Gehalt an Granulocyten und Monocyten, das darin besteht, daß die Lymphocyten enthaltende Suspension mit dem
obengenannten Leukocyten-Abtrennmaterial in Kontakt gebracht wird, wodurch ein beträchtlicher Teil der Lymphocyten
in dem Leukocyten-Abtrennmaterial eingefangen wird, und daß dann die in dem Leukocyten-Abtrennmaterial eingefangenen
Lymphocyten gesammelt werden.
Gemäß einem sechsten Aspekt betrifft die vorliegende Erfindung einen Lymphocyten-Abtrennfilter, der besteht aus
mindestens einem Behälter, der mit Fasern gefüllt ist und mindestens zwei Einsatz- und Auslaßöffnungen aufweist, wobei
der (die) Behälter einen ersten Abschnitt aus Fasern mit einem durchschnittlichen Durchmesser von 5 bis ?Oyum,
die in einer Schüttdichte von 0,04 bis 0,4 g/cm eingefüllt sind und eine Oberflächenschicht aus einer Substanz aufweisen,
die stufenweise in Wasser gelöst werden kann, und einen in Reihe hinter dem ersten Abschnitt angeordneten
zweiten Abschnitt aus Fasern mit einem größeren durchschnittlichen Durchmesser als der Durchmesser der Fasern
des ersten Abschnittes in einer Größe innerhalb des Bereiches von 10 bis 60 um aufweist (aufweisen).
Erfindungsgemäiwerdea Leukocyten von einer Leukocyten enthaltenden
Suspensic . abgetrennt, indem man die Leukocyten
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enthaltende Suspension mit einem Leukocyten-Abtrennmaterial
in Kontakt bringt, wodurch ein beträchtlicher Teil der Leukocyten in dem Leukocyten-Abtrennmaterial eingefangen
wird, und dann die eingefangenen Leukocyten sammelt. Das verwendete Leukocyten-Abtrennmaterial enthält oder besteht
aus einem faserförmigen Material mit einer Oberflächenschicht
aus einer Substanz, die in Wasser, stufenweise gelöst werden kann. Lytnphocyten können ebenfalls auf ähnliche
Weise wie vorstehend angegeben von einer Lymphocyten enthaltenden Suspension mit einem verminderten Gehalt
an Granulocyten und Monocyten abgetrennt werden.
Die Erfindung xvard nachfolgend unter Bezugnahme auf die
beiliegenden Zeichnungen näher erläutert. Dabei zogen:
Fig. 1 eine Frontansicht, die einen Behälter erläutert, der .zur Messung der Auflösungsgeschwindigkeit einer
Beschichtungssubstanz verwendet wird;
Fig. 2 eine Seitenansicht des in Fig. 1 dargestellten Behälters ;
Fig. 3 eine ebene Draufsicht auf den in Fig. 1 dargestellten Behälter;
Fig. 4 ein Diagramm, das eine Versuchsapparatür erläutert, die zur Messung der Auflösungsgeschwindigkeit
einer Beschichtungssubstanz verwendet wird;
Fig. 5 ein Diagramm, welches die Auflösungsgeschwindigkeiten
von typischen Beschichtungssubstanzen erläutert;
Fig. 6 eine schematische Querschnittsansicht, die einen
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Leukocyten-Abtrennfilter erläutert, der hergestellt worden ist durch Einfüllen des erfindungsgemäßen
Leukocyten-Abtrenntnaterials in einen Behälter;
Fig. 7 ein Diagramm, das eine Ausführungsform der Vorrichtung
zur Durchführung des erfindungsgemäßen Leukocyten-Abtrennverfahrens erläutert;
Fig. 8 ein Diagramm, das eine andere Ausführungsform der
Vorrichtung zur Durchführung des erfindungsgemässen Leukocyten-Abtrennverfahrens erläutert;
Fig. 9 ein Diagramm, welches die Beziehung zwischen der Auflösungsgeschwindigkeit einer Beschichtungssubstanz
und der darin enthaltenen. Erythrocytenkonzentration erläutert, die zu beobachten ist,
wenn die Leukocyten-Abtrennung unter Verwendung
von Fasern, die mit der Beschichtungssubstanz
überzogen sind, durchgeführt wird;
Fig. 10 eine schematische Querschnittsansicht, die eine Ausführungsform des erfinckmgs gemäßen Leukocyten-Abtrennfilters
vor der Bildung einer Überzugsschicht erläutert;
Fig. 11 ein Diagramm, das eine Ausführungsform der zur
Bildung einer Überzugsschicht verwendeten Apparatur erläutert; und
Fig. 12 ein Diagramm, das eine Ausführungsform der Einrichtung
erläutert, die zur Entfernung einer überschüssigen Menge der in Form einer Schicht
aufgebrachten Substanz verwendet wird.
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Das erfindungsgemäße Leukocyten-Abtrennmaterial wird nachfolgend
näher beschrieben.
Unter dem hier verwendeten Ausdruck "faserförmiges Material"
ist ein Material zu verstehen, das aus Fasern mit einer Länge besteht, die viel größer ist als der durchschnittliche
Durchmesser derselben und deren durchschnittlicher Durchmesser (D) durch die folgende Gleichung definiert
ist:
D (cm) = "! X
worin χ für das Gewicht (g) der Fasern, y für die Länge
(cm) de
s tehen.
s tehen.
3 (cm) der Fasern und ^ für die Dichte (g/cm ) der Fasern
Der durchschnittliche Durchmesser des faserförmigen Materials
ist nicht besonders kritisch, wenn jedoch unter den Leukocyten insbesondere Monocyten und Granulocyten abgetrennt
werden, ist der durchschnittliche Durchmesser vorzugsweise nicht größer als 60 um und zum Einfangen von
Leukocyten mit einem verbesserten Wirkungsgrad ist es insbesondere bevorzugt, daß der durchschnittliche Durchmesser
nicht größer als 10 um ist. Vom Standpunkt der Wirksamkeit der Rückgewinnung der eingefangenen Leukocyten
aus betrachtet ist es bevorzugt, daß der durchschnittliche Durchmesser innerhalb des Bereiches von 5 bis 10 um liegt.
Das verwendete faserförmige Material ist nicht besonders
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kritisch, so weit es den Leukocyten nicht schadet und eine
Schicht aus einer Überzugssubstanz, die sich in Wasser
allmählich auflöst, darauf aufgebracht werden kann. So können beispielsweise synthetische Fasern, wie Polyacrylnitrilfasern,
Polyätherfasern und Polyamidfasern; halbsynthetische
Fasern, wie Celluloseacetatfasern; regenerierte Cellulosefaser^
wie Cuprammonium-Reyon-Fasern; Naturfasern,
wie Baumwolle; und anorganische Fasern, wie Glasfasern, verwendet werden.
Erfindungsgemäß ist es unerläßlich, daß eine auf dem faserförmigen
Material gebildete Oberflächenschicht stufenweise in Wasser gelöst werden kann. Wenn diese Eigenschaft
durch die Auflösungsgeschwindigkeit (Auflösungsrate) ausgedrückt
wird, so ist es bevorzugt, daß die Auflösungsgeschwindigkeit
bzw. -rate der Oberflächenschicht in Wasser
2 innerhalb des Bereiches von 0,3 bis 1,0 mg/min χ cm , ins-
2 besondere von 0,4 bis 0,9 mg/min, χ cm j liegt.
Unter dem hier verwendeten Ausdruck "Auflösungsgeschwindigkeit
bzw. -rate" ist ein Wert zu verstehen, der unter Anwendung des folgenden Meßverfahrens bestimmt wird:
Ei: die Durchführung der Messung wird ein Behälter 25, wie
er in den Fig. 1 bis 3 dargestellt ist, verwendet. Die Fig. 1 zeigt eine Frontansicht des Behälters, die Fig. 2
zeigt eine Seitenansicht des Behälters und die Fig. 3 zeigt eine ebene Draufsicht auf den Behälter. Dieser Behälter hat
eine innere Länge (1) von 30 mm, eine innere Breite (m) von 61 mm und eine innere Tiefe (n) von 15 mm und in den Zentren
4 M 7 / 0 7 6 4
beider Seitenflächen sind in einer Position 5 tnm oberhalb
des Innenbodens des Behälters Wasserdurchflußrohre 20 mit einem inneren Durchmesser (p) von 2 mm angeordnet.
Auf der inneren Bodenoberfläche des Behälters wird eine Überzugsschicht aus einer zu messenden Substanz mit einer
2
Oberflächengröße von 18,3 cm und einer gleichmäßigen Dicke gebildet. Die zu untersuchende Substanz wird in einer solchen Menge verwendet, daß das Gesamtgewicht der Überzugsschicht, die herausgelöst werden kann, 200 mg beträgt.
Oberflächengröße von 18,3 cm und einer gleichmäßigen Dicke gebildet. Die zu untersuchende Substanz wird in einer solchen Menge verwendet, daß das Gesamtgewicht der Überzugsschicht, die herausgelöst werden kann, 200 mg beträgt.
Das Verfahren zur Herstellung dieser Überzugsschicht ist
nicht besonders kritisch. So kann beispielsweise ein Verfahren angewendet werden, bei dem eine wasserlösliche Substanz
in Form einer Schicht auf die innere Bodenoberfläche des Behälters aufgebracht wird (im Prinzip besteht der Behälter
aus dem gleichen Material wie das faserförmige Material), oder es kann ein Verfahren angewendet werden, bei
dem eine wasserlösliche Substanz physikalisch und/oder chemisch auf der inneren Bodenoberfläche des Behälters, der
aus dem gleichen Material wie das faserförmige Material besteht, festgehalten wird.
Nachfolgend wird ein Beispiel für das Verfahren zum Beschichten der inneren Bodenoberfläche des Behälters mit einer wasserlöslichen
Substanz näher beschrieben: Zuerst wird eine wäßrige Lösung (2 ml), welche die zu untersuchende
Substanz in einer Konzentration von 10 g/dl enthält, in den Behälter eingeführt und gleichmäßig auf der inneren Bo-
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denoberfläche des Behälters verteilt. Dann wird der Behälter
bei 37 C in einem Inkubator in einem Zustand, in dem kein Deckel an dem Behälter befestigt ist, bei 37 C
ausreichend getrocknet, wodurch die gewünschte Überzugsschicht
gebildet wird. Wenn eine Substanz verwendet wird, die eine Schicht ergibt, in der leicht Risse entstehen,
werden milde Bedingungen, z.B. das Trocknen bei Raumtemperatur, angewendet und es sollte darauf geachtet werden,
daß ein homogener Überzug gebildet wird.
Dann wird der Behälter mit der auf der Bodenoberfläche gebildeten
Überzugsschicht in eine Meßapparatur, wie sie in Fig. 4 dargestellt ist, eingesetzt. In der Fig. 4 bezeichnen
die Bezugsziffern 21, 22, 23 und 24 einen Behälter mit einer auf der Bodenoberfläche erzeugten Überzugsschicht,
einen mit Wasser gefüllten Becher, eine Pumpe bzw. eine Schüttelvorrichtung.
