DE102011118018A1 - New minicircle comprising nucleic acid sequence of interest and transposase recognition sequences on both sides of nucleic acid sequence of interest, useful for insertional mutagenesis or genetic transformation of eukaryotic target cell - Google Patents
New minicircle comprising nucleic acid sequence of interest and transposase recognition sequences on both sides of nucleic acid sequence of interest, useful for insertional mutagenesis or genetic transformation of eukaryotic target cell Download PDFInfo
- Publication number
- DE102011118018A1 DE102011118018A1 DE102011118018A DE102011118018A DE102011118018A1 DE 102011118018 A1 DE102011118018 A1 DE 102011118018A1 DE 102011118018 A DE102011118018 A DE 102011118018A DE 102011118018 A DE102011118018 A DE 102011118018A DE 102011118018 A1 DE102011118018 A1 DE 102011118018A1
- Authority
- DE
- Germany
- Prior art keywords
- minicircle
- transposase
- nucleic acid
- recognition sequences
- target cell
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/63—Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
- C12N15/79—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
- C12N15/85—Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/87—Introduction of foreign genetic material using processes not otherwise provided for, e.g. co-transformation
- C12N15/90—Stable introduction of foreign DNA into chromosome
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2800/00—Nucleic acids vectors
- C12N2800/90—Vectors containing a transposable element
Abstract
Description
Technisches GebietTechnical area
Die vorliegende Erfindung liegt im Gebiet der Biotechnologie. Genauer betrifft die Erfindung die Bereitstellung von Minicircle-basierten Vektoren für die Transformation von Zellen mittels Transposons.The present invention is in the field of biotechnology. More particularly, the invention relates to the provision of minicircle-based vectors for the transformation of cells by means of transposons.
Hintergrundbackground
Herkömmliche Verfahren zur Gentherapie verwenden meist Plasmid-DNS als Vektoren zum Einschleusen von erwünschten DNS-Abschnitten in die Zielzellen. Plasmide haben in solchen Anwendungen jedoch mehrere Nachteile. Zum einen besteht die Möglichkeit unkontrollierter Plasmidreplikation nach der Transformation, die zur Verbreitung von auf dem Plasmid vorhandenen Resistenzgenen gegen Antibiotika führen kann. Außerdem enthalten Plasmide weitere prokaryotische DNS-Sequenzen, die z. B. in Eukaryonten zu immunogenen Reaktionen führen können. Nichtvirale Vektoren mit möglichst wenigen prokaryotischen Sequenzen sind daher für die Gentherapie sehr nützlich.Conventional methods for gene therapy usually use plasmid DNA as vectors for introducing desired DNA segments into the target cells. However, plasmids have several disadvantages in such applications. On the one hand, there is the possibility of uncontrolled plasmid replication after transformation, which can lead to the spread of existing on the plasmid resistance genes to antibiotics. In addition, plasmids contain other prokaryotic DNA sequences, the z. B. in eukaryotes can lead to immunogenic reactions. Nonviral vectors with as few prokaryotic sequences as possible are therefore very useful for gene therapy.
Zu diesem Zweck wurden Minicircles entwickelt, worunter man kleine, zirkuläre DNS-Moleküle versteht, die eine gewünschte Expressionskassette und möglichst wenige unerwünschte prokaryotische Sequenzen enthalten. Ein Verfahren zur Herstellung von Minicircles wurde in
Weitere Publikationen beschreiben ebenfalls die Herstellung von Minicircles unter Verwendung anderer Rekombinationssysteme, z. B. in
Zur permanenten genetischen Transformation von Zielzellen kann das Einschleusen von Transpositionskassetten auf einem Vektor dienen, die mittels einer Transposase vom Vektor in eine zelluläre Nukleinsäure überführt werden können.For the permanent genetic transformation of target cells, the introduction of transposition cassettes on a vector can be used, which can be converted by means of a transposase from the vector into a cellular nucleic acid.
Es ist jedoch bekannt, dass in vielen Transposonsystemen die Transpositionseffizienz mit wachsender Länge der Transpositionskassette abnimmt (siehe z. B.
Kurze Beschreibung der ErfindungBrief description of the invention
Die vorliegende Erfindung basiert auf der Idee, die Minicircle-Technologie zur Transfektion von Zellen mit der Transformation mittels Transposonsystemen zu kombinieren. Neben den vorgenannten Vorteilen, die Transfektion mit Minicircles bekanntermaßen bietet, führt das Einschleusen einer Transpositionskassette, z. B. einer Dornröschen-(Sleeping Beauty)-basierten Transpositionskassette, auf einem Minicircle überraschenderweise zu höheren Transpositionssraten als die Einführung auf herkömmlichen Vektoren, wie etwa einem Plasmid.The present invention is based on the idea to combine the minicircle technology for the transfection of cells with the transformation by means of transposon systems. In addition to the aforementioned advantages, which offers known transfection with minicircles, the introduction of a transposition cassette, z. A Sleeping Beauty-based transposition cassette on a minicircle surprisingly at higher transposition rates than the introduction on conventional vectors such as a plasmid.
Dementsprechend bezieht sich die Erfindung auf ein Minicircle umfassend mindestens eine Nukleinsäuresequenz von Interesse, die in eine andere genetische Umgebung transponiert werden kann, und Transposase-Erkennungssequenzen zu beiden Seiten der Nukleinsäure von Interesse, charakterisiert dadurch, dass die Transposase-Erkennungssequenzen von einer spezifischen Transposase, oder dem Derivat einer Transposase, erkannt und zur Rekombination verwendet werden können, wobei die spezifische Transposase vorzugsweise eine Dornröschen-Transposase (Sleeping-Beauty-Transposase) oder eine PiggyBac-Transposase ist.Accordingly, the invention relates to a minicircle comprising at least one nucleic acid sequence of interest that can be transposed into another genetic environment, and transposase recognition sequences on both sides of the nucleic acid of interest, characterized in that the transposase recognition sequences of a specific transposase, or the derivative of a transposase, and can be used for recombination, wherein the specific transposase is preferably a Sleeping Beauty Transposase or a PiggyBac Transposase.
In einer Ausführungsform kann die mindestens eine Nukleinsäuresequenz von Interesse eine Expressionskassette mit mindestens einem Gen, mindestens einer Isolatorsequenz oder einer Kombination davon, oder auch mehrere Gene, mehrere Isolatorsequenzen oder eine Kombination davon umfassen.In one embodiment, the at least one nucleic acid sequence of interest may comprise an expression cassette comprising at least one gene, at least one isolator sequence or a combination thereof, or else several genes, a plurality of isolator sequences or a combination thereof.
Der Minicircle kann mindestens eine Identifikationssequenz, innerhalb oder außerhalb des Bereichs zwischen den Transposase-Erkennungssequenzen, umfassen. Wenn mehrere Identifikationssequenzen vorliegen, können diese identisch oder unterschiedlich sein.The minicircle may comprise at least one identification sequence, inside or outside the region between the transposase recognition sequences. If there are multiple identification sequences, they can be identical or different.
Ferner kann die Sequenz des Minicircles ein Paar Rekombinase-Erkennungssequenzen umfassen, die zu beiden Seiten der Nukleinsäure von Interesse innerhalb der Transposase-Erkennungssequenzen liegen.Further, the sequence of the minicircle may comprise a pair of recombinase recognition sequences located on either side of the nucleic acid of interest within the transposase recognition sequences.
In einer Ausführungsform enthält der Minicircle keinen Selektionsmarker zur Selektion bei der Amplifikation in prokaryotischen Zellen. Der Minicircle kann ein ringförmiges, vorzugsweise ein ringförmiges und superspiralisiertes, DNS-Molekül sein. In one embodiment, the minicircle does not contain a selection marker for selection in amplification in prokaryotic cells. The minicircle may be an annular, preferably an annular and supercoiled, DNA molecule.
In einer weiteren Ausführungsform umfasst die Erfindung auch Parentalplasmide, aus denen irgendein Minicircle gemäß der Erfindung durch Rekombination gewonnen werden kann. Ein Parentalplasmid ist hierbei ein Plasmid, das die komplette Sequenz des gewünschten Minicircles (Minicircle-Region) und zusätzlich ein Plasmidrückgrat (Miniplasmid-Region) enthält, wobei Minicircle-Region und Miniplasmid-Region durch Rekombinase-Erkennungssequenzen getrennt sind, die so angeordnet sind, dass sie von einer Rekombinase spezifisch rekombiniert werden können.In another embodiment, the invention also includes parent plasmids from which any minicircle according to the invention can be recovered by recombination. A parental plasmid is a plasmid containing the complete sequence of the desired minicircle and additionally a plasmid backbone (miniplasmid region), the minicircle region and miniplasmid region being separated by recombinase recognition sequences arranged that they can be specifically recombined by a recombinase.
Die Erfindung bezieht sich auch auf Zellen, die einen Minicircle gemäß einer der erwähnten Ausführungsformen umfassen.The invention also relates to cells comprising a minicircle according to one of the mentioned embodiments.
Unter einem weiteren Gesichtspunkt bezieht sich die Erfindung auf ein Verfahren zur Insertionsmutagenese oder zur genetischen Transformation einer eukaryotischen Zielzelle, das Verfahren umfassend Bereitstellen eines erfindungsgemäßen Minicircles umfassend eine Nukleinsäure von Interesse innerhalb der Zielzelle, und Transfektion der Zielzelle mit einem Vektor umfassend eine Nukleinsäuresequenz, die für eine Transposase kodiert, die für die Transposase-Erkennungssequenzen des Minicircles spezifisch ist, wobei die Expression der Transposase von dem Vektor zur Rekombination der Nukleinsäuresequenz von Interesse mit einer Nukleinsäure der Zielzelle führt.In another aspect, the invention relates to a method of insertional mutagenesis or genetic transformation of a eukaryotic target cell, the method comprising providing a minicircle of the invention comprising a nucleic acid of interest within the target cell, and transfecting the target cell with a vector comprising a nucleic acid sequence encoding encoding a transposase specific for the minicircle transposase recognition sequences, wherein expression of the transposase from the vector results in recombination of the nucleic acid sequence of interest with a nucleic acid of the target cell.
Das Bereitstellen des Minicircles kann durch Transfektion der Zielzelle mit dem Minicircle oder auch durch Erzeugung des Minicircles innerhalb der Zielzelle erreicht werden. Ferner können das Bereitstellen des Minicircles und die Transfektion mit dem Vektor zugleich in einer Kotransfektion oder nacheinander in beliebiger Reihenfolge durchgeführt werden. Die Zielzelle kann eine Wirbeltierzelle, z. B. eine menschliche Zelle, sein.The provision of the minicircle can be achieved by transfecting the target cell with the minicircle or else by creating the minicircle within the target cell. Furthermore, the provision of the minicircle and the transfection with the vector can be carried out simultaneously in a cotransfection or sequentially in any order. The target cell may be a vertebrate cell, e.g. A human cell.
In einer weiteren Ausführungsform umfasst die Erfindung auch Zellen, die durch ein Verfahren gemäß der Erfindung erhalten wurden.In another embodiment, the invention also includes cells obtained by a method according to the invention.
Schließlich umfasst die Erfindung auch ein Kit zur Insertionsmutagenese oder zur genetischen Transformation einer eukaryotischen Zielzelle umfassend einen Minicircle gemäß einer der erwähnten Ausführungsformen und einen Vektor, der für eine Transposase kodiert, die für die Transposase-Erkennungssequenzen des Minicircles spezifisch ist. Für die Transposase-Erkennungssequenzen im Minicircle kann eine Dornröschen-Transposase spezifisch sein und die vom Vektor kodierte Transposase kann diese Dornröschen-Transposase oder ein Derivat davon sein, z. B. die hyperaktive Dornröschen-Transposase SB100X (auch SB100 genannt).Finally, the invention also encompasses a kit for insertion mutagenesis or for genetic transformation of a target eukaryotic cell comprising a minicircle according to one of the mentioned embodiments and a vector which codes for a transposase which is specific for the transposase recognition sequences of the minicircle. For the transposase recognition sequences in the minicircle, a Sleeping Beauty transposase may be specific and the transposase encoded by the vector may be this Sleeping Beauty transposase or a derivative thereof, e.g. For example, the hyperactive Sleeping Beauty Transposase SB100X (also called SB100).
Beschreibung der AbbildungenDescription of the pictures
Ausführliche Beschreibung der ErfindungDetailed description of the invention
MINICIRCLESMINI CIRCLES
Die vorliegende Erfindung betrifft unter einem Gesichtspunkt einen Minicircle, umfassend mindestens eine Nukleinsäuresequenz von Interesse, die in eine andere genetische Umgebung transponiert werden kann, und Transposase-Erkennungssequenzen zu beiden Seiten der Expressionskassette, charakterisiert dadurch, dass die Transposase-Erkennungssequenzen von einer Transposase, oder dem Derivat einer Transposase, erkannt und zur Transposition verwendet werden können. Bevorzugte Transposasen sind Dornröschen-Transposasen (Sleepingbeauty-Transposasen) und PiggyBac-Transposasen.The present invention relates in one aspect to a minicircle comprising at least one nucleic acid sequence of interest that can be transposed into another genetic environment, and transposase recognition sequences on either side of the expression cassette, characterized in that the transposase recognition sequences of a transposase, or the derivative of a transposase, can be recognized and used for transposition. Preferred transposases are sleeping beauty transposases and PiggyBac transposases.
„Minicircle” im Sinne dieser Erfindung bezeichnet eine zirkuläre doppelsträngige DNS, die mindestens eine Nukleinsäuresequenz von Interesse enthält, und im Wesentlichen frei ist von prokaryotischen Nukleinsäuresequenzen, wie sie typischerweise in Plasmiden vorgefunden werden, wie etwa Replikationsstartpunkten, Markergenen oder Resistenzgenen. Insbesondere von Promotoren enthalten Minicircles, wenn überhaupt, nur solche, die zur Expression von Genen der Expressionskassette dienen. Dadurch sind Minicircles besonders geeignet zum Einbringen von gewünschten Nukleinsäuresequenzen in Zielzellen, da Wirkungen unerwünschter DNS-Elemente, wie etwa die Expression oder Rekombination von Resistenzgenen, ausgeschlossen werden können und z. B. überflüssige und funktionslose Sequenzen vermieden werden."Minicircle" in the sense of this invention refers to a circular double-stranded DNA which contains at least one nucleic acid sequence of interest and is substantially free of prokaryotic nucleic acid sequences as typically found in plasmids, such as origins of replication, marker genes or resistance genes. In particular of promoters, minicircles contain, if at all, only those which serve for the expression of genes of the expression cassette. As a result, minicircles are particularly suitable for introducing desired nucleic acid sequences in target cells, since effects of undesired DNA elements, such as the expression or recombination of resistance genes, can be excluded and z. B. superfluous and functionless sequences can be avoided.
Ein „Markergen” im Sinne der Erfindung ist eine DNS-Sequenz, die einer Zelle bzw. einem Organismus unter bestimmten Bedingungen einen Überlebensvorteil verschafft (z. B. Resistenzgene gegen bestimmte Antibiotika) oder zum Auffinden erfolgreich transformierter oder transfizierter Zellen eingesetzt wird. Beispielsweise kann ein Markergen ein Gen zur Expression eines fluoreszierenden Proteins sein, wie etwa GFP.A "marker gene" within the meaning of the invention is a DNA sequence which gives a cell or an organism a survival advantage under certain conditions (eg resistance genes to certain antibiotics) or is used to find successfully transformed or transfected cells. For example, a marker gene may be a gene for expression of a fluorescent protein, such as GFP.
Eine „Nukleinsäuresequenz von Interesse” kann jede doppelsträngige DNS-Sequenz sein, die in eine eukaryotische Zielzelle eingebracht und in eine Nukleinsäure der Zielzelle transponiert werden soll. Bevorzugt ist eine Nukleinsäuresequenz von Interesse eine Expressionskassette für ein oder mehr Gene sein, z. B. 1, 2, 3, 4, 5 oder mehr Gene. In einer anderen Ausführungsform kann es sich um eine Nukleinsäuresequenz handeln, die nicht für ein Protein kodiert. Beispielsweise kann die Nukleinsäuresequenz von Interesse dazu dienen, einen Abstand zwischen zwei DNS-Abschnitten zu generieren oder DNS-bindende Faktoren (z. B.A "nucleic acid sequence of interest" may be any double-stranded DNA sequence that is to be introduced into a eukaryotic target cell and transposed into a nucleic acid of the target cell. Preferably, a nucleic acid sequence of interest is an expression cassette for one or more genes, e.g. B. 1, 2, 3, 4, 5 or more genes. In another embodiment, it may be a nucleic acid sequence that does not encode a protein. For example, the nucleic acid sequence of interest may serve to generate a gap between two DNA segments or DNA binding factors (eg.