Das bpi 30 C gehaltene Wasser x-rird mit siner Strömungsgeschwindigkeit
von 5 ml/min, aus dem Becher 22 in den Behälter 21 eingeführt und es wird eine Probe aus der wäßrigen
Lösung, welche die zu untersuchende Substanz enthält und aus dem Behälter 21 kommt, entnommen und es wird
die Menge der Testsubstanz gemessen, die innerhalb einer vorgegebenen Zeitspanne herausgelöst wird. Während dieser
Messung wird der Behälter 21 in der horizontalen Anordnung gehalten und das Wasser in dem Behälter 21 wird mittels
der Schüttelvorrichtung 24 ständig geschüttelt. Das Schütteln wird durchgeführt unter Anwendung einer horizontalen
Achterbewegung, so daß eine hin-und hergehende Bewegung
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von 3 cm pro Sekunde in der Wasserströmungsrichtung y (y =
1,5 cos 2Yt(cm ), worin t für die Zeit in Sekunden steht) und
zwei hin und her gehende Bewegungen von 2 cm pro Sekunde in der x-Richtung senkrecht zu der Wassers-trömungsrichtung
y (x = -sin 4if t(cm), worin t für die Zeit in Sekunden steht)
erzeugt werden. Die aus dem Behälter austretende, die Testsubstanz enthaltende Lösung wird inZeitabständen von beispielsweise
4 Minuten (bei jeweils 20 ml des Volumens des Stromes) entnommen und das Auf lösungs diagramm in Abhängigkeit
von der Zeit wird aufgezeichnet.
Die auf diese Weise erhaltenen Auflösungsdiagramme der
Testsubstanzen sind in der Fig. 5 beispielhaft angegeben. In der Fig. 5 bezeichnet die Kurve a das Auflösungsdiagramm
einer Substanz mit einer hohen Auflösungsgeschwin digkeit bzw. -rate und die Auflösungsgeschwindigkeiteh bzw.
-raten der Substanzen, die durch die Kurven b und c dargestellt sind, sind niedriger als diejenige der Kurve a.
Erfindungsgemäß ist die Auflösungsgeschwindigkeit bzw.
-rate definiert als ein Wert, der errechnet wird aus der Menge der Testsubstanz mit einer bestimmten Oberflächen-
2
größe (18,3 cm ), die zum Zeitpunkt einer Auflösungszeit von 8 Minuten herausgelöst worden ist, in dessen unmittelbarer Umgebung eine gute Linearität in jeder Auflösungsdiagrammkurve besteht. D.h., erfindungsgemäß ist die Auflösungsgeschwindigkeit bzw. -rate durch die folgende Gleichung definiert:
größe (18,3 cm ), die zum Zeitpunkt einer Auflösungszeit von 8 Minuten herausgelöst worden ist, in dessen unmittelbarer Umgebung eine gute Linearität in jeder Auflösungsdiagrammkurve besteht. D.h., erfindungsgemäß ist die Auflösungsgeschwindigkeit bzw. -rate durch die folgende Gleichung definiert:
2 Auflösungsgeschwindigkeit (kg/min, χ cm ) = [gelöste
Menge (mg) der Substanz nach 8 Minuten Auflösungszeit]:
2 2
[8 Minuten χ 18,3 cm ](mg/min, cm ) (wobei die Menge
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der aufgelösten Testsubstanz nach dem vorstehend beschriebenen Verfahren gemessen wird).
Der Effekt der Inhibierung der Adhäsion der Erythrocyten
oder Blutplättchen an dem Leukocy ten-»Abtrennmaterial kann
erzielt werden durch die Oberflächenschicht (nachfolgend als "die Erythrocytenhaftung hemmende Oberflächenschicht"
bezeichnet), die in der oben angegebenen spezifischen Auflösungsgeschwindigkeit
bzw« -rate, die nach dem vorstehend beschriebenen Verfahren bestimmt worden ist, aufgelöst
werden kann. Es wird angenommen, daß der Grund der ist, daß, da die Oberflächenschicht allmählich aus der Oberfläche
des faserförmigen Materials herausfließt, Erythrocyten mit einer hohen Verformbarkeit und Blutplättchen mit
einer geringen Größe und einem geringen Gewicht nicht dazu neigen, an dem faserförmigen Material zu haften, so daß
Leukocyten mit einer geringen Verformbarkeit, mit einem
verhältnismäßig hohen Gewicht und einer verhältnismäßig großen kugelförmigen Gestalt leicht an dem faserföriiigen
Material haften können.
Wenn die Auflösungsgeschwindigkeit der Überzugsschicht zu
gering ist, ist die Menge der aus dem faserförmigen Material ausfließenden Überzugsschicht zu gering und der obengenannte
Fffekt ist sehr gering«, Wenn dagegen die Auflösungsgeschwindigkeit
der Überzugsschicht zu hoch ist, fließt die Überzugsschicht zu schnell aus dem faserförmigen
Material heraus und die Überzugsschicht geht innerhalb einer sehr kurzen Zeitspanne aus dem faserförmigen Material
verloren.
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Unter gewöhnlichen Betriebsbedingungen ist es daher bevorzugt, daß die Auflösungsgeschwindigkeit der die Erythrocytenhaftung
hemmenden Oberflächenschicht innerhalb
2 des Bereiches von 0,3 bis 1,0 mg/min, x cm , vorzugsweise
2
von 0,4 bis 0,9 mg/min, χ cm liegt, wie oben angegeben.
von 0,4 bis 0,9 mg/min, χ cm liegt, wie oben angegeben.
Selbstverständlich kann auch dann, wenn die Auflösungsgeschwindigkeit
der Oberflächenschicht außerhalb dieses bevorzugten Bereiches liegt, die Haftung der Erythrocyten
und der Blutplättchen an dem Leukocyten-Abtrennmaterial inhibiert bzw. verhindert werden durch geeignete Einstellung
(Kontrolle) der Arbeitsbedingungen, wie z.B. der Blutmenge,
der Waschmenge und der Strömungsgeschwindigkeit.
Insbesondere kann im Falle einer Oberflächenschicht mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von mehr als 1,0 mg/min.
χ cm in Wasser, d.h. einer Oberflächenschicht, die innerhalb
einer kürzeren Zeitspanne in Wasser gelöst wird, die Haftung von Erythrocyten oder Blutplättchen an dem
Leukocyten-Abtrenrmaterial verhindert werden durch Vergrößerung
der Dicke der auf der Oberfläche des faserförmigen Materials gebildeten Oberflächenschicht, durch Herabsetzung
der Menge des zu .behändeindenBlutes, durch Erhöhung
der Strömungsgeschwindigkeit oder durch Herabsetzung der Temperatur. Der Grund ist der, daß dann, wenn
die auf der Oberfläche des faserförmigen Materials gebildete
Oberflächenschicht nur in Blut gelöst wird, während Erythrocyten oder Blutplättchen mit dem Leukocyten-Abtrennmaterial
in Kontakt kommen können, die Erythrocyten und Blutplättchen nicht an der Oberfläche des faserföxmigen
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Materials haften dürfen. Bei der praktischen Durchführung ist die Dicke der auf der Oberfläche des faserförmigen Materials
gebildeten Oberflächenschicht jedoch begrenzt und wenn die Strömungsgeschwindigkeit desBlutes erhöht wird,
haben die Leukocyten die Neigung, leicht aus dem Leukocyten-Abtrennmaterial
auszutreten und die Rückgewinnungs- bzw. Abtrennmenge der Leukocyten wird herabgesetzt. Es
ist daher bevorzugt, daß die Auflösungsgeschwindigkeit der die Erythrocytenhaftung hemmenden Oberflächenschicht
nicht höher als 1,0 mg/min, χ cm ist.
Im Falle einer Oberflächenschicht mit einer Auflösungsgeschwindigkeit
von weniger als 0,3 mg/min, χ cm , d.h. einer Oberflächenschicht, die sich auch innerhalb einer langen
Zeitspanne nicht leicht in Wasser löst, dürfen dann, wenn die Auflösung der Oberflächenschicht in Blut verstärkt
wird durch Anwendung von physikalischen Vibrationen oder Erhöhung der Temperatur, Erythrocyten oder Blutplättchen
nicht an dem Leukocyten-Trennmateri.al haften. Bei der praktischen Durchführung haben jedoch dann, wenn physikalische
Vibrationen angewendet werden, Leukocyten die Neigung, aus dem Leukocyten-Abtrennmaterial auszutreten
und die Rückgewinnungs- bzw. Abtrennmenge der Leukocyten wird herabgesetzt und wenn die Temperatur übermäßig stark
erhöht wird, wird das Blut leicht modifiziert. Es ist daher bevorzugt, daß die Auflösungsgeschwindigkeit bzw.
-rate der Oberflächenschicht mindestens 0,3 mg/min, χ cm
beträgt.
Das Material der auf dem faserförmigen Material gebildeten
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die Erythrocytenhaftung hemmenden Überzugsschicht ist nicht
besonders kritisch, so lange es die Ler.kocyten nicht schädigt. Es können beispielsweise Gelatine, Casein, Polyvinylpyrrolidon,
Polyvinylalkohol und Polyvinylraethyläther verwendet werden.
Das Verfahren zur Herstellung einer die Erythrocytenhaftung hemmenden Oberflächenschicht ist nicht besonders
kritisch. So kann beispielsweise ein Verfahren, bei dem . eine in Wasser lösliche Substanz in Form einer Schicht
auf die Oberfläche des faserförmigen Materials aufgebracht wird, oder ein Verfahren, bei dem eine in Wasser
lösliche Substanz physikalisch oder chemisch an der Oberfläche des faserförmigen Materials festgehalten wird, angewendet
werden.
Das zuerst genannte Verfahren, das die Aufbringung einer in Wasser löslichen Substanz in Form einer Schicht auf
die Oberfläche des faserförmigen Materials umfaßt, wird nachfolgend anhand eines Beispiels näher beschrieben:
Ein Überzug kann dadurch hergestellt werden,, daß man eine isotonische Lösung einer Substanz, welche die die Erythrocytenhaftung
hemmende Oberflächenschicht aufbaut, mit der Oberfläche des faserförmigen Substrats in Kontakt
bringt. Es reicht aus, wenn die Menge der auf die Oberfläche des Substrats aufgebrachten, die Erythrocytenhaftung
hemmenden Oberflächenschicht mindestens so groß ist, daß eine monomolekulare Schicht gebildet wird. Es ist
nicht immer erforderlich, daß die Oberflächenschicht in
dem faserförmigen Material adsorbiert wird. D.h. kurz zu-"
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sammengefaßt, die Menge des auf die Oberfläche des faserförmigen
Materials aufgebrachten Überzugs wird in geeigneter Weise festgelegt in Abhängigkeit von der Blutmenge,
der Menge der Waschlösung, der Strömungsgeschwindigkeit und den anderen Bedingungen, unter denen das resultierende
Abtrennmaterial in der Praxis verwendet wird. Außerdem kann ein Abtrennmaterial verwendet werden, das hergestellt
worden ist durch Aufbringen einer Substanz, welche die die Erythrocytenhaftung hemmende Oberflächenschicht aufbaut,
auf die Oberfläche und Trocknen der beschichteten Oberfläche?und
dieses Abtrennmaterial kann leicht unter sterilen Bedingungen gehalten und gehandhabt werden, wenn das
Abtrennmaterial in der Praxis verwendet wird. Häufig ist es jedoch bevorzugt, daß die auf der Oberfläche des faserförmigen
Materials vorhandene Oberflächenschicht im feuchten Zustand gehalten x^ird, wenn Blut oder dgl. mit dem
Leukocyten-Abtrennmaterial in Kontakt gebracht wird.
Wie aus der vorstehenden Erläuterung hervorgeht, umfaßt das erfindungsgemäße Leukocyten-Abtrennmaterial ein faserförmiges
Substrat und eine auf die Oberfläche des faserförmigen Materials aufgebrachte, die Erythrocytenhaftung
hemmende bzw. inhibierende Oberflächenschicht.
Ein erfirr^^crsgemäßer Leukocyten-Abtrennfilter, der nachfolgend
näher beschrieben wird, umfaßt einen Behälter und das in den Behälter eingefüllte obengenannte Leukocyten-Abtrennmaterial.
In diesem Filter ist es bevorzugt, daß das Leukocyten-Abtrennmaterial ausreichend geöffnet und
entwirrt worden isto Insbesondere ist es bevorzugt, daß
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die Schüttdichte des Leukocyten-Äbtrennmaterials im trokkenen
Zustand innerhalb des Bereiches von 0,04 bis 0,4 g/cm liegt. Wenn die Schüttdichte zu gering ist, können
nicht genügend Leukocyten eingefangen werden und die Leukocytenabtrennungs- bzw. -gewinnungsrate ist vermindert.
Wenn andererseits die Schüttdichte zu hoch ist, werden zwar genügend Leukocyten eingefangen, es tritt jedoch der
Nachteil auf, daß die Abtrennungs- bzw. Gewinnungsmenge abnimmt und mehr Erythrocyten in dem Filter zurückbleiben.
Es ist besonders bevorzugt, daß die Schüttdichte innerhalb des Bereiches von 0,04 bis 0,25 g/cm liegt.
Der das erfindungsgemäße Leukocyten-Abtrennmaterial enthaltende
Leukocyten-Abtrennfilter hat beispielsweise den in Fig. 6 dargestellten Aufbau. In der Fig. 6 ist ein Leukocyten-Abtrennmaterial
1, wie es beispielsweise vorstehend beschrieben worden ist, in einem gegen Wasser beständigen
Behälter 2 mit Flüssigkeitseinlaß- und -ausLaß Öffnungen 2 und
3 eingefüllt. Außerdem sind Maschensiebe 5 und 6 vorgesehen, um zu verhindern, daß das Leukocyten-Abtrennmaterial
aus dem Behälter 4 austritt.
Das Verfahren zur Herstellung eines solchen Leukocyten-Abtrennfilters,
der das erfindungsgemäße Leukocyten-Abtrennmaterial enthält, wird nachfolgend naher beschrieben:
Der Leukocyten-Abtrennfilter kann hergestellt werden durch Herstellung eines Leukocyten-Äbtrennmaterials,bestehend aus
einem faserförmigen Material und einer Oberflächenschicht r
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die stufenweise in Wasser gelöst werden kann und die auf die Oberfläche des faserförmigen Materials aufgebracht
wird, und Einfüllen des Leukocyten-Abtrennmaterials in
einen Behälter. Wenn jedoch das Leukocyten-Abtrenninaterial hergestellt wird durch Beschichten eines faserförmigen
Materials mit einer Subs tanz,' die stufenförmig in Wasser gelöst werden kann, ist es empfehlenswert, zur
Herstellung des Leukocyten-Abtrennfilters das fügende Verfahren anzuwenden:
Ein faserförmiges Material wird geöffnet und dann in einen Behälter eingefüllt, eine Lösung einer Überzugs-bildenden
Substanz wird mit dem faserförmigen Material in Kontakt gebracht, die überschüssige Menge der Beschichtungssubstanz-Lösung
gegenüber der erforderlichen Menge wird von der Oberfläche des faserförmigen Materials entfernt
und das beschichtete faserförmige Material wird dann getrocknet, wobei man den gewünschten Leukocyten-Abtrennfilter
erhält.
Bei diesem Filterherstellungsverfahren wird auf der Oberfläche des faserförmigen Materials, das in ausreichendem
Maße geöffnet worden ist, eine homogene Oberflächenschicht erzeugt und auch die Schnittpunkte der Fasern können in
zufriedenstellender Weise überzogen (beschichtet) werden. Da nach dem Trocknen der Oberflächenschicht keine äußere
mechanische Kraft angewendet zu werden braucht, wird dadurch keine unerwünschte Ablösung oder Rißbildung in der
Oberflächenschicht hervorgerufen.
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Nachfolgend werden die Herstellungsbedingungen im Detail beschrieben:
Die Bildung einer Oberflächenschicht auf der Oberfläche des faserförmigen Materials in dem Behälter kann dadurch
erzielt werden, daß man lediglich eine BeschichtungssubstanzlÖsung
in den Behälter einfüllt oder die BeschichtungssubstanzlÖsung in dem Behälter zirkulieren läßt. D.h. kurz
zusammengefaßt, daß es ausreicht, wenn die BeschichtungssubstanzlÖsung mit der Oberfläche des faserförmigen Materials
und mit der inneren Oberfläche des Behälters in Kontakt gebracht wird. Bei einigen Beschichtungssubstanzen
kann in dieser Stufe die Beschichtungssubstanz mit dem
faserförmigen Material reagieren.
Nach-dem die BeschichtungssubstanzlÖsung mit der Oberfläche
des faserförmigen Materials in Kontakt gebracht worden ist, wird die überschüssige Menge der Beschichtungssubstanz gegenüber
der erforderlichen Menge von der Oberfläche des faserförmigen Materials entfernt. Diese Entfernung erfolgt
unter Anwendung eines Zentrifugierverfahrens, bei dem eine
Zentrifugalkraft eines Zentrifugenabscheiders vollständig auf den Behälter einwirken gelassen wird und die überschüssige
Beschichtungssubstanz durch diese Zentrifugalkraft entfernt wird, durch ein Verfahren, bei dem die überschüssige
Menge der Beschichtungssubstanz durch Druckluft weggeblasen wird, ein Verfahren, bei dem die überschüssige
Menge der Beschichtungssubstanz mit einem Lösungsmittel heraus gewaschen wird, und ein Verfahren, bei dem die Über-
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zugsschicht gefriergetrocknet wird, um die in der Oberfläche
des faserförmigen Materials vorhandene überschüssige Beschichtungssubstanz von der Oberfläche des faserförmigen
Materials abzutrennen. Vom Standpunkt der Gleichmäßigkeit der auf der Oberfläche des faserförmigen Materials
gebildeten Oberflächenschicht und der Leichtigkeit der Einstellung
der Dicke der Oberflächenschicht und der zur Beendigung der Trocknungsstufe erforderlichen Zeit aus betrachtet
ist das Zentrifugierverfahren das am meisten bevorzugte und empfehlenswerte.
Bei diesem Zentrifugierverfahren ist es bevorzugt, daß die angewendete Zentrifugalkraft innerhalb des Bereiches
von 5O*g bis 5OOxg liegt. Wenn die Zentrifugalkraft kleiner
als 5Oxg ist, bleibt die Beschxchtungssubstanz häufig
ungleichmäßig in dem Filter. Wenn die Zentrifugalkraft 50OXg übersteigt, neigt das faserförmige Material zum
Schrumpfen. Die Schrumpfung der Fasern kann jedoch auf einfache Weise beseitigt werden durch Anlegen einer äußeren
Kraft. Daher kann auch eine Zentrifugalkraft, die 500*g überschreitet, angewendet werden. Dieses Verfahren
kann nur angewendet werden, nachdem das.faserförmige Material
in den Behälter eingefüllt worden ist. Wenn dieses Verfahren argetfendet wird, bevor das faserförmige Material
in den Behälter eingefüllt worden ist, haften die Fasern des geöffneten faserförmigen Materials aneinander oder sie
werden zusammengedrückt und dann muß die Öffnung erneut durchgeführt werden. Außerdem kann ein guter offener Zustand
auch dann nicht erzielt werden, wenn die Öffnung erneut durchgeführt wird. Wenn dagegen das obige Verfahren
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angewendet wird, nachdem das offene faserförmige Material
in den Behälter eingefüllt worden ist, neigt das faserförmige Material nicht zum Schrumpfen aufgrund des Reibungswiderstandes
zwischen der Wand des Behälters und dem faserförmigen Material oder der Rückstellkraft der
verfilzten Fasern des faserförmigen Materials, selbst wenn die Füllungsdichte (Packungsdichte) des faserförmigen
Materials gering ist, und selbst dann, wenn eine Schrumpfung des faserförmigen Materials eingetreten ist,
kann der ursprüngliche Zustand leicht wiederhergestellt
werden durch Verwendung von Druckluft oder dgl.
Die Dicke der Oberflächenschicht wird eingestellt durch
die Konzentration der Beschichtungssubstanzlösung oder der Stärke der Zentrifugalkraft und sie wird in geeigneter
Weise festgelegt in Abhängigkeit von den physikalischen und chemischen Eigenschaften der Beschichtungssubstanz
und den Eigenschaften des verwendeten Lösungsmittels. Es kann jedes beliebige Trocknungsverfahren, mit
dessen Hilfes das Lösungsmittel entfernt werden kann, wie z.B. die Vakuumtrocknung oder die Heißlufttrocknung ;
angewendet werden. Die Trocknungsbedingungen sind so, daß die Beschichtungssubstanz nicht modifiziert oder gelöst
wird.
Nachstehend wird eine Ausführungsform des erfindungsgemäßen
Leukocyten-Abtrennverfahrens näher beschrieben.
Gemäß Fig. 7 wird ein Leukocyten-Abtrennfilter 7 hergestellt
durch Einfüllen des erfindungsgemäßen Leukocyteri-
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Abtrennmaterial in einen Behälter. Bei dieser Ausführungsform wird das Leukocyten-Abtrennmaterial in dem
Leukocyten-Abtrennfilter 7 hergestellt durch Aufbringen
einer die E ry throcytenhaftung hemmenden Überzugsschicht
auf die Oberfläche eines faserförmigen Materials und es
wird im trockenen Zustand gehalten. Zuerst wird mittels einer Pumpe 8 eine physiologische Lösung 10 in dem Behälter
9 in den Leukocyten-Abtrennfilter 7 eingeführt, um die Oberfläche des Leukocyten-AbtrennmateriaIs in dem
Leukocyten-Abtrennfilter zu benetzen (anzufeuchten). Dann
wird eine Einlaßleitung 11 von einem Behälter 9 für die physiologische Lösung 10 getrennt und mit einem Behälter
12 verbunden und in den Leukocyten-Abtrennfilter 7 wird das Blut 13 in dem Behälter 12 eingeführt. In diesem Leukocyten-Abtrennfilter
7 werden Leukocyten selektiv eingefangen, das Plasma, die Erythrocyten und Blutplättchen
werden jedoch nicht eingefangen und sie passieren den Leukocyten-Abtrennfilter 7 und werden in einen Behälter
14 eingeführt. Die Einlaßleitung 11 wird erneut mit dem
Behälter 9 verbunden und die physiologische Lösung 10 wird durch den Leukocyten-Abtrennfilter 7 strömen gelassen,
wodurch das Plasma, die Erythrocyten und Blutplättchen im wesentlichen ausgewaschen werden. Das Plasma und
die Erythrocyten bleiben nicht in einem wesentlichen Ausmaß in dem Leukocyten-Abtrennfilter 7 zurück und die Blutplättchen
bleiben nur in sehr geringen Mengen zurück. D. h. mit anderen Worten, in demFilter 7 werden im wesentlichen
nur Leukocyten selektiv eingefangen. In der Fig. 7 bezeichnet die Bezugsziffer 15 eine Auslaßöffnung des
Leukocyten-Abtrennfilters.