Nukleinsäuren oder Proteine) unter bestimmten Bedingungen zu binden bzw. zu entlassen und so in die Genregulation der Zielzelle einzugreifen. Weiterhin kann es sich bei der Nukleinsäuresequenz von Interesse um eine RNS-kodierende Sequenz (z. B. für siRNA oder shRNA) handeln oder um andere genetische Elemente, die in der Zielzelle wirksam werden sollen, z. B. Isolatorsequenzen (also Sequenzmotive, die, wenn sie in das Genom integriert werden, die regulierende Wirkung eines chromosomalen Abschnitts auf seine benachbarten Regionen beeinflussen). Auch kann eine Nukleinsäuresequenz von Interesse eine Markersequenz sein, die im Verlauf einer Insertionsmutagenese in die zelluläre DNS eingebracht – und gegebenenfalls auch wieder entfernt – werden soll. Mittels DNS-Sequenzierung oder PCR ausgehend von der Markersequenz kann dann beispielsweise die Insertionsstelle der Sequenz bestimmt werden. Außerdem kann eine Nukleinsäuresequenz von Interesse eine beabsichtigte Wirkung in Form einer Stimulation zellulärer oder immunologischer Reaktionen (z. B. durch CpG-Motive, siehe
Eine „Expressionskassette” ist eine DNS-Sequenz, die ein oder mehr Gene enthält sowie Sequenzen, die die Expression der Gene kontrollieren. Insbesondere umfasst eine Expressionskassette Promotorsequenzen, offene Leserahmen, die für die zu exprimierenden Polypeptide kodieren, und 3'-untranslatierte Bereiche, die bei Expression in Eukaryoten gewöhnlich eine Polyadenylierungssequenz enthalten. Eine Expressionskassette kann auch mehr als ein Gen (z. B. 2, 3, 4, 5 oder mehr Gene) enthalten, insbesondere einen Cluster von Genen, wie sie gewöhnlich für die Stammzellenprogrammierung verwendet werden. Ein solcher Cluster kann beispielsweise 3, 4 oder 5 Gene enthalten.An "expression cassette" is a DNA sequence that contains one or more genes and sequences that control the expression of the genes. In particular, an expression cassette comprises promoter sequences, open reading frames that encode the polypeptides to be expressed, and 3 'untranslated regions that usually contain a polyadenylation sequence when expressed in eukaryotes. An expression cassette may also contain more than one gene (eg, 2, 3, 4, 5 or more genes), particularly a cluster of genes commonly used for stem cell programming. Such a cluster may contain, for example, 3, 4 or 5 genes.
„Transposase-Erkennungssequenzen” sind solche DNS-Sequenzen, die von einer natürlichen Transposase oder einem Derivat einer natürlichen Transposase erkannt, gebunden und zur Reaktion gebracht werden können, so dass unter geeigneten Bedingungen die Rekombination der sich zwischen zwei Erkennungssequenzen befindenden DNS mit einem anderen (trans) oder demselben (cis) DNS-Molekül ermöglicht wird. Transposasen wiederum sind Enzyme aus Transposon-Systemen, die für den Transfer von Transposons zu anderen Bereichen des Genoms verantwortlich sind. Eine Transposase wird als „spezifisch” für gegebene Erkennungssequenzen betrachtet, wenn sie diese erkennen, binden und zur Reaktion bringen kann, so dass unter geeigneten Bedingungen die Transposition der sich zwischen zwei Erkennungssequenzen befindenden DNS in ein anderes (trans) oder dasselbe (cis) DNS-Molekül ermöglicht wird."Transposase recognition sequences" are those DNA sequences which can be recognized, bound and reacted by a natural transposase or a derivative of a natural transposase such that, under appropriate conditions, the recombination of the DNA located between two recognition sequences with another ( trans) or the same (cis) DNA molecule. In turn, transposases are enzymes from transposon systems responsible for the transfer of transposons to other areas of the genome. A transposase is considered to be "specific" to given recognition sequences if it recognizes, binds and reacts them so that, under appropriate conditions, the transposition of the DNA located between two recognition sequences into another (trans) or the same (cis) DNA Molecule is enabled.
Als „Derivate” einer gegebenen Transposase werden im Sinne dieser Erfindung solche Transposasen verstanden, die für dieselben Erkennungssequenzen spezifisch sind wie die gegebene Transposase. Die Aminosäuresequenz eines Derivats ist im Allgemeinen mit der Aminosäuresequenz der ursprünglichen Transposase verwandt und beispielsweise zu mindestens 60%, oder zu mindestens 70%, oder zu mindestens 80%, oder zu mindestens 90%, oder zu mindestens 95%, oder zu mindestens 99% mit ihr identisch.For the purposes of this invention, "derivatives" of a given transposase are understood as meaning those transposases which are specific for the same recognition sequences as the given transposase. The amino acid sequence of a derivative is generally related to the amino acid sequence of the original transposase and, for example, at least 60%, or at least 70%, or at least 80%, or at least 90%, or at least 95%, or at least 99%. identical with her.
Die Minicircles der Erfindung enthalten mehrere Transposase-Erkennungssequenzen. Bevorzugt enthalten Minicircles der Erfindung zwei Transposase-Erkennungssequenzen, je eine zu beiden Seiten der Nukleinsäuresequenz von Interesse, so dass sich die Nukleinsäure von Interesse innerhalb der beiden Transposase-Erkennungssequenzen befindet. Die Transposase-Erkennungssequenzen können sich unmittelbar an die Nukleinsäure von Interesse anschließen, oder die Sequenzen können durch einen Spacer getrennt sein. Spacer können zu beiden Seiten der Nukleinsäure von Interesse angebracht sein, oder nur an einer Seite. Die Spacer haben vorzugsweise eine Länge von 1–1000 bp, z. B. 1, 10, 20, 50, 100, 200, 300, 400, 500, 600, 700, 800, 900 oder 1000 bp. Wenn zu beiden Seiten der Nukleinsäure von Interesse Spacer vorliegen, können diese gleiche oder unterschiedliche Längen haben. Mit „Spacer” wird hier jegliche DNS-Sequenz bezeichnet, die zwischen der Nukleinsäure von Interesse und den Transposase-Erkennungssequenzen liegt. Insbesondere kann ein Spacer auch eine oder mehrere Identifikationssequenzen wie unten beschrieben umfassen.The minicircles of the invention contain several transposase recognition sequences. Preferably, minicircles of the invention contain two transposase recognition sequences, one on either side of the nucleic acid sequence of interest, such that the nucleic acid of interest is within the two transposase recognition sequences. The transposase recognition sequences may be directly attached to the nucleic acid of interest, or the sequences may be separated by a spacer. Spacers may be attached to either side of the nucleic acid of interest, or only on one side. The spacers preferably have a length of 1-1000 bp, z. 1, 10, 20, 50, 100, 200, 300, 400, 500, 600, 700, 800, 900 or 1000 bp. If spacers are present on both sides of the nucleic acid of interest, they may have the same or different lengths. By "spacer" is meant herein any DNA sequence that is between the nucleic acid of interest and the transposase recognition sequences. In particular, a spacer may also comprise one or more identification sequences as described below.
Je nach Art der Transposase, die zur Transposition verwendet wird, können die Erkennungssequenzen unterschiedlich beschaffen sein. In manchen Ausführungsformen enthalten die Erkennungssequenzen Wiederholungen. Beispiele für verschiedene Arten von Wiederholungen sind lange terminale Wiederholungen (LTRs), inverse Wiederholungen (IRs) oder direkte Wiederholungen (DRs). Wiederholungen dieser Typen können auch kombiniert miteinander Auftreten, zum Beispiel als DRs innerhalb von IRs (IR/DR). Mit „Wiederholungen” werden hierbei nicht nur vollständig identische Sequenzen bezeichnet, sondern auch Sequenzen, die hinreichend ähnlich zueinander sind, dass eine Homologie erkannt werden kann. Beispielsweise sind die in
Dem Fachmann ist auch klar, dass Mutationen in Erkennungssequenzen eingefügt werden können, solange ihre Funkion dadurch nicht in unerwünschtem Ausmaß beeinträchtigt wird. In jedem Fall müssen die Erkennungssequenzen von einer solchen Beschaffenheit sein und in einer solchen Orientierung und Lage im Minicircle angeordnet sein, dass sie von einer spezifischen Transposase erkannt, gebunden und zur Reaktion gebracht werden können, so dass unter geeigneten Bedingungen die Transposition der sich innerhalb der Transposase-Erkennungssequenzen befindenden DNS ermöglicht wird.It will also be apparent to those skilled in the art that mutations can be introduced into recognition sequences, as long as their function is not adversely affected thereby. In any case, the recognition sequences must be of such a nature and be placed in such an orientation and location in the minicircle that they can be recognized, bound and reacted by a specific transposase such that, under appropriate conditions, the transposition within the DNA is Transposase recognition sequences DNA is enabled.