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Die Fig. 8 erläutert eine Ausführimgsform der Vorrichtung
zum Sammeln von nur Lymphocyten, um das Oberflächenantigen von Leukocyten oder der Subfraktion-Lymphocyten zu
bestimmen. In Leukocyten des Blutes werden vorher Monocyten
und Granulocyten eingefangen durch ein Filter 16
zur Abtrennung von Monocyten und Granulocyten und Lymphocyten werden in einem Leukocyten-Abtrennfilter 7 im wesentlichen
selektiv eingefangen. In der Fig. 8 bezeichnen die Bezugsziffem 17, 18 und 19 einen Behälter, ein
Silikonöl bzw. eine Einlaßleitung des Leukocyten-Abtrennfilters
7.
Die Technik des Einfangens von Leukocyten allein selektiv in dem Fi lter auf eine derart einfache Weise war bisher
nicht bekannt und dies ist zum ersten Mal möglich durch Verwendung des erfindungsgemäßen Leukocyten-Abtrennmaterials.
Danach werden die in dem Leukocyten-Abtrennfilter 7 ein- ■ gefangenen Leukocyten abgetrennt (gewonnen), während der
Filter physikalischen Schocks oder dgl. ausgesetzt wird, so daß die Leukocyten in einer hohen Gewinnungsmenge bzw.
-rate gewonnen bzw. abgetrennt werden können, und die Mengen an Erythrocyten und Blutplättchen, die in den abgetrennten
(gewonnen) Leukocyten enthalten sind, können merklich herabgesetzt werden.
Wenn Leukocyten unter Verwendung eines mit Fasern gefüllten Filters abgetrennt werden, können viele Erythrocyten
herausgewaschen werden durch Waschen des Filters mit ei-
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ner physiologischen Lösung nach dem Hindurchlaufenlassen von Blut durch den-selben. Da jedoch die Anzahl der im
Blut enthaltenen Erythrocyten etwa 1000 mal so groß ist wie die Anzahl der im Blut enthaltenen Leukocyten^ist
ihre Anzahl selbst dann, wenn die Anzahl der in dem Filter verbleibenden Erythrocyten herabgesetzt wird, einige
Male bis einige Bruchteile mal so groß wie die Anzahl der in dem Filter eingefangenen Leukocyten. Durch die Verwendung
des Leukocyten-Abtrenninaterials mit einer auf dem faserförmigen Material aufgebrachten,die Erythrocytenhaftung
verhindernden bzw. hemmenden Überzugsschicht kann in dem erfindungsgemäßen Leukocyten-Abtrennverfahren die
Anzahl der in dem Leukocyten-Abtrennfilter verbleibenden Erythrocyten auf einen Wert von etwa 1/15 bis etwa 1/5
der Anzahl der eingefangenen Leukocyten herabgesetzt werden. Der Grund ist der, daß, da die die Erythrocytenhaftung
hemmende bzw. verhindernde Überzugsschicht eine gute Auflösungsgeschwindigkeit bzw. -rate aufweist, die
die Erythrocytenhaftung verhindernde bzw. hemmende Oberflächenschicht
stets nach und nach von der Oberfläche des faserförmigen Materials heruntergelöst wird und Erythrocyten
mit einer hohen Verformbarkeit nicht ander Oberfläche des faserförmigen Materials haften können. Andererseits
wird angenommen, daß Leukocyten, die eine geringe Verformbarkeit und ein hohes Haftvermögen besitzen, an den
Kreuzungspunkten der Fasern oder in engen Zwischenräumen, die zwischen den Fasern entstehen, leicht eingefangen und
festgehalten werden.
Die Beziehung zxtfischen der Auflösungsgeschwindigkeit bzw.
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-rate der die Erythrocytenhaftung hemmenden bzw. verhindernden
Oberflächenschicht und der Anzahl der bei der Abtrennung der Leukocyten eingeschlossenen Erythrocyten
wird nachfolgend näher beschrieben.
Die Fig. 9 zeigt ein Diagramm, welches die Beziehung zwischen der Auflösungsgeschwindigkeit bzw. -rate der Oberflächenschicht
in Wasser und der Konzentration der eingeschlossenen Erythrocyten erläutert. Der Versuch zur Bestimmung
dieser Beziehung wurde wie folgt durchgeführt:
Als Oberflächenschicht-bildende Substanz wurden Gelatine
, Casein, Polyvinylalkohol, Polyvinylpyrrolidon, PoIymethylvinylather
und Saccharid verwendet. Es wurden auch Substanzen verwendet, die sich in bezug auf das Molekulargewicht
voneinander unterschieden, oder solche, die nach dem Aufbringen in Form einer Schicht auf das faserförmige
Material vernetzt wurden. Als faserförmiges Material wurden Polyacrylnitrilfasern mit einem durchschnittlichen
Durchmesser von 8,2 um verwendet. Die Fasern wurden ausreichend geöffnet und 0,26 g der geöffneten Fasern wurden
in einen Behälter mit einem Durchmesser von 10 mm und einer Länge von 25 mm eingefüllt (eingepackt) zur Herstellung
eines Filters. Jede Substanz wurde in Form einer Schicht auf das faserförmige Material aufgebracht durch
Herstellung einer isotonischen Lösung, die 3,5 % der Beschichtungs
subs tanz enthielt(die Konzentration wurde auf 2,5 % herabgesetzt, wenn die Beschichtungssubstanz bei
einer Konzentration von 3,5 % eine hochviskose Lösung ergab')}Und
Zirkulierenlassen durch den Filter mit einer Strö-
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mungsgeschwindigkeit von 5 ml/min, für einen Zeitraum von
5 Minuten.
Die Abtrennung der Leukocyten wurde wie folgt durchgeführt:
Zuerst wurden 5 ml Blut mit einer Strömungsgeschwindigkeit von 1 ml/min, bei 37 C durch den Filter laufengelassen
und dann wurden 20 ml einer physiologischen Kochsalzlösung mit ein»r Strömungsgeschwindigkeit von 5 ml/min,
durch den Filter laufen gelassen. Danach wurden 2 ml einer physiologischen Kochsalzlösung mit einer sehr hohen
Geschwindigkeit durch den Filter laufen gelassen, um die eingefangenen Leukocyten sofort abzutrennen (zurückzugewinnen)
. Die Erythrocytenkonzentration in der abgetrennten Flüssigkeit wurde bestimmt und auf der Ordinate als
Konzentration der darin enthaltenen Erythrocyten aufgetragen, während die Auflösungsgeschwindigkeit der Beschichtungssubstanzen,
bestimmt nach den vorstehend beschriebenen Verfahren,auf der Abszisse aufgetragen wurde,
wobei man ein Diagramm gemäß Fig. 9 erhielt.
In der Fig. 9 sind bei A die Ergebnisse angegeben, die erhalten wurden bei Verwendung von Gelatine (in Wasser
unlöslich gemacht) als Oberflächenschicht-bildende Substanz und bei B, C, D, E, F, G, H und I sind die Ergebnisse
angegeben, die erhalten wurden, wenn Polyvinylalkohol (mit einem Polymerisationsgrad von 1200), Gelatine
frit einem Molekulargewicht von 110 000), Polymethylvinyläther,
Gelatine (mit einem Molekulargewicht von 60 000)
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oder Polyvinylpyrrolidon (mit einem Molekulargewicht von 36 000) oder Casein, Polyvinylalkohol (mit einem Polymerisationsgrad
von 500), Gelatine (mit einem Molekulargewicht von 30 000), ein Saccharid oder Gelatine (mit
einem Molekulargewicht von 4 000 bis 7 000) und Polyvinylpyrrolidon (mit einem Molekulargewicht von 40 000)
jeweils als Oberflächenschicht-bildende Substanz verwendet
wurden.
Aus den in der Fig, 9 dargestellten Ergebnissen geht ohne weiteres hervor, daß dann, wenn die Auflösungsgeschwindigkeit
der Beschichtungssubstanz in Wasser innerhalb des
Bereiches von 0,3 bis 1,0 rag/min, χ cm liegt, die Konzentration
der darin enthaltenen Erythrocyten auf unter lOOO/yul herabgesetzt wird. Um die Konzentration der darin
enthaltenen Erythrocyten ständig bei einem Wert unter 1000/^ul zu halten, liegt die Auflösungsgeschwindigkeit
vorzugsweise innerhalb des Bereiches von 0, 4 bis 0,9 mg/min, χ cm . Außerdem geht daraus ohne weiteres hervor,
daß dann, wenn' die gleiche Beschichtungssubstanz, wie z.
B. Polyvinylpyrrolidon oder Gelatine, verwendet wird, durch starke Erhöhung oder Herabsetzung der Auflösungsgeschwindigkeit durch Änderung des Molekulargewichtes
oder der Vernetzung der Beschichtungssubstanz der Effekt der Herabsetzung der Konzentration der darin enthaltenen
Erythrocyten vermindert wird.
Die Erfindung wird in den folgenden Beispielen näher erläutert, ohne jedoch darauf beschränkt zu sein.
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In jedem der folgenden Beispiele wurde Blut mit zugesetztem Heparin, hergestellt durch Zugabe von 5 Einheiten Heparin
zu 1 ml Blut, das von einem gesunden Kann stammte, als Blut verwendet. In diesem Blut betrug die Anzahl der
Erythrocyten 4 100 000 bis 4 800 000 pro pi Blut und die
Anzahl der Leukocyten betrug 5 000 bis 8 500 pro ail Blut (die Anzahl der Lymphocyten betrug 25 bis 45 % der Gesatntanzahl
der Leukocyten). Die Anzahl der Blutplättchen betrug
130 000 bis 320 000 pro ul Blut.
Der Versuch der Abtrennung von Leukocyten wurde durchgeführt unter Verwendung der in Fig. 7 dargestellten Versuchsapparatur.
Zuerst wurden 0,26 g Polyacrylnitrilfasern mit einem durchschnittlichen Durchmesser von 8,2 inn
in einen Behälter mit einem Durchmesser von 10 mm und einer Länge von 25 mm eingefüllt (hineingepackt) und eine
wäßrige physiologische Kochsalzlösung, die 2,5 g/dl Polyvinylpyrrolidon (mit einem Molekulargewxcht von
360 000) mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 0,62
mg/min, χ cm in Wasser enthielt, wurde in den Behälter
eingefüllt zur Herstellung eines Leukocyten-Abtrennfilters* Dann wurden 3 ml Menschenblut mit zugesetztem Heparin
mittels einer Pumpe 8 mit einer Strömungsgeschwindigkeit von 1 ml/min, durch den Filter 7 laufen gelassen
und danach wurden 20 ml der physiologischen Kochsalzlösung mit einer Strömungsgeschwindigkeit von 5 ml/min,
durch den Filter 7 "laufengelassen, um die Erythrocyten
auszuwaschen. Anschließend wurde ein mit 2 ml der physio-
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logischen Kochsalzlösung beschickter Injektor an einer Auslaßöffnung 15 des Filters 7 befestigt und die physiologische
Kochsalzlösung wurde heftig in den Filter 7 eingespritzt, um zu bewirken, daß die in dem Filter 7 eingefangenen
Leukocyten schnell aus dem Filter 7 ausflössen« Bei der Untersuchung der abgetrennten Flüssigkeit
wurde gefunden, daß 40 % Leukocyten abgetrennt (gewonnen) wurden und daß die Anzahl der in den abgetrennten (gewonnenen)
Leukocyten enthaltenen Erythrocyten 1/5 der Anzahl der abgetrennten (gewonnenen) Leukocyten betrug, was einer
Konzentration von 600/pl entsprach.