Grundsätzlich können Erkennungssequenzen jeder beliebigen Transposase in Minicircles der Erfindung verwendet werden. Beispiele für Transposasen umfassen PiggyBac-Transposasen, Dornröschen-Transposasen und deren Derivate. Die Aminosäuresequenz eines Derivats ist im Allgemeinen mit der Aminosäuresequenz der ursprünglichen Transposase verwandt und beispielsweise zu mindestens 60%, oder zu mindestens 70%, oder zu mindestens 80%, oder zu mindestens 90%, oder zu mindestens 95%, oder zu mindestens 99% mit ihr identisch. Das Derivat einer Transposase besitzt ebenfalls Transposase-Aktivität und kann für dieselben oder andere Erkennungssequenzen wie die ursprüngliche Transposase spezifisch sein. In principle, recognition sequences of any transposase can be used in minicircles of the invention. Examples of transposases include PiggyBac transposases, Sleeping Beauty transposases and their derivatives. The amino acid sequence of a derivative is generally related to the amino acid sequence of the original transposase and, for example, at least 60%, or at least 70%, or at least 80%, or at least 90%, or at least 95%, or at least 99%. identical with her. The derivative of a transposase also possesses transposase activity and may be specific for the same or different recognition sequences as the original transposase.
In einer bevorzugten Ausführungsform enthält der Minicircle zwei Erkennungssequenzen vom IR/DR-Typ, für welche Dornröschen-Transposasen (auch Sleeping-Beauty- oder SB-Transposasen genannt) spezifisch sind. Die Erkennungssequenzen, die von SB-Transposasen erkannt werden, sind IR-Sequenzen von etwa 210–250 Basenpaaren Länge und enthalten jeweils zwei DR-Sequenzen, eine an jedem Ende, die zu über 80% identisch miteinander sind. Die DR-Sequenz am äußeren, vom Mittelpunkt des zu transponierenden DNS-Abschnitts weiter entfernten, Ende hat hierbei die Sequenz von SEQ ID NO: 1 (siehe auch
Dornröschen-Transposasen (SB-Transposasen) basieren auf der künstlichen Transposase SB10 (SEQ ID NO: 3; siehe auch
Das SB-Transposon-System bietet den besonderen Vorteil, dass es in einer Vielzahl verschiedener Wirbeltierzellen aus unterschiedlichsten Spezies aktiv ist (siehe
Minicircles gemäß der vorliegenden Erfindung können sehr unterschiedliche Größen haben, zum Beispiel zwischen 500 und 15000 bp, wie etwa 500 bp, 1000 bp, 1500 bp, 2000 bp, 2500 bp, 3000 bp, 4000 bp, 5000 bp, 6000 bp, 8000 bp, 10000 bp, 12000 bp oder 15000 bp. Bevorzugt sind Größen zwischen 1000 bp und 6000 bp, besonders bevorzugt sind Größen zwischen 2000 bp und 4000 bp.Minicircles according to the present invention can have very different sizes, for example between 500 and 15000 bp, such as 500 bp, 1000 bp, 1500 bp, 2000 bp, 2500 bp, 3000 bp, 4000 bp, 5000 bp, 6000 bp, 8000 bp , 10000 bp, 12000 bp or 15000 bp. Preferably, sizes between 1000 bp and 6000 bp, more preferably sizes between 2000 bp and 4000 bp.
Vorzugsweise sind die Minicircles der Erfindung superspiralisiert.Preferably, the minicircles of the invention are supercoiled.
Bevorzugte Minicircles der Erfindung können in zwei Bereiche unterteilt werden, einen „inneren” und einen „äußeren” Bereich. Der innere Bereich umfasst die Region umfassend die Nukleinsäure von Interesse bis einschließlich der beiden Transposase-Erkennungssequenzen und ist damit zugleich eine Transpositionskassette. Der äußere Bereich umfasst. die Region zwischen den äußeren Enden der beiden Transposase-Erkennungssequenzen.Preferred minicircles of the invention may be divided into two regions, an "inner" and an "outer" region. The inner region comprises the region comprising the nucleic acid of interest up to and including the two transposase recognition sequences and is thus also a transposition cassette. The outer area includes. the region between the outer ends of the two transposase recognition sequences.
Gemäß der Erfindung sind Minicircles mit äußeren Bereichen ≤ 500 bp bevorzugt. Besonders bevorzugt sind Minicircles mit äußeren Bereichen ≤ 300 bp, z. B. mit äußeren Bereichen von 30, 50, 75, 100, 150, 200, 250 oder 300 bp.According to the invention, minicircles with outer ranges ≦ 500 bp are preferred. Particularly preferred are minicircles with outer ranges ≤ 300 bp, z. B. with outer areas of 30, 50, 75, 100, 150, 200, 250 or 300 bp.
Es wurde beobachtet, dass überraschenderweise von Transposase-Erkennungssequenzen flankierte DNS-Sequenzen durch die entsprechende Transposase effizienter transponiert werden, wenn die DNS-Sequenzen auf Minicircles statt auf Plasmiden vorliegen. Die dadurch auftretende höhere Transpositionsrate führt dazu, dass die Häufigkeit und Effizienz der Integration gewünschter DNS-Sequenzen in die DNS einer Zielzelle erheblich gesteigert werden kann, wenn diese Sequenzen in Form von Transpositionskassetten auf Minicircles bereitgestellt werden. Dies gilt insbesondere, wenn die Minicircles superspiralisiert sind.It has been observed that DNA sequences flanked by transposase recognition sequences are surprisingly transposed more efficiently by the corresponding transposase if the DNA sequences are present on minicircles instead of on plasmids. The resulting higher transposition rate leads to the frequency and efficiency of the integration of desired DNA Sequences into the DNA of a target cell can be significantly increased when these sequences are provided in the form of transposition cassettes on minicircles. This is especially true when the minicircles are supercoiled.
Eine Bereitstellung von Transpositionskassetten in Minicircles beispielsweise zum Zweck der Insertionsmutagenese oder Transformation in einer Zielzelle ermöglicht damit zum einen, die generellen Vorteile der Minicircle-Technologie zu nutzen, die in der Vermeidung des Einbringens unnötiger und eventuell immunogener prokaryotischer Sequenzen in die Zielzellen liegen. Zusätzlich wird jedoch auch die Transpositionseffizienz gesteigert, was einen bedeutenden weiteren Vorteil der hier beschriebenen Technologie darstellt. Wie bereits im Abschnitt „Hintergrund” beschrieben, ist es bekannt, dass in vielen Transposonsystemen die Transpositionseffizienz mit wachsender Länge der Transpositionskassette abnimmt. Die Länge von DNS-Abschnitten, die effizient mittels Transposition in die DNS einer Zielzelle eingebracht werden können, ist daher beschränkt. Die beobachtete Erhöhung der Transpositionseffizienz bei Bereitstellen der Transpositionskassette auf einem Minicircle kann daher vorteilhaft genutzt werden, um längere DNS-Abschnitte mit einer Effizienz in die DNS einer Zielzelle zu transponieren, die mit bisherigen Verfahren nur bei erheblich kürzeren Abschnitten erreicht werden konnte. Insbesondere für die Transposition von Abschnitten, die mehrere Gene enthalten, sind Minicircle-Transposon-Konstrukte sehr interessant.Provision of transposition cassettes in minicircles, for example, for the purpose of insertional mutagenesis or transformation in a target cell thus allows, on the one hand, to take advantage of the general advantages of minicircle technology in avoiding the introduction of unnecessary and possibly immunogenic prokaryotic sequences into the target cells. In addition, however, the transposition efficiency is also increased, which represents a significant further advantage of the technology described herein. As already described in the Background section, it is known that in many transposon systems, the transposition efficiency decreases as the length of the transposition cassette increases. The length of DNA segments that can be efficiently transposed into the DNA of a target cell is therefore limited. The observed increase in transposition efficiency in providing the transposition cassette on a minicircle can therefore be used to advantage in transposing longer DNA segments into the DNA of a target cell with efficiency that could only be achieved at significantly shorter intervals with previous methods. Especially for the transposition of sections containing multiple genes, minicircle transposon constructs are very interesting.