Der Versuch wurde auf die gleiche Weise wie in Beispiel 1 durchgeführt, wobei diesmal jedoch anstelle von Polyvinylpyrrolidon
(mit einem Molekulargewicht von 360 000) mit
2 einer Auflösungsgeschwindigkeit von 0,62 mg/min, χ cm ,
wie es in Beispiel 1 verwendet worden war, Polyvinylpyrrolidon (mit einem Molekulargewicht von 40 000) mit einer
Auflösungsgeschwindigkeit von 1,2 mg/min, χ cm in Wasser
verwendet wurde. Die Leukocyten wurden in einer Menge von 42 % abgetrennt bzw. gewonnen, die Anzahl der
darin enthaltenen Erythrocyten war jedoch 5 mal größer als die Anzahl der gewonnenen Leukocyten, was einer Konzentration
von 18 OOO/jul entsprach.
Der Versuch wurde auf die gleiche Weise wie in Beispiel 1
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durchgeführt, wobei diesmal jedoch überhaupt keine physiologische Kochsalzlösung von Polyvinylpyrrolidon eingefüllt
wurde. Die Leukocyten wurden in einer Menge von 44 % gewonnen
(abgetrennt), die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten war jedoch 7,6 mal so groß wie die Anzahl
der gewonnen (abgetrennten) Leukocyten, was einer Konzentration von 25 OOOAil entsprach.
Der Versuch wurde auf die gleiche Weise wie in Beispiel 1 durchgeführt, wobei diesmal anstelle der wäßrigen physiologischenKochsalzlösung,die
2,5 g/dl Polyvinylpyrrolidon mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 9,62 mg/min.
2
χ cm in Wasser enthielt, eine wäßrige physiologische Kochsalzlösung verwendet wurde, die 3,5 g/dl Natriumcasein mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 0,63 mg/min.
χ cm in Wasser enthielt, eine wäßrige physiologische Kochsalzlösung verwendet wurde, die 3,5 g/dl Natriumcasein mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 0,63 mg/min.
2 !
χ cm in Wasser enthielt. Die Leukocyten wurden in einer Menge von 39 % gewonnen (abgetrennt) und die Anzahl dar
darin enthaltenen Erythrocyten betrug 1/6 der Anzahl der gewonnen (abgetrennten) Leukocyten, was einer Konzentration
von 500/ul entsprach.
Der Versuch wurde auf die gleiche Weise wie in Beispiel
1 durchgeführt, wobei diesmal jedoch anstelle der wäßrigen physiologischen Kochsalzlösung, die 2,5 g/dl Polyvinylpyrrolidon
mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 0,62 mg/min, χ cm in Wasser enthielt, eine wäßrige phy-
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siologische Kochsalzlösung verwandet wurde, die 3,5 g/dl Polyvinylalkohol (mit einem Polymerisat ions grad von 500)
mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 0,61 mg/min, χ
2
cm in Wasser enthielt. Die Leukocyten wurden in einer Menge von 42 % <awonnen (abgetrennt) und die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten betrug 1/8 der Anzahl der gewonnenen (abgetrennten) Leukocyten, was einer Konzentration von 4ΟθΛι1 entsprach.
cm in Wasser enthielt. Die Leukocyten wurden in einer Menge von 42 % <awonnen (abgetrennt) und die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten betrug 1/8 der Anzahl der gewonnenen (abgetrennten) Leukocyten, was einer Konzentration von 4ΟθΛι1 entsprach.
Vergleichsbeispiel 3
Der Versuch wurde auf die gleiche Weise wie in Beispiel 3 durchgeführt, wobei diesmal jedoch anstelle des Polyvinylalkohole
(mit einem Polymerisationsgrad von 500) mit
2 einer Auf lösungs geschwindigkeit von 0,61 mg/min, χ cm
ein Polyvinylalkohol (mit einem Polymerisationsgrad von
1200) mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 0,27 mg/-
min. χ cm in Wasser verwendet wurde. Die Leukocyten wurden
in einer Menge= von 40 % gewonnen (abgetrennt), die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten war jedoch im
wesentlichen gleich der Anzahl der gewonnenen (abgetrennten) Leukocyten, was einer Konzentration von 3000/ul entsprach.
Der Versuch wurde auf die gleiche Weise wie in Beispiel 1 durchgeführt, wobei diesmal jedoch anstelle der wäßrigen
physiologischen Kochsalzlösung, die 2,5 g/dl Polyvinylpyrrolidon mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 0,62
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mg/min, x cm in Wasser enthielt, eine wäßrige physiologische
Kochsalzlösung verwendet wurde, die 3,5 g/dl Gelatine (mit einem Molekulargewicht von 60 000 ) mit einer
2 Auflösungsgeschwindigkeit von O,62mg/min. χ cm in Wasser
enthielt. Die Leukocyten wurden in einer Menge von 38 % gewonnen (abgetrennt) und die Anzahl der darin enthaltenen
Erythrocyten betrug 1/29 der Anzahl der gewonnenen (abgetrennten) Leukocyten, was einer Konzentration von
lOO/iil entsprach.
Vergleichsbeispiel 4
Der Versuch wurde auf die gleiche Weise wie in Beispiel 4 durchgeführt, wobei diesmal jedoch anstelle der Gelatine
(mit einem Molekulargewicht von 60 000) mit einer Auflösungsgeschwindigkext
von 0,62 mg/min, χ cm in Wasser ein Zersetzungsprodukt (mit einem Molekulargewicht von 4 000
bis 7 000) mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 1,15
2
mg/min, χ cm In Wasser verwendet wurde, das durch enzyrnatische Zersetzung der obigen Gelatine erhalten worden war. Die Leukocyten wurden in einer Menge von 40 % gewonnen (abgetrennt), die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten war jedoch 8 mal so groß wie die Anzahl der gewonnenen (abgetrennten) Leukocyten, was einer Konzentration von V: 000/jil entsprach.
mg/min, χ cm In Wasser verwendet wurde, das durch enzyrnatische Zersetzung der obigen Gelatine erhalten worden war. Die Leukocyten wurden in einer Menge von 40 % gewonnen (abgetrennt), die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten war jedoch 8 mal so groß wie die Anzahl der gewonnenen (abgetrennten) Leukocyten, was einer Konzentration von V: 000/jil entsprach.
Der Versuch wurde auf die gleiche Weise wie in Beispiel 4 durchgeführt, wobei diesmal jedoch anstelle der Gelatine
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(mit einem Molekulargewicht von'60 OOO) mit einer Auflö-
2 sungsgeschwindigkeit von 0,62 mg/min, χ cm in Wasser ein
Zersetzungsprodukt (mit einem Molekulargewicht von 30 000)
2 mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 0,93 mg/min, χ cm
in Wasser verwendet wurde, das durch Zersetzung der obigen Gelatine durch Erhitzen erhalten worden war. Die Leukocyten
wurden in einer Menge von 40 % gewonnen (abgetrennt) und die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten
betrug 1/7 der Anzahl der gewonnenen (abgetrennten) Leukocyten, was einer Konzentration von 900/ul entsprach.
Der Versuch wurde auf die gleiche Weise wie in Beispiel 4 durchgeführt, wobei diesmal jedoch nach dem Beschichten'
der Fasern mit der Gelatine (mit einem Molekulargewicht von 60 000) mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 0,62
g/min, χ cm in Wasser die Gelatine auf den Oberflächen der Fasern mitte]s einer 2 %-igen wäßrigen Lösung von
Glutaraldehyd vernetzt und in Wasser unlöslich gemacht wurde, und dann wurden die beschichteten Fasern als Trennmaterial
verwendet. Die Leukocyten wurden in einer Menge von 44 % gewonnen (abgetrennt), die Anzahl der darin
enthaltenen Erythrocyten war jedoch 5,4 mal so groß x?ie
die Anzahl der gewonnenen(abgetrennten) Leukocyten, was einer Konzentration von 18 000/μ1 entsprach.
Der Versuch wurde auf die gleiche Weise wie in Beispiel 1
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durchgeführt, wobei diesmal jedoch anstelle der wäßrigen physiologischen Kochsalzlösung, die 2,5 g/dl Polyvinylpyrrolidon
mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 0,62 mg/min, χ cm in Wasser enthielt, eine wäßrige physiologische
Kochsalzlösung verwendet wurde, die 3,5 g/dl Polymethylvinyläther mit einer Auflösungsgeschwindigkeit
2
von 0,57 mg/min, χ cm in Wasser enthielt. Die Leukocyten wurden in einer Menge von 40 % gewonnen (abgetrennt) und die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten betrug 1/5 der Anzahl der gewonnenen (abgetrennten) Leukocyten, was einer Konzentration von 700/nl entsprach.
von 0,57 mg/min, χ cm in Wasser enthielt. Die Leukocyten wurden in einer Menge von 40 % gewonnen (abgetrennt) und die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten betrug 1/5 der Anzahl der gewonnenen (abgetrennten) Leukocyten, was einer Konzentration von 700/nl entsprach.
Der Versuch zum Sammeln der Leukocyten wurde durchgeführt unter Verwendung der in Fig. 8 dargestellten Vorrichtung.
Es wurde eine Leukocyten-Abtrennfilter hergestellt durch Einfüllen von 0,3 g eines Leukocyten-Abtrennmaterials in
einer. Behälter mit einem Innendurchmesser von 10 mm und
einer Länge von 26 mm. Die Herstellung des Leukocyten-Abtrennfilter s wurde wie folgt durchgeführt:
Wie in Fig. 10 dargestellt, wurden ein zylindrisches Rohr 31 mit einem Innenhohlraum mit einem Innendurchmesser von
10 mm und einer Länge von 25 mm und Kappen 32 und 33, die mit einer Düse versehen waren, die mit Öffnungen auf beiden
Enden des zylindrischen Rohres 31 in Verbindung stan- ^
den, hergestellt und verwendet.
Als faserförmiges Material 34 wurden 0,26 g Polyacrylnitrilfasern mit einem durchschnittlichen Durchmesser
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von 8 um verwendet. Die Fasern wurden vor ihrer Verwendung genügend geöffnet.
Die Kappe 32 wurde mit dem zylindrischen Rohr 31 verbunden und es wurde ein Maschennetz 35 angeordnet, um das
Vorstehen der Fasern aus dem zylindrischen Rohr 31 zu verhindern. Die offenen Fasern wurden gleichmäßig in das zylindrische
Rohr 31 eingefüllt und es wurde ein weiteres Maschennetz 36 darauf—gelegt. Die Kappe 33 wurde auf das
Rohr 31 aufgesetzt und damit verbunden. Dann wurde, wie in Fig. 11 dargestellt, der auf diese Weise hergestellte
Filter 39 mit einer Vorrichtung zum Zirkulieren einer Beschichtungssubstanz
37 mittels einer Pumpe 38 verbunden.
Als Beschichtunssubstanz 37 wurde eine 7 gew.-%-ige Lösung
von Gelatine (mit einem Molekulargewicht von 110 000) mit einer Auflösungsgeschwindigkeit von 0,49 mg/-
min. χ cm verwendet und die Lösung wurde mit einer Strömungsgeschwindigkeit
von 5 ml/min, etwa 2 Minuten lang bei Raumtemperatur mittels der Pumpe 38 im Innern des
Filters 39 zirkulieren gelassen. Während dieser Zirkulierung wurde der Filter 39 leicht geklopft, um die
Luft aus dem Filter genügend zu entfernen.
Dann wurde, wie in Fig. 12 dargestellt, ein Abstandsstück 41 in ein Zentrifugenrohr 40 eingesetzt und der Filter
wurde vertikal aufgerichtet. Die Zentrifugenabtrennung wurde 5 Minuten bei Raumtemperatur unter der Einwirkung
einer Zentrifugalkraft von 350xg unter Verwendung eines Zentrifugenabscheiders vom Schwingrotortyp durchgeführt
zur Entfernung der überschüssigen Menge der Gelatinelösung.