Gemäß einer Ausführungsform der Erfindung ist die Nukleinsäuresequenz von Interesse im Minicircle eine Expressionskassette mit mindestens einem Gen. Das Gen kodiert vorzugsweise für ein therapeutisch nützliches Protein. Jedoch können auch beliebige andere Gene in den Minicircles der Erfindung verwendet werden. Das Gen kann für ein Wildtyp-Protein, ein mutiertes Protein oder auch für ein Fusionsprotein kodieren, z. B. für ein GFP-Fusionsprotein. Die Expressionskassette kann auch mehrere Gene oder andere genetische Elemente enthalten. Wie oben erwähnt, kann es sich dabei beispielsweise um eine Sequenz handeln, die nicht für ein Protein kodiert, sondern lediglich dazu dient, einen Abstand zwischen zwei DNS-Abschnitten zu generieren oder DNS-bindende Faktoren (z. B. Nukleinsäuren oder Proteine) unter bestimmten Bedingungen zu binden bzw. zu entlassen und so in die Genregulation der Zielzelle einzugreifen. Weiterhin kann es sich bei der Sequenz in der Expressionskassette um eine RNS-kodierende Sequenz (z. B. für siRNA oder shRNA) handeln oder um andere genetische Elemente, die in der Zielzelle wirksam werden sollen, z. B. Isolatorsequenzen (also Sequenzmotive, die, wenn sie in das Genom integriert werden, die regulierende Wirkung eines chromosomalen Abschnitts auf seine benachbarten Regionen beeinflussen). Auch kann eine Nukleinsäuresequenz von Interesse eine Markersequenz sein, die im Verlauf einer Insertionsmutagenese in die zelluläre DNS eingebracht – und gegebenenfalls auch wieder entfernt – werden soll. Mittels DNS-Sequenzierung oder PCR ausgehend von der Markersequenz kann dann beispielsweise die Insertionsstelle der Sequenz bestimmt werden. Außerdem kann eine Nukleinsäuresequenz von Interesse eine beabsichtigte Wirkung in Form eine Stimulation zellulärer oder immunologischer Reaktionen (z. B. durch CpG-Motive, siehe
Gemäß einer weiteren Ausführungsform enthalten die Minicircles im inneren Bereich, die Nukleinsäure von Interesse flankierend, ein Paar Rekombinase-Erkennungssequenzen, für die eine entsprechende Rekombinase spezifisch ist. Eine für gegebene Rekombinase-Erkennungssequenzen spezifische Rekombinase ist hierbei jedes Enzym, das eine richtungsspezifische Rekombination an den Rekombinase-Erkennungssequenzen katalysieren kann. Im vorliegenden Fall müssen die beiden Rekombinase-Erkennungssequenzen so orientiert sein, dass bei der Rekombination der dazwischen liegende DNS-Abschnitt als ein zyklisches Molekül ausgeschnitten wird.In another embodiment, the minicircles in the inner region, flanking the nucleic acid of interest, contain a pair of recombinase recognition sequences for which a corresponding recombinase is specific. A recombinase specific for given recombinase recognition sequences is any enzyme capable of catalyzing directional recombination at the recombinase recognition sequences. In the present case, the two recombinase recognition sequences must be oriented such that upon recombination, the intervening DNA segment is excised as a cyclic molecule.
Mit Hilfe dieser Rekombinase-Erkennungssequenzen kann nach einer Insertionsmutagenese die Nukleinsäure von Interesse, die mittels der Transposase ins Genom der Zielzelle integriert wurde, durch Bereitstellen der entsprechenden, für die Erkennungssequenzen spezifischen Rekombinase innerhalb der Zielzelle wieder aus dem Genom entfernt oder ausgetauscht werden. Die Bereitstellung erfolgt vorzugsweise durch induzierbare Expression der Rekombinase in der Zielzelle. Bevorzugte Rekombinase-Erkennungssequenzen für solche Ausführungsformen der Erfindung sind FRT-Sequenzen, für die die Flp-Rekombinase aus dem Plasmid 2 μ spezifisch ist (siehe z. B.
HERSTELLUNG VON MINICIRCLESMANUFACTURE OF MINICIRCLES
Die Minicircles der Erfindung können mittels Rekombination aus entsprechenden Plasmiden hergestellt werden, wie in
Das Parentalplasmid wird durch die spezifische Rekombinase zu einem Minicircle und einem verbleibenden Rest, dem Miniplasmid, rekombiniert. Hierbei müssen die beiden Rekombinase-Erkennungssequenzen so orientiert sein, dass bei der Rekombination die Trennung in Minicircle und Miniplasmid erfolgt und nicht ein einzelnes modifiziertes Plasmid entsteht.The parent plasmid is recombined by the specific recombinase into a minicircle and a remainder, the miniplasmid. Here, the two recombinase recognition sequences must be oriented so that the recombination into minicircle and miniplasmid occurs and not a single modified plasmid is formed.
Die Rekombinase-Erkennungssequenzen können sich unmittelbar an die Transpositionskassette anschließen, oder die Sequenzen können durch einen Spacer getrennt sein. Spacer können zu beiden Seiten der Transpositionskassette angebracht sein, oder nur an einer Seite. Die Spacer haben vorzugsweise eine Länge von 1–1000 bp, z. B. 1, 10, 20, 50, 100, 200, 300, 400, 500, 600, 700, 800, 900 oder 1000 bp. Wenn zu beiden Seiten der Transpositionskassette Spacer vorliegen, können diese gleiche oder unterschiedliche Längen haben. Mit „Spacer” wird hier jegliche DNS-Sequenz bezeichnet, die zwischen der Transpositionskassette und den Rekombinase-Erkennungssequenzen liegt. Insbesondere kann ein Spacer auch eine oder mehrere Identifikationssequenzen wie unten beschrieben umfassen.The recombinase recognition sequences may be immediately adjacent to the transposition cassette, or the sequences may be separated by a spacer. Spacers may be attached to either side of the transposition cassette, or only on one side. The spacers preferably have a length of 1-1000 bp, z. 1, 10, 20, 50, 100, 200, 300, 400, 500, 600, 700, 800, 900 or 1000 bp. If there are spacers on both sides of the Transposition Cassette, they may have the same or different lengths. By "spacer" is meant herein any DNA sequence located between the transposition cassette and the recombinase recognition sequences. In particular, a spacer may also comprise one or more identification sequences as described below.
Beispiele für mögliche Rekombinasen sind die Integrasen aus den Bakteriophagen λ (siehe
Wie dem Fachmann offensichtlich ist, muss hierbei darauf geachtet werden, dass die verwendeten Rekombinase-Erkennungssequenzen von eventuell innerhalb der Minicircle-Region (z. B. in der Transpositionskassette) vorhandenen weiteren Rekombinase-Erkennungssequenzen (wie vorstehend beschrieben) verschieden sind und nicht von demselben Enzym rekombiniert werden können. Eine beispielhafte Anordnung von Rekombinase- und Transposase-Erkennungssequenzen auf einem erfindungsgemäßen Parentalplasmid ist in
Erfindungsgemäße Parentalplasmide können durch dem Fachmann bekannte mikrobiologische Strategien und Methoden hergestellt werden. Als Ausgangspunkt kann beispielsweise das Plasmid pT2/BH (Addgene Zugangsnummer 26556; siehe
Das erhaltene Restriktionsfragment, das die Transpositionskassette umfasst, kann nun in ein Vorläuferplasmid kloniert werden, das den Miniplasmid-Bereich sowie die Rekombinase-Erkennungssequenzen des gewünschten Parentalplasmids enthält. Falls erforderlich, kann das Fragment auch zunächst in ein weiteres Plasmid umkloniert werden, um ein mit dem Vorläuferplasmid kompatibles Restriktionsenzym verwenden zu können. Die Klonierung eines PCR-Fragments kann entweder auf die gleiche Weise oder über einen Shuttle-Vektor zur Klovierung von PCR-Fragmenten erfolgen. In allen Fällen muss sich die Insertionsstelle auf dem Vorläuferplasmid in dem Gebiet zwischen den Rekombinase-Erkennungssequenzen befinden, das nicht den Miniplasmid-Bereich enthält. Dadurch entsteht das zur Bildung von Minicircle und Miniplasmid notwendige Parentalplasmid.The resulting restriction fragment comprising the transposition cassette can now be cloned into a precursor plasmid containing the miniplasmid region as well as the recombinase recognition sequences of the desired parental plasmid. If necessary, the fragment may also be first cloned into another plasmid in order to use a precursor plasmid-compatible restriction enzyme. The cloning of a PCR fragment can be carried out either in the same way or via a shuttle vector for the cloning of PCR fragments. In all cases, the insertion site on the precursor plasmid must be in the region between the recombinase recognition sequences that does not contain the miniplasmid region. This creates the necessary for the formation of minicircle and miniplasmid Parentalplasmid.
Alternativ können auch die Transposase-Erkennungssequenzen mit der dazwischen liegenden MCS (eine „leere” Transpositionskassette) zuerst aus pT2/BH ins Vorläuferplasmid kloniert werden und anschließend die gewünschte Expressionskassette zwischen die IR/DR-Elemente auf dem resultierenden leeren Parentalplasmid eingefügt werden.Alternatively, the transposase recognition sequences with the intermediate MCS (an "empty" transposition cassette) can first be cloned from pT2 / BH into the precursor plasmid and then the desired expression cassette inserted between the IR / DR elements on the resulting empty parental plasmid.