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Dann wurde der Filter in einen Vakuumtrockner eingesetzt und 24 Stunden lang bei Raumtemperatur getrocknet. Nach
der Zentrifugenabtrennung waren die Fasern in der Rohrleitung 31 nicht geschrumpft und nach dem Trocknen wurde
auf die gesamte Oberfläche des faserförmigen !Materials
eine Überzugsschicht aus Gelatine aufgebracht (das eingebettete abgeschnittene Stück der beschichteten Fasern
wurde hergestellt und durch ein Elektronenmikroskop vom Transmissions-Typ betrachtet).
Ein Filter 16, wie er in Fig. 8 dargestellt ist, zur Abtrennung
von Monocyten und Granulocyten wurde hergestellt durch Einfüllen von 0,88 g einer vliesartigen Masse aus
Polyamidfasern mit einem durchschnittlichen Durchmesser von 20,8 um in einen Behälter mit einem Innendurchmesser
von 10 mm und einer Länge von 75 mm.
Wie in der Fig. 8 dargestellt, wurde eine physiologische Kochsalzlösung 10 mittels der Pumpe 8 in den Filter If.
zum Einfangen von Monocyten und Granulocyten und in den Leukocyten-Abtrennfilter 7 eingeführt und dann wurde die
Einlaßleitung 11 auf den Behälter 12 übertragen und in
den Filter 16 zum Einfangen der Monocyten und Granulocyten wurden 5 ml Menschenblut 13 mit zugesetztem Heparin,
das bei 37 C gehalten wurde, mit einer Strömungsgeschwindigkeit von 1 ml/min, eingeführt. Dann wurde die
Einlaßleitung 11 auf den Behälter 17 übertragen und ein Silikonöl 18 wurde mit einer Strömungsgeschwindigkeit
von lml/min. hindurchgeführt, um das in dem Filter 16
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verbleibende Blut in den Leukocyten-Abtrennfilter 7 zu überführen. Danach wurde derFilter 16 zum Einfangen von
Monocyten und Granulocyten herausgenommen und es wurden 20 ml einer physiologischen Kochsalzlösung 10 mit einer
Strömungsgeschwindigkeit von 5 ml/min, durch die Einlaßleitung 19 in den Leukocyten-Abtrennfilter 7 eingeführt,
um den Filter 7 auszuwaschen. Dann wurde der Leukocyten-Abtrennfilter
7 herausgenommen und ein mit 2 ml einer physiologischen Kochsalzlösung beschickter Injektor wurde
an der Einlaßleitung 19 des Leukocyten-Abtrennfilters 7 befestigt. Die physiologische Kochsalzlösung in dem Injektor
wurde fest in den Filter 7 eingespritzt und die in dem Filter 7 eingefangenen Leukocyten flössen dadurch
schnell aus dem Filter 7 aus. Beim Betrachten der abgetrennten (gewonnenen) Flüssigkeit wurde festgestellt,
daß Lymphocyten in einer Menge von 15 % gewonnen (abgetrennt)
wurden und daß die Menge der darin enthaltenen Monocyten und Granulocyten 8 % betrug, bezogen auf die
Lymphocyten. Jede der Anzahlai der darin enthaltenen Erythrocyten und Blutplättchen betrug 1/10 der Anzahl der
gewonnensn(abgetrennten) Lymphocyten. Die Erythrocyten-Konzentration
betrug 75/ul.
Der Versuch wurde auf die gleLche Weise wie in Beispiel
1 durchgeführt, wobei diesmal jedoch die Polyacrylnitrilfasern nicht mit der wäßrigen Gelatinelösung beschichtet
wurden. Die Lymphocyten wurden in einer Menge von 14 % gewonnen (abgetrennt) und die Menge der in den Lymphocyten
enthaltenen Monocyten und Granulocyten betrug 6 %,
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die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten war jedoch
14 mal größer als die Anzahl der abgetrennten (gewonnener?) Lymphocyten und die Anzahl der darin enthaltenen Blutplättchen
betrug 4/10 der Anzahl der gewonnenen (abgetrennten) Lymphocyten. Die Erythrocytenkonzentration betrug
10 OOO/jul.
Ein Leukocyten-Abtrennfilter wurde- hergestellt durch
Hindurchführen eines Bündels von Polyacrylnitril-Filatnenten,
die jeweils einen durchschnittlichen Durchmesser von 8 pm hatten, im flach ausgebreiteten Zustand durch einen
Behälter, der mit einer 7 gew.-%-igen wäßrigen Lösung der gleichen Gelatine wie sie in Beispiel 7 verwendet
worden war, gefüllt war, und die beschichtete Oberfläche der Fasern wurde mit Heißluft getrocknet und die Fasern
wurden aufgewickelt. Dann wurden die Fasern genügend getrocknet und gekräuselt und durch Verwendung einer Kardiervorrichtung
geöffnet. Der Öffnungsvorgang wurde in zweckmäßiger Weise durchgeführt, der Gelatineüberzug löste
sich jedoch hier und dort von den Oberflächen der Fasern ab (die Ablösung wurde durch Betrachten unter Elektronenmikroskopen
vom Abtast- und Transmissions-Typ festgestellt),
Polyacrylnitrilfasern mit einem durchschnittlichen Durchmesser von 8 um wurden geöffnet und in eine 7 gew.-%-ige
wäßrige Lösung der gleichen Gelatine wie sie in Beispiel
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7 verwendet x^orden war, eingetaucht. Die Fasern wurden
aus der Lösung herausgenommen, zentrifugiert und geöffnet.
Da jedoch die Trocknung nicht vor dem Öffnen durchgeführt wurde, konnte das Öffnen nicht in geeigneter
Weise durchgeführt werden, weil die Fasern miteinander verbunden waren. Deshalb wurden die Fasern 16 Stunden lang bei 50 C getrocknet und dann erneut geöffnet.
Als die Fasern mit Elektronenmikroskopen vom Abtast- und Tranmissions-Typ geprüft wurden, wurde gefunden, daß
der Gelatineüberzug sich hier und dort von den Oberflächen der Fasern abgelöst hatte.
In der gleichen Versuchsapparatur, wie sie in Beispiel 1 verwendet worden war, wurde der Versuch auf die gleiche
Weise wie in Beispiel 7 durchgeführt, wobei diesmal jedoch anstelle von Gelatine Casein verwendet wurde. Die
Auflösungsgeschwindigkeit des in dem Versuch verwendeten
2
Caseins betrug 0,43 mg/min, χ cm in Wasser. Die Lymphocyten wurden in einer Menge von 18 % gewonnen (abgetrennt) und die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten betrug 1/5 der Anzahl der gewonnerer(abgetrennten) Lymphocyten, was einer Erythrocytenkonzentration von 180/ul entsprach.
Caseins betrug 0,43 mg/min, χ cm in Wasser. Die Lymphocyten wurden in einer Menge von 18 % gewonnen (abgetrennt) und die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten betrug 1/5 der Anzahl der gewonnerer(abgetrennten) Lymphocyten, was einer Erythrocytenkonzentration von 180/ul entsprach.
Unter der Verwendung der gleichen Versuchsapparatur wie in Beispiel 7 wurde der Versuch auf die gleiche Weise
wie in Beispiel 7 durchgeführt, wobei diesmal anstelle
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der wäßrigen Lösung, die 7 g/dl Gelatine enthielt, eine wäßrige Lösung verwendet wurde, die 3,5 g/l Polyvinylalkohol
enthielt. Die Auflösungsgeschwindigkeit des in dem Versuch verwendeten Polyvinylalkohole betrug 0,77
2
rag/min, χ cm in Wasser. Die Lymphocyten wurden in einer Menge von 16 % gewonnen (abgetrennt). Die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten betrug 1/4 der Anzahl der gewonnen (abgetrennten) Lymphocyten, was einer Erythrocytenkonzentration von 200/ul entsprach.
rag/min, χ cm in Wasser. Die Lymphocyten wurden in einer Menge von 16 % gewonnen (abgetrennt). Die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten betrug 1/4 der Anzahl der gewonnen (abgetrennten) Lymphocyten, was einer Erythrocytenkonzentration von 200/ul entsprach.
Baispiel 10
Unter Verwendung der gleichen Versuchsapparatur wie in Beispiel 7 wurden 3,3 g einer vliesartigen Masse von Polyesterfasern
mit einem durchschnittlichen Durchmesser von 8,5 um in einen Behälter mit einem Innendurchmesser von 18 mm
und einer Länge von 100 mm eingefüllt und eine wäßrige physiologische Kochsalzlösung, die 2 g/dl Polyvinylpyrrolidon
enthielt, wurde in den Behälter eingeführt zur Herstellung eines Leukocyten-Abtrennfilters. Die Auflösungs
geschwindigkeit dieses Polyvinylpyrrolidone betrug
0,5 mg/min, χ cm in Wasser. Dann wurden 100 ml Menschenblut
mit zugesetztem Heparin mit einerStrömungsgeschwindigkeit von 5 ml/min, durch den auf diese Weise hergestellten
Leukocyten-Abtrennfilter hindurchlaufen gelassen und danach wurden 200 ml einer physiologischen Kochsalzlösung
mit einer Strömungsgeschwindigkeit von 10 ml/min, durch den Filter laufen gelassen, um die Erythrocyten
auszuwaschen. Anschließend wurden 100 ml einer Plasma enthaltenden physiologischen Lösung mit einer Strömungs-
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geschwindigkeit von 10 ml/min, durch den Filter laufen
gelassen und die Leukocyten in dem Filter wurden gewonnen (abgetrennt) unter Anwendung einer äußeren physikalischer*
Kraft auf den Filter. Bei der Untersuchung der gewonnenm (abgetrennten) Flüssigkeit wurde festgestellt,
daß die Ltukocyten in einer Menge von 54 % gewonnen (abgetrennt) νorden waren und daß die Anzahl der darin enthaltenen
Ervthrocyten 1/13 der Anzahl der gewonnenen (abgetrennten)
J-mkocyten betrug, was einer Erythrocytenkonz en trat ion von 200/jul entsprach.
Der Versuch wurde u ter den gleichen Bedingungen wie in
Beispiel 10 durchgeführt, wobei diesmal jedoch 6 g Polyesterfasern
mit eintTi dirchschnittlichen Durchmesser
von 13,5 um als faserf?.-miges Substrat verwendet wurden.
Die Leukocyten wurden in "einer Menge von 40 % gewonnen (abgetrennt) und die Anzahl der darin enthaltenen Erythrocyten
betrug 2/5 derAm^hl der gewonnenen (abgetrennten) Leukocyten, was einer ^ythrocytenkonzentration von
800/ul entsprach.
Wie aus der vorstehenden Erläutt-ung hervorgeht, kann
die Anzahl der in den gewonnenen 'abgetrennten) Leukocyten enthaltenen Erythrocyten dra tisch herabgesetzt
werden, wenn die Leukocyten aus eii^r Leukocyten enthaltenden
Suspension unter Anwendung de«, er findungs gemäßen Leukocyten-Abtrennverfahrens gesammelt werden, und auch
die Anzahl der darin enthaltenen Blutpi. ttchen kann herabgesetzt werden. Ferner kann eine Abtrenrz.ng durch einfache
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Arbeitsgänge erzielt werden und die für die Vervollständigung
der Abtrennung erforderliche Zeit kam. abgekürzt werden. Die Leukocyten werden deshalb durch diνAbtrennungsbehandlung
nicht beeinflußt. Es hat sich g.'.^eigt,
daß dann, wenn Leukocyten, die erfindungsgemäß au-etrennt
(gewonnen) worden sind, für verschiedene klinische Tests und Prüfungen verwendet werden, die Zuverlässigkeit erheblich
verbessert werden kann.
Claims (18)
1. Material zur Abtrennung von Leukocyten von einer Leukocyten
enthaltenden Suspension, dadurch gekennzeichnet, daß es sich dabei handelt um ein faserförmiges
Material mit einer Oberflächenschicht aus einer
Substanz, die in Wasser stufenweise gelöst werden kann.
2. Material nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß
die Substanz der Oberflächenschicht im-getrockneten Zustand
vorliegt.
3. Material nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet,
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- 2 -■ ■ ■ - Γ ~.
3038198
daß die. in Form einer .Schicht: auf-
aufgebrachte Substanz eine?: AufIpsurngsget^hwitLciigkeit;
2 Wasser von 0,3::bis:.lyö mg/min ♦ .^cm
4. Material "nach Anspruch ■ 3y ^dadurch:gefe^nn^eiöhnet..^.daß*
die Auf lösüngsgeschwindigkeit 'in Wasser -Θ^Λ
χ cm -beträgt. ■:/-■ .·"··.·»■/-■ = .-- .-·-.--";%. , :Jr ,;:i:"H -
5. Material nach einem der Ansprüche L bis 4, dadurch gekennzeichnet," daß. es sich bei der...in Form einer -Schicht; ■;.:
auf das faser förmige Material -auf gebrachten: -Substanz., üta: -; _-;
mindestens eine Substanz.;aus. der„Gruppe;.fpiLyvinylalkphoJ5^. .-.
Polyvinylpyrrolidon, Polynxethylvinyläther, Gasein und Ge- latine -harrdelt. -.· ; '=- ■<: ·!:.·-■ ■.·-/■ ^;-, -^: i··". ■ -..-.· .·■ .: ·-".;
6· Material nach'1 einem der, Ansprieche 1 bis 5,-<ladurch. ge-·
kennzeichnet,- daß es sich bei dem fäserf.öjrmigen Material . '
um mindestens ein Material aus der Gruppe.der synthetischen
Fasern, der halbsynthetischen Fasern, der regenerierten CeI-lulosefasern,
der Naturfasern und der anorganischen Fasern handelt. · ' ' " ■".·.·
7. Material nach einem der. Ansprüche 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet,
daß das faserförmige Material einen durchschnittlichen Fas er durchmesser von nicht mehr als 60 um
hat.
8. Material nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, daß
der durchschnittliche Faserdurchmesser innerhalb des Bereiches von 5 bis 10 ium liegt.
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9. Material zur Abtrennung von Leukocyten aus einer Leukacyten
enthaltenden Suspension, dadurch gekennzeichnet, daß
es sich dabei handelt um synthetische Fasern mit einem durchschnittlichen
Faserdurchmesser von 5 bis 10 um, die eine Oberflächenschicht aus einem Polyvinylalkohol und/oder Gelatine
aufweisen, die eineAuflösungsgeschwindigkeit in Wasser
von 0,4 bis 0,9 mg>
neten Zustand vorliegt,
neten Zustand vorliegt,
2
ser von 0,4 bis 0,9 mg/miu. χ cm aufweist und im getrock-
ser von 0,4 bis 0,9 mg/miu. χ cm aufweist und im getrock-
10. Verwendung des Materials nach einem der Ansprüche 1 bis 9 zur Abtrennung'von. Leukocyten oder Lymphocyten von
einer Leukocyten enthaltenden Suspension.
11. Filter zur Abtrennung von Leukocyten von einer Leukocyten
enthaltenden Suspension, dadurch gekennzeichnet, daß es sich dabei handelt um ein in einen Behälter eingefülltes
faserförmiges Material mit einer Oberflächenschicht aus
einer Substanz, die stufenweise in Wasser gelöst werden
karvn.
12. Filter nach Anspruch 11, dadurch gekennzeichnet, daß das faserförmige Material in einer Schüttdichte von 0,04
bis 0,4 g/cm in den Behälter eingefüllt ist.
13. Filter nach Anspruch 11 oder 12, dadurch gekennzeichnet, daß es sich dabei handelt um ein faserförmiges Material mit
einem durchschnittlichen Faserdurchmesser von 5 bis 10 /um, das eine Oberflächenschicht aus einer Substanz^ die in Wasser
eine Auflösungsgesehwindigkeit von 0,4 bis 0,9 mg/min.
ο
χ cm aufweist, handelt, das in einer Schüttdichte von 0,04
χ cm aufweist, handelt, das in einer Schüttdichte von 0,04
130017/0764
bis 0,25 g/c;m; in eii3en.3ehälter.%.eingefü.llfc ist*.,.,....-,·/. -,;·-
14. Filter nach Anspruch 13,,. dadurch gekennzeichnet,, t-daßr
das faserförmige Material aus synthetischen Fasern besteht und im getrockneten Zustand in den Behälter eingefüllt ist,
und daß es sich bei der Beschichtungssubstanz um Polyvinylalkohol
und/oder Gelatine handelt.
15. Verfahren zur Herstellung eines Filters zur Abtrennung von Leukocyten von einer Leukocyten enthaltenden Suspension,
insbesondere eines solchen nach einem der Ansprüche 11 bis 14, dadurch gekennzeichnet, daß es die folgenden Stufen
umfaßti
Füllen eines Behälters mit offenen Fasern,
Inkontaktbringen der eingefüllten Fasern mit einer
Beschichtungslösung,
Entfernen der überschüssigen Menge der aufgebrachten
Beschichtungslösung von den eingefüllten Fasern und anschließendes Trocknen der in Form einer Schicht aufgebrachten
Lösung.
16. Verfahren nach Anspruch 15, dadurch gekennzeichnet, daß die überschüssige Menge der in Form einer Schicht aufgebrachten
Lösung durch Einwirkenlassen einer Zentrifugalkraft
auf die in Form einer Schicht aufgebrachte Lösung von den eingefüllten Fasern entfernt wird.
17. Verfahren nach Anspruch 16, dadurch gekennzeichnet, daß
die Zentrifugalkraft mindestens das 50-fache der Schwerkraft
beträgt.
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18. Verwendung des Leukocyten-Abtrennfilters nach einem
der Anspriidhe 1-1 biö^l^zür'ÄBtrennüftg'vufi I^äiphofeyteri'von
einer Lymphocyten enthaltenden Suspension mit einem vermihaerlfe^£eehäilan
Öraritiföcyten^üüd iföÄoc^t^nV "4 ~ iJ
130017/0764
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Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP54129482A JPS603367B2 (ja) | 1979-10-09 | 1979-10-09 | 白血球分離法および白血球分離材 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE3038196A1 true DE3038196A1 (de) | 1981-04-23 |
DE3038196C2 DE3038196C2 (de) | 1983-09-15 |
Family
ID=15010567
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE3038196A Expired DE3038196C2 (de) | 1979-10-09 | 1980-10-09 | Faserförmiges Filtermaterial zur Abtrennung von Leukocyten aus einer Leukozyten enthaltenden Suspension |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US4416777A (de) |
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DE (1) | DE3038196C2 (de) |
FR (1) | FR2467403A1 (de) |
GB (1) | GB2062498B (de) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3109493A1 (de) * | 1980-03-12 | 1981-12-24 | Asahi Kasei Kogyo K.K., Osaka | Material zur abtrennung von granulozyten |
Families Citing this family (79)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5936963B2 (ja) * | 1981-03-10 | 1984-09-06 | 旭化成株式会社 | T細胞分離材および分離方法 |
EP0160640A1 (de) * | 1982-12-22 | 1985-11-13 | University Of Queensland | Mikrotest für zelladhäsion |
JPS60193468A (ja) * | 1984-03-15 | 1985-10-01 | 旭メデイカル株式会社 | 白血球除去フイルタ− |
EP0155003B1 (de) * | 1984-03-15 | 1990-07-04 | ASAHI MEDICAL Co., Ltd. | Filtereinheit zum Abtrennen von Leukozyten |
JPS6138608A (ja) * | 1984-07-31 | 1986-02-24 | Fuji Photo Film Co Ltd | 全血からの血漿の分離器具および分離方法 |
JPH0720986B2 (ja) * | 1985-10-07 | 1995-03-08 | 日本ケミカルリサ−チ株式会社 | 生理活性物質の製造法 |
US4936998A (en) * | 1986-03-28 | 1990-06-26 | Asahi Medical Co., Ltd. | Filter medium for selectively removing leucocytes |
US5104526A (en) * | 1987-01-30 | 1992-04-14 | Baxter International Inc. | Centrifugation system having an interface detection system |
US6780333B1 (en) | 1987-01-30 | 2004-08-24 | Baxter International Inc. | Centrifugation pheresis method |
AU620329B2 (en) * | 1987-04-09 | 1992-02-20 | Terumo Kabushiki Kaisha | B lymphocyte separating material and body fluid clarifying material |
IL86892A (en) * | 1987-07-08 | 1993-04-04 | Lafon Labor | Filter comprising a material obtained by freeze-drying, its preparation and its use, especially in pharmacy |
US4925572A (en) * | 1987-10-20 | 1990-05-15 | Pall Corporation | Device and method for depletion of the leukocyte content of blood and blood components |
IL88081A0 (en) * | 1987-10-20 | 1989-06-30 | Pall Corp | Device and method for depletion of the leucocyte content of blood and blood components |
US4923620A (en) * | 1987-10-20 | 1990-05-08 | Pall Corporation | Device for depletion of the leukocyte content of blood and blood components |
JP2673567B2 (ja) * | 1987-12-10 | 1997-11-05 | 株式会社日本抗体研究所 | 血液中の顆粒球除去方法及びこれに用いる顆粒球除去装置 |
WO1989006280A1 (en) * | 1988-01-04 | 1989-07-13 | E.I. Du Pont De Nemours And Company | Multiple stage affinity process for isolation of specific cells from a cell mixture |
JP2631483B2 (ja) * | 1988-01-27 | 1997-07-16 | 禎二 鶴田 | T細胞、b細胞の分離採取方法および装置 |
US4880548A (en) * | 1988-02-17 | 1989-11-14 | Pall Corporation | Device and method for separating leucocytes from platelet concentrate |
CA1329559C (en) * | 1988-03-03 | 1994-05-17 | Keiji Naoi | Leukocyte separator and method of making the same |
JPH0238571U (de) * | 1988-09-06 | 1990-03-14 | ||
US5344561A (en) * | 1989-05-09 | 1994-09-06 | Pall Corporation | Device for depletion of the leucocyte content of blood and blood components |
US5229012A (en) * | 1989-05-09 | 1993-07-20 | Pall Corporation | Method for depletion of the leucocyte content of blood and blood components |
ES2047851T3 (es) * | 1989-05-09 | 1994-03-01 | Pall Corp | Dispositivo y metodo para disminuir el contenido de leucocitos de la sangre completa y de componentes de la sangre. |
US5258126A (en) * | 1989-09-12 | 1993-11-02 | Pall Corporation | Method for obtaining platelets |
KR950010429B1 (ko) * | 1989-09-12 | 1995-09-18 | 폴 코오포레이션 | 사람 수혈용 혈액처리장치 및 방법 |
US5152905A (en) * | 1989-09-12 | 1992-10-06 | Pall Corporation | Method for processing blood for human transfusion |
US5360545A (en) * | 1989-09-12 | 1994-11-01 | Pall Corporation | Filter for obtaining platelets |
US5316674A (en) * | 1989-09-12 | 1994-05-31 | Pall Corporation | Device for processing blood for human transfusion |