Dieses „Einfügen” kann mittels klassischer Ligation geeigneter DNS-Enden (stumpf oder „klebrig”) erfolgen oder auch per Rekombination (wie in
Selbstverständlich kann ein geeignetes Parentalplasmid auch auf der Grundlage anderer Plasmide als der genannten konstruiert werden. Die verwendeten Restriktionsenzyme können ebenfalls andere sein. Entscheidend ist die Struktur des entstehenden Parentalplasmid, das eine Transpositionskassette zwischen zwei geeignet orientierten Rekombinase-Erkennungssequenzen enthalten muss.Of course, a suitable parental plasmid can also be constructed on the basis of plasmids other than those mentioned. The restriction enzymes used may also be different. Crucial is the structure of the resulting parental plasmid, which must contain a transposition cassette between two suitably oriented recombinase recognition sequences.
Die Rekombination des Parentalplasmids kann in vitro oder in vivo erfolgen. Ein Vorteil der in vivo-Rekombination in Wirtszellen ist, dass das Parentalplasmid nicht aufgereinigt zu werden braucht, sofern die Expression der entsprechenden Rekombinase in den Wirtszellen induziert werden kann. Das hierfür notwendige Gen, das für die Rekombinase kodiert, kann in der Wirtszelle auf einem anderen Nukleinsäuremolekül vorliegen. Besonders vorteilhaft ist es, wenn das Rekombinase-Gen auf denn Parentalplasmid innerhalb der Miniplasmid-Region vorliegt. Vorzugsweise ist die Expression der Rekombinase induzierbar, zum Beispiel über eine Temperaturänderung oder Zugabe eines Metaboliten. Nach Induktion der Rekombinase-Expression in der Wirtszelle wird das Parentalplasmid in zwei superspiralisierte, zirkuläre Moleküle, den Minicircle und das Miniplasmid, gespalten, die nach Zelllyse voneinander getrennt werden können oder bereits in der Zelle die auf der Nukleinsäuresequenz kodierte Information realisieren.Recombination of the parental plasmid can be in vitro or in vivo. An advantage of in vivo recombination in host cells is that the parental plasmid need not be purified if the expression of the corresponding recombinase can be induced in the host cells. The necessary gene coding for the recombinase may be present in the host cell on another nucleic acid molecule. It is particularly advantageous if the recombinase gene is present on the parent plasmid within the miniplasmid region. Preferably, the expression of the recombinase is inducible, for example via a change in temperature or addition of a metabolite. After induction of recombinase expression in the host cell, the parental plasmid is cleaved into two supercoiled circular molecules, the minicircle and the miniplasmide, which can be separated from each other after cell lysis or already in the cell to encode the information encoded on the nucleic acid sequence.
Wirtszelle kann somit auch die Zielzelle sein, wobei dafür die Expressionssteuerung der Rekombinase in eukaryotischen Zellen gewährleistet sein muss. Umgekehrt kann die Transposase auch in prokaryotischen Zellen induzierbar sein, z. B. um diese im Genom zu modifizieren.The host cell can thus also be the target cell, whereby the expression control of the recombinase must be ensured in eukaryotic cells. Conversely, the transposase may also be inducible in prokaryotic cells, e.g. B. to modify them in the genome.
Alternativ kann ein Minicircle auch durch herkömmliche Restriktions- und Ligationstechniken aus einem Parentalplasmid hergestellt werden. Hierbei wird der Bereich des Plasmids, der den Minicircle bilden soll, zum Beispiel mittels eines Restriktionsenzyms aus dem Plasmid herausgeschnitten und zu einem Minicircle ligiert. Der Minicircle kann auch aus mehreren getrennten Abschnitten zusammengesetzt werden. Zu beachten ist hierbei jedoch, dass ein so hergestellter Minicircle im Allgemeinen nicht superhelikal ist, sofern er nicht nachträglich in vitro superspiralisiert wird.Alternatively, a minicircle may also be prepared by conventional restriction and ligation techniques from a parent plasmid. Here, the region of the plasmid which is to form the minicircle, for example, cut out of the plasmid by means of a restriction enzyme and ligated to a minicircle. The mini-circle can also be composed of several separate sections. It should be noted, however, that a minicircle produced in this way is generally not superhelical unless it is subsequently supercoiled in vitro.
In einer Ausführungsform der Erfindung kann der Minicircle und/oder sein Parentalplasmid weiterhin mindestens eine Identifikationssequenz zur Aufreinigung des Minicircles, aber auch zu anderen Zwecken enthalten. Als Identifikationssequenz kann jede Sequenz dienen, die die Trennung der Minicircles von den Miniplasmiden ermöglicht. Insbesondere kann es sich dabei um Sequenzen handeln, die an einen spezifischen Liganden binden und so den Minicircle mit dem Liganden komplexieren können. Bei dem Liganden kann es sich um ein DNS-bindendes Protein oder um eine Nukleinsäure handeln. Die Aufreinigung kann anschließend z. B. über chromatographische Verfahren, insbesondere gegen die Identifikationssequenz gerichtete Affinitätschromatographie unter Verwendung des immobilisierten Liganden, vorgenommen werden. Geeignete Aufreinigungssysteme umfassen z. B. die Tripelhelix-Affinitätschromatographie (THAC; siehe
Die Identifikationssequenz kann sich vor der Rekombination im Minicircle- oder im Miniplasmid-Bereich des Parentalplasmids befinden. Bevorzugt sind Ausführungsformen, in denen sich die Identifikationssequenz im Minicircle-Bereich des Parentalplasmids, oder in besonders bevorzugten Ausführungsformen in der Transpositionskassette befindet, d. h. zusammen mit der Nukleinsäure von Interesse zwischen den Transposase-Erkennungssequenzen. Findet in einem solchen Minicircle-Bereich eines Parentalplasmids (oder seinen Ursprungs- oder Vorläuferplasmiden) während des Herstellungsprozesses eine spontane und unbeabsichtigte Rekombination zwischen den Transposase-Erkennungssequenzen oder den Rekombinase-Erkennungssequenzen statt, entsteht ein defektes Produkt, in dem neben den Nukleinsäuresequenz von Interesse auch die Identifikationssequenz deletiert ist. Durch gegen die Identifikationssequenz gerichtete Affinitätsaufreinigung werden somit nur intakte Minicircles isoliert. Dadurch wird das Problem der Verunreinigung von Minicircle-Präparationen durch defekte Deletionsprodukte ohne Transpositionskassette vermieden.The identification sequence may be located in the minicircle or miniplasmid region of the parental plasmid prior to recombination. Embodiments in which the identification sequence is in the minicircle region of the parent plasmid, or in particularly preferred embodiments in the transposition cassette, are preferred. H. together with the nucleic acid of interest between the transposase recognition sequences. If spontaneous and unintentional recombination between the transposase recognition sequences or the recombinase recognition sequences takes place in such a minicircle region of a parent plasmid (or its parent or precursor plasmids) during the production process, a defective product is formed, in which besides the nucleic acid sequence of interest as well the identification sequence is deleted. By directed against the identification sequence affinity purification thus only intact minicircles are isolated. This avoids the problem of contamination of minicircle preparations by defective deletion products without a transposition cassette.
Ein Minicircle kann auch mehr als eine Identifikationssequenz enthalten. Hierbei können die Identifikationssequenzen identisch sein und als direkte Wiederholungen oder durch einen Spacer getrennte Wiederholungen vorliegen. Es können aber auch zwei oder mehr verschiedene Identifikationssequenzen zu unterschiedlichen Zwecken verwendet werden. Beispielsweise kann eine Sequenz, die mit einem Oligonukleotid-Liganden eine Tripelhelix ausbilden kann, außerhalb der Transpositionskassette vorliegen, um die Minicircles vor der Transfektion aufzureinigen, und zugleich eine lacOs-Sequenz innerhalb der Transpositionskassette enthalten sein, um nach der Transfektion die Transposition ins Genom nachzuweisen oder ihre Effizienz zu messen.A minicircle may also contain more than one identification sequence. In this case, the identification sequences can be identical and can be present as direct repeats or repeats separated by a spacer. But it can also two or more different identification sequences are used for different purposes. For example, a sequence capable of forming a triple helix with an oligonucleotide ligand may be present outside the transposition cassette to purify the minicircles prior to transfection, and at the same time contain a lacOs sequence within the transposition cassette to detect transposition into the genome after transfection or to measure their efficiency.
Veranschaulicht am Parentalplasmid aus
ZELLENCELLS
Unter einem anderen Gesichtspunkt betrifft die Erfindung auch eine Zelle, die einen Minicircle gemäß der Erfindung enthält. Hierbei kann es sich um eine Zelle aus einer beliebigen Spezies handeln. Insbesondere sind prokaryotische und eukaryotische Zellen, die Minicircles gemäß der Erfindung enthalten, von der Erfindung umfasst. In manchen Ausführungsformen ist die Zelle eine Wirbeltierzelle, bevorzugt eine menschliche Zelle. In manchen Ausführungsformen ist die Zelle eine Stammzelle, bevorzugt eine embryonale Stammzelle oder induzierbare pluripotente Zelle.In another aspect, the invention also relates to a cell containing a minicircle according to the invention. This can be a cell from any species. In particular, prokaryotic and eukaryotic cells containing minicircles according to the invention are encompassed by the invention. In some embodiments, the cell is a vertebrate cell, preferably a human cell. In some embodiments, the cell is a stem cell, preferably an embryonic stem cell or inducible pluripotent cell.
Zellen, die einen Minicircle gemäß der Erfindung enthalten, können durch herkömmliche Transfektionsverfahren hergestellt werden, die dem Fachmann bekannt sind. Verwendet werden kann beispielsweise die chemische Transfektion mittels Calciumphosphat (siehe
Des Weiteren kann ein Minicircle gemäß der Erfindung direkt in der Zielzelle hergestellt werden, wie schon vorstehend erwähnt. Hierbei wird die Zielzelle zunächst mit einem Parentalplasmid des Minicircles transfiziert und anschließend die Expression der entsprechenden Rekombinase in der Zielzelle veranlasst, so dass die Prozessierung des Parentalplasmids mittels Rekombination zu Minicircle und Miniplasmid ermöglicht wird. Hierfür muss die Expressionssteuerung der Rekombinase in eukaryotischen Zellen gewährleistet sein, und ein für die Rekombinase kodierendes Gen muss in der Zielzelle vorliegen. Das Rekombinase-Gen kann sowohl in die genomische DNS der Zielzelle integriert sein oder auch auf einem anderen Nukleinsäuremolekül vorliegen. Besonders vorteilhaft ist es, wenn das Rekombinase-Gen auf dem Parentalplasmid innerhalb der Miniplasmid-Region vorliegt.Furthermore, a minicircle according to the invention can be prepared directly in the target cell, as already mentioned above. In this case, the target cell is first transfected with a parent plasmid of the minicircle and then causes the expression of the corresponding recombinase in the target cell, so that the processing of Parentalplasmids is made possible by recombination to minicircle and miniplasmide. For this, the expression control of the recombinase must be ensured in eukaryotic cells, and a gene coding for the recombinase must be present in the target cell. The recombinase gene can be integrated into the genomic DNA of the target cell or else present on another nucleic acid molecule. It is particularly advantageous if the recombinase gene is present on the parent plasmid within the miniplasmid region.
VERFAHREN ZUR INSERTIONSMUTAGENESE ODER TRANSFORMATIONMETHOD FOR INSERTION MUTAGENIC OR TRANSFORMATION
Unter einem weiteren Gesichtspunkt umfasst die Erfindung ein Verfahren zur Insertionsmutagenese oder zur genetischen Transformation einer eukaryotischen Zielzelle. Die Zielzelle kann eine beliebige eukaryotische Zelle sein, ist aber vorzugsweise eine Wirbeltierzelle. Besonders bevorzugt sind menschliche Zellen, einschließlich beispielsweise embryonaler Stammzellen oder induzierbarer pluripotenter Zellen.In a further aspect, the invention includes a method for insertion mutagenesis or for genetic transformation of a eukaryotic target cell. The target cell may be any eukaryotic cell, but is preferably a vertebrate cell. Particularly preferred are human cells including, for example, embryonic stem cells or inducible pluripotent cells.
Im Rahmen dieses Verfahrens wird ein Minicircle gemäß der Erfindung in der Zielzelle bereitgestellt und die Zielzelle mit einem Vektor transfiziert, der ein Gen für eine entsprechende, für die Transposase-Erkennungssequenzen des Minicircles spezifische Transposase enthält. Insbesondere kann die Transposase eine SB-Transposase oder eine Piggy-Bac-Transposase sein. Besonders bevorzugt sind Vektoren, die für die Transposasen SB10 oder SB100X kodieren.In the process, a minicircle according to the invention is provided in the target cell and the target cell is transfected with a vector containing a gene for a corresponding transposase specific for the minicircle transposase recognition sequences. In particular, the transposase may be an SB transposase or a piggy-bac transposase. Especially preferred are vectors which code for the transposases SB10 or SB100X.
Wie bereits vorstehend beschrieben, umfasst das Bereitstellen des Minicircles in der Zielzelle vorzugsweise die Transfektion der Zielzelle mit dem Minicircle. Hierzu geeignete Transfektionsverfahren sind dem Fachmann bekannt, wie ebenfalls vorstehend beschrieben. Besonders bevorzugte Verfahren sind die Calciumphosphat-Transfektion, die Lipofektion und die Elektroporation. Alternativ zur Transfektion mit dem Minicircle kann der Minicircle jedoch auch direkt in der Zielzelle hergestellt werden.As described above, providing the minicircle in the target cell preferably involves transfecting the target cell with the minicircle. Transfection methods suitable for this purpose are known to the person skilled in the art, as also described above. Particularly preferred methods are calcium phosphate transfection, lipofection and electroporation. Alternative to However, transfection with the minicircle can also produce the minicircle directly in the target cell.
Bei dem Vektor, der das entsprechende Transposase-Gen enthält (Transposase-Vektor), kann es sich um einen beliebigen Typ Vektor aus dem Stand der Technik handeln, der zur Transfektion von eukaryotischen Zielzellen geeignet ist. Insbesondere kann der Vektor ein Plasmid, ein Miniplasmid, ein Cosmid, ein Minicircle, ein einzel-, doppel- oder mehrsträngiges lineares DNS-Molekül, eine RNS, ein Protein, ein vitaler Vektor oder ein zelluläres Zwischenprodukt der viralen Vermehrung, ein virus-like-particle (VLP) oder ein Mikroorganismus sein. Besonders bevorzugt im Sinne der Erfindung ist ein Minicircle, da hierbei der wichtige Vorteil gewahrt bleibt, kein unnötiges fremdes Material in die Zielzelle einzubringen, das beispielsweise zu unerwünschten immunogenen Nebenwirkungen führen könnte. Entscheidend ist, dass die Expressionssteuerung der Transposase in eukaryotischen Zellen gewährleistet ist. Vorzugsweise ist die Expression der Transposase in der Zielzelle induzierbar, beispielsweise über eine Temperaturänderung oder die Zugabe eines Metaboliten.The vector containing the corresponding transposase gene (transposase vector) may be any type of vector of the art suitable for transfecting eukaryotic target cells. In particular, the vector may be a plasmid, a miniplasmid, a cosmid, a minicircle, a single, double or multiple stranded linear DNA molecule, an RNA, a protein, a vital vector or a cellular viral propagule intermediate, a virus-like particle (VLP) or a microorganism. Particularly preferred in the context of the invention is a minicircle, since this preserves the important advantage of not introducing any unnecessary foreign material into the target cell, which could, for example, lead to undesired immunogenic side effects. It is crucial that the expression control of the transposase is ensured in eukaryotic cells. Preferably, the expression of the transposase in the target cell is inducible, for example via a temperature change or the addition of a metabolite.
Die Transfektion der Zielzelle mit dem Transposase-Vektor kann vor, zugleich mit oder nach der Bereitstellung des Minicircles in der Zielzelle erfolgen. Beispielsweise können der Transposase-Vektor und der Minicircle in einer Kotransfektion zugleich in die Zielzelle eingebracht werden. Wird der Minicircle innerhalb der Zielzelle aus dem Parentalplasmid erzeugt, kann die Transfektion mit dem Transposase-Vektor vor, zugleich mit oder nach des Transfektion mit dem Parentalplasmid erfolgen. Eine Ausführungsform des Verfahrens ist schematisch in
Nachdem sowohl der Minicircle als auch der Transposase-Vektor in der Zielzelle bereitgestellt wurden, wird die Expression des Transposase-Gens in der Zielzelle eingeleitet. Dies führt zur Rekombination der Transposase-Erkennungssequenzen und zur Integration der Nukleinsäuresequenz von Interesse im Genom der Zielzelle.After both the minicircle and the transposase vector have been provided in the target cell, expression of the transposase gene is initiated in the target cell. This results in recombination of the transposase recognition sequences and integration of the nucleic acid sequence of interest in the genome of the target cell.