US5100564A (en) * | 1990-11-06 | 1992-03-31 | Pall Corporation | Blood collection and processing system |
JP2523938B2 (ja) * | 1989-09-18 | 1996-08-14 | テルモ株式会社 | 血小板純化用フィルタ― |
US5635387A (en) * | 1990-04-23 | 1997-06-03 | Cellpro, Inc. | Methods and device for culturing human hematopoietic cells and their precursors |
US5378624A (en) * | 1990-04-23 | 1995-01-03 | Cellpro, Incorporated | Methods for removing ligands from a particle surface |
US5302299A (en) * | 1990-05-24 | 1994-04-12 | Pall Corporation | Biological semi-fluid processing assembly |
US5126054A (en) * | 1990-05-24 | 1992-06-30 | Pall Corporation | Venting means |
US5863436A (en) * | 1990-05-24 | 1999-01-26 | Pall Corporation | Venting system |
US5362406A (en) * | 1990-07-27 | 1994-11-08 | Pall Corporation | Leucocyte depleting filter device and method of use |
EP0502213B1 (de) * | 1990-09-25 | 2003-03-19 | Asahi Medical Co., Ltd. | Methode und filtersystem zur entfernung von leukozyten |
US5217627A (en) * | 1990-11-06 | 1993-06-08 | Pall Corporation | System and method for processing biological fluid |
US5498336A (en) * | 1991-02-22 | 1996-03-12 | Terumo Kabushiki Kaisha | Leukocyte-removing filter and leukocyte-removing apparatus furnished therewith |
US5139685A (en) * | 1991-03-26 | 1992-08-18 | Gds Technology, Inc. | Blood separation filter assembly and method |
US5549834A (en) * | 1991-12-23 | 1996-08-27 | Baxter International Inc. | Systems and methods for reducing the number of leukocytes in cellular products like platelets harvested for therapeutic purposes |
US5690835A (en) * | 1991-12-23 | 1997-11-25 | Baxter International Inc. | Systems and methods for on line collection of cellular blood components that assure donor comfort |
US5660798A (en) * | 1993-04-20 | 1997-08-26 | Actimed Laboratories, Inc. | Apparatus for red blood cell separation |
US5652148A (en) * | 1993-04-20 | 1997-07-29 | Actimed Laboratories, Inc. | Method and apparatus for red blood cell separation |
US5766552A (en) * | 1993-04-20 | 1998-06-16 | Actimed Laboratories, Inc. | Apparatus for red blood cell separation |
JPH09508823A (ja) * | 1994-01-10 | 1997-09-09 | ヒマシュア,インコーポレイテッド | 血液からの白血球及びウイルス不活性化作用物質の除去装置とプロセス |
US5639376A (en) * | 1994-01-10 | 1997-06-17 | Hemasure, Inc. | Process for simultaneously removing leukocytes and methylene blue from plasma |
US5447689A (en) * | 1994-03-01 | 1995-09-05 | Actimed Laboratories, Inc. | Method and apparatus for flow control |
US5472605A (en) * | 1994-03-10 | 1995-12-05 | Hemasure, Inc. | Filtration device useable for removal of leukocytes and other blood components |
US6010633A (en) * | 1997-03-06 | 2000-01-04 | Hemasure Inc. | Method of preventing air from becoming entrapped within a filtration device |
US6251292B1 (en) | 1994-03-10 | 2001-06-26 | Hemasure, Inc. | Method of preventing air from becoming entrapped within a filtration device |
US5582907A (en) * | 1994-07-28 | 1996-12-10 | Pall Corporation | Melt-blown fibrous web |
JPH10508343A (ja) * | 1994-07-28 | 1998-08-18 | ポール・コーポレーション | 繊維質ウェブ及びその製造方法 |
US6306454B1 (en) | 1994-10-17 | 2001-10-23 | Baxter International Inc. | Method for producing improved medical devices and devices so produced |
US5647985A (en) * | 1994-10-17 | 1997-07-15 | Baxter International Inc. | Whole blood leukodepletion and platelet filter |
US6045701A (en) * | 1994-10-17 | 2000-04-04 | Baxter International Inc. | Method of filtering a fluid suspension with a membrane having a particular coating |
US6746482B2 (en) | 1994-10-17 | 2004-06-08 | Baxter International Inc. | Method for producing medical devices and devices so produced |
US5972217A (en) * | 1994-10-17 | 1999-10-26 | Baxter International Inc. | Blood cell separation devices having a membrane with particular coating |
US5728306A (en) * | 1994-12-23 | 1998-03-17 | Baxter International Inc. | Leukodepletion filter and method for filtering leukocytes from freshly drawn blood |
US5630946A (en) * | 1995-02-15 | 1997-05-20 | Pall Corporation | Method for processing a biological fluid including leukocyte removal in an extracorporeal circuit |
WO1996032178A1 (en) * | 1995-04-13 | 1996-10-17 | Travenol Laboratories (Israel) Ltd. | Leukocyte filtration method and apparatus |
DE69629280T2 (de) * | 1995-12-26 | 2004-04-22 | Asahi Medical Co. Ltd. | Filtrationsmittel zum entfernen von leukocyten |
AU710566B2 (en) * | 1996-03-08 | 1999-09-23 | Csl Limited | Filtration of plasma mixtures using cellulose-based filter aids |
AUPN858596A0 (en) * | 1996-03-08 | 1996-04-04 | Csl Limited | Filtration of plasma precipitates using cellulose filter aid |
TW391881B (en) * | 1996-09-25 | 2000-06-01 | Baxter Int | Method and apparatus for filtering suspensions of medical and biological fluids or the like |
EP0919249B1 (de) * | 1997-11-20 | 2005-01-12 | Nipro Corporation | Blutfiltersatz und zugehöriges Verfahren zur Gewinnung von Blutkomponenten |
US6120474A (en) * | 1997-12-15 | 2000-09-19 | Nissho Corporation | Blood component-recovering apparatus and a method for recovering blood components using the same |
US5989441A (en) | 1997-12-22 | 1999-11-23 | Interferon Science, Inc. | Recovery of functional human leukocytes from recycled filters |
JP2000180443A (ja) * | 1998-12-15 | 2000-06-30 | Fuji Photo Film Co Ltd | 血液濾過残留物の回収方法 |
US6337026B1 (en) | 1999-03-08 | 2002-01-08 | Whatman Hemasure, Inc. | Leukocyte reduction filtration media |
TW200505394A (en) * | 2003-06-06 | 2005-02-16 | Asahi Medical Co | Material promoting wound healing |
CA2704567C (en) * | 2007-12-27 | 2016-01-12 | Toray Industries, Inc. | Fiber construct for treating biological components |
US9968738B2 (en) | 2014-03-24 | 2018-05-15 | Fenwal, Inc. | Biological fluid filters with molded frame and methods for making such filters |
US9782707B2 (en) | 2014-03-24 | 2017-10-10 | Fenwal, Inc. | Biological fluid filters having flexible walls and methods for making such filters |
US9796166B2 (en) | 2014-03-24 | 2017-10-24 | Fenwal, Inc. | Flexible biological fluid filters |
US10159778B2 (en) | 2014-03-24 | 2018-12-25 | Fenwal, Inc. | Biological fluid filters having flexible walls and methods for making such filters |
US10376627B2 (en) | 2014-03-24 | 2019-08-13 | Fenwal, Inc. | Flexible biological fluid filters |
CN106319966B (zh) * | 2016-08-18 | 2019-08-16 | 南京双威生物医学科技有限公司 | 一种白细胞滤膜的处理方法 |
WO2021182575A1 (ja) * | 2020-03-11 | 2021-09-16 | 積水メディカル株式会社 | 白血球濃縮分離デバイス、血液採取容器及び白血球の分離方法 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE2908722A1 (de) * | 1978-03-06 | 1979-09-13 | Asahi Chemical Ind | Verfahren zum abtrennen von leukozyten aus einer leukozytenhaltigen loesung durch filtrierung und vorrichtung |
DE2908721A1 (de) * | 1978-03-06 | 1979-09-13 | Asahi Chemical Ind | Verfahren und vorrichtung zur trennung von lymphozyten enthaltender suspension durch filtrieren |
Family Cites Families (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US2195272A (en) * | 1937-05-28 | 1940-03-26 | Gen Motors Corp | Mineral wool binder |
US2834730A (en) * | 1956-01-18 | 1958-05-13 | Johnson & Johnson | Filter media |
DE2356353C2 (de) * | 1973-11-12 | 1975-07-17 | B. Braun Melsungen Ag, 3508 Melsungen | Vorrichtung zum Filtern von Blut |
DE2516175A1 (de) * | 1975-04-14 | 1976-10-21 | Fresenius Chem Pharm Ind | Blutfilter |
JPS5498095A (en) * | 1978-01-18 | 1979-08-02 | Kuraray Co | Adsorptive blood purifier |
JPS5854130B2 (ja) * | 1978-03-17 | 1983-12-02 | 旭化成株式会社 | 白血球分離法 |
US4256588A (en) * | 1979-11-02 | 1981-03-17 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Separation and recovery of B and T lymphocytes |
US4301118A (en) * | 1980-03-06 | 1981-11-17 | Spectrum Medical Industries, Inc. | Protein concentrator |
-
1979
- 1979-10-09 JP JP54129482A patent/JPS603367B2/ja not_active Expired
-
1980
- 1980-10-02 GB GB8031817A patent/GB2062498B/en not_active Expired
- 1980-10-03 US US06/193,571 patent/US4416777A/en not_active Expired - Lifetime
- 1980-10-08 FR FR8021511A patent/FR2467403A1/fr active Granted
- 1980-10-09 DE DE3038196A patent/DE3038196C2/de not_active Expired
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE2908722A1 (de) * | 1978-03-06 | 1979-09-13 | Asahi Chemical Ind | Verfahren zum abtrennen von leukozyten aus einer leukozytenhaltigen loesung durch filtrierung und vorrichtung |
DE2908721A1 (de) * | 1978-03-06 | 1979-09-13 | Asahi Chemical Ind | Verfahren und vorrichtung zur trennung von lymphozyten enthaltender suspension durch filtrieren |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3109493A1 (de) * | 1980-03-12 | 1981-12-24 | Asahi Kasei Kogyo K.K., Osaka | Material zur abtrennung von granulozyten |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
GB2062498B (en) | 1984-05-23 |
US4416777A (en) | 1983-11-22 |
DE3038196C2 (de) | 1983-09-15 |
JPS5653616A (en) | 1981-05-13 |
JPS603367B2 (ja) | 1985-01-28 |
FR2467403B1 (de) | 1984-08-17 |
GB2062498A (en) | 1981-05-28 |
FR2467403A1 (fr) | 1981-04-17 |
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---|---|---|
DE3038196A1 (de) | Abtrennung von leukocyten oder lymphocyten von einer leikocyten enthaltenden suspension | |
DE2908721C2 (de) | Filtereinheit zum Abtrennen von Lymphozyten aus Lymphozyten enthaltenden Suspensionen | |
DE2908722C2 (de) | Filtereinheit zum Abtrennen von Leukozyten | |
DE69629280T2 (de) | Filtrationsmittel zum entfernen von leukocyten | |
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AU724497B2 (en) | Leukocyte-removing filter medium | |
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