KITSKITS
Des Weiteren umfasst die Erfindung unter einem weiteren Gesichtspunkt auch Kits zur Insertionsmutagenese oder zur genetischen Transformation einer eukaryotischen Zielzelle. Ein Kit umfasst hierbei einen Minicircle gemäß der Erfindung und einen entsprechenden Transposase-Vektor, der für eine für die Transposase-Erkennungssequenzen auf dem Minicircle spezifische Transposase kodiert. In einer besonderen Ausführungsform stammen die Transposase-Erkennungssequenzen im Minicircle aus dem SB-Transposon, während der Transposase-Vektor für eine SB-Transposase, z. B. SB10 oder SB100X, kodiert. In einer weiteren Ausführungsform kann die Transposase auf einem Minicircle kodiert sein bzw. beide – die Transposase und die Transpositionskassette – jeweils auf unterschiedlichen Minicirclemolekülen oder demselben Minicirclemolekül liegen.Furthermore, in a further aspect, the invention also includes kits for insertion mutagenesis or for genetic transformation of a eukaryotic target cell. A kit hereby comprises a minicircle according to the invention and a corresponding transposase vector which codes for a transposase specific for the transposase recognition sequences on the minicircle. In a particular embodiment, the transposase recognition sequences in the minicircle are from the SB transposon, while the transposase vector is derived from an SB transposase, e.g. B. SB10 or SB100X, encoded. In a further embodiment, the transposase can be coded on a minicircle or both - the transposase and the transposition cassette - each lie on different minicirclem molecules or the same minicirclemolecule.
Der Minicircle und/oder der Transposase-Vektor können in dem Kit trocken, z. B. lyophilisiert, vorliegen. Alternativ können sie auch in einem Puffer gelöst und die Lösung flüssig oder gefroren sein. Des Weiteren können sie gemischt oder voneinander getrennt in verschiedenen Behältern vorhanden sein. Zusätzlich zum Minicircle und dem Transposase-Vektor kann der Kit auch weitere Bestandteile enthalten, die zur Ausführung eines Verfahrens gemäß der Erfindung nützlich sind, wie etwa Chemikalien, Reagenzien, Puffer, Lösungsmittel oder Medien für die Ausführung der Verfahren der Erfindung. Insbesondere kann der Kit Reagenzien enthalten, die für eine chemische Transfektion oder eine Lipofektion notwendig sind. Manche oder alle der Reagenzien können in abgemessenen Einheitsmengen vorliegen, z. B. um den Pipettieraufwand des Nutzers auf ein Mindestmaß zu beschränken.The minicircle and / or the transposase vector can be stored dry in the kit, e.g. B. lyophilized, are present. Alternatively, they may be dissolved in a buffer and the solution may be liquid or frozen. Furthermore, they may be mixed or separate from one another in different containers. In addition to the minicircle and the transposase vector, the kit may also contain other ingredients useful for carrying out a method according to the invention, such as chemicals, reagents, buffers, solvents or media for carrying out the methods of the invention. In particular, the kit may contain reagents necessary for chemical transfection or lipofection. Some or all of the reagents may be in measured unit amounts, e.g. B. to minimize the pipetting effort of the user to a minimum.
Zusätzlich kann der Kit auch Beschreibungen des Minicircles und/oder des Transposase-Vektors, wie etwa Vektorkarten oder Sequenzen enthalten. Ebenso können Anweisungen zur Durchführung der betreffenden Ausführungsform der Erfindung Bestandteil des Kits sein.In addition, the kit may also contain descriptions of the minicircle and / or transposase vector, such as vector maps or sequences. Likewise, instructions for carrying out the relevant embodiment of the invention may be part of the kit.
BeispieleExamples
BEISPIEL 1:EXAMPLE 1:
Konstruktion eines Parentalplasmids (GFP-Parentalplamid) für Minicircles umfassend eine Transpositionskassette für GFPConstruction of a parental plasmid (GFP-parentalplamide) for minicircles comprising a transposition cassette for GFP
Das Plasmid pCMV-GFP (3487 bp, Artikel-Nr. PF463, PlasmidFactory, Bielefeld, DE), das eine Expressionskassette für Grün fluoreszierendes Protein (GFP) enthält, wird als Ausgangsmaterial zur gezielten Amplifikation der darauf enthalten GFP-Expressionskassette verwendet. Die beiden Primer (Forward: 5'-CGCCGAATTCGCCGGTTAATTAAATCAATTACGGGGTCATTAGTTCATAGCCCATATATG-3', s. auch
Das Plasmid pT2/BH (Addgene Zugangsmummer 26556; siehe
Nach Vermehrung und Herstellung des Plasmids wird die Transpositionskassette, die die IR/DR-Elemente und zwischen ihnen die Expressionskassette umfasst, mit BamHI (Artikel Nr. R0136L, NEB, Frankfurt, DE) aus dem Plasmid ausgeschnitten. Die überhängenden Einzelstrangenden werden mit Klenow-Polymerase (DNA-Polymerase I, Artikel Nr. M0210L, NEB, Frankfurt, DE) aufgefüllt und das Fragment wie oben beschrieben aufgereinigt.After amplification and preparation of the plasmid, the transposition cassette comprising the IR / DR elements and between them the expression cassette is excised from the plasmid with BamHI (Article No. R0136L, NEB, Frankfurt, DE). The overhanging single stranded ends are filled in with Klenow polymerase (DNA polymerase I, article no. M0210L, NEB, Frankfurt, DE) and the fragment is purified as described above.
Das Vorläuferplasmid, das zur Aufnahme der Transpositionskassette dient (siehe
BEISPIEL 2:EXAMPLE 2
Konstruktion eines weiteren Parentalplasmids (GFP-Parentalplamid) für Minicircles umfassend eine Transpositionskassette für GFPConstruction of another parental plasmid (GFP parental plasmid) for minicircles comprising a transposition cassette for GFP
Das Plasmid pCMV-GFP (3487 bp, Artikel-Nr. PF463, PlasmidFactory, Bielefeld, DE), das eine Expressionskassette für Grün fluoreszierendes Protein (GFP) enthält, wird als Ausgangsmaterial zur gezielten Amplifikation der darauf enthalten GFP-Expressionskassette verwendet. Die beiden Primer (Forward: 5'-CGCCGAATTCGCCGGTTAATTAAATCAATTACGGGGTCATTAGTTCATAGCCCATATATG-3', s. auch
Das Plasmid pT2/BH (Addgene Zugangsmummer 26556; siehe
Nach Vermehrung und Herstellung des Plasmids wird die Transpositionskassette, die die IR/DR-Elemente und zwischen ihnen die Expressionskassette umfasst, mit BamHI (Artikel Nr. R0136L, NEB, Frankfurt, DE) aus dem Plasmid ausgeschnitten. Die überhängenden Einzelstrangenden werden mit Klenow-Polymerase (DNA-Polymerase I, Artikel Nr. M0210L, NEB, Frankfurt, DE) aufgefüllt und das Fragment wie oben beschrieben aufgereinigt.After amplification and preparation of the plasmid, the transposition cassette comprising the IR / DR elements and between them the expression cassette is excised from the plasmid with BamHI (Article No. R0136L, NEB, Frankfurt, DE). The overhanging single stranded ends are filled in with Klenow polymerase (DNA polymerase I, article no. M0210L, NEB, Frankfurt, DE) and the fragment is purified as described above.
Das Vorläuferplasmid pP11, das zur Aufnahme der Transpositionskassette dient (siehe
BEISPIEL 3:EXAMPLE 3
Konstruktion eines Parentalplasmids (SB10-Parentalplasmid) für Minicircles umfassend eine SB10-ExpressionskassetteConstruction of a parental plasmid (SB10 parental plasmid) for minicircles comprising an SB10 expression cassette
Das Plasmid pSB10 (4732 bp, Addgene Zugangsnummer 24551), das für die Dornröschen-Transposase SB10 kodiert, wird mit den Restriktionsenzymen SalI (Artikel Nr. R0138L, NEB, Frankfurt, DE) und EcoRI (Artikel Nr. R0101L, NEB, Frankfurt, DE) verdaut, wobei ein Fragment entsteht, das die Expressionskassette umfasst. Die überhängenden Einzelstrangenden werden mit Klenow-Polymerase (DNA-Polymerase I, Artikel Nr. M0210L, NEB, Frankfurt, DE) aufgefüllt und das Fragment wie oben beschrieben aufgereinigt.The plasmid pSB10 (4732 bp, Addgene accession number 24551) which codes for the Sleeping Beauty Transposase SB10 is cloned with the restriction enzymes SalI (Article No. R0138L, NEB, Frankfurt, DE) and EcoRI (Article No. R0101L, NEB, Frankfurt, DE), resulting in a fragment comprising the expression cassette. The overhanging single stranded ends are filled in with Klenow polymerase (DNA polymerase I, article no. M0210L, NEB, Frankfurt, DE) and the fragment is purified as described above.
Das Vorläuferplasmid aus Beispiel 1 (siehe
Statt des Vorläuferplasmids aus Beispiel 1 (
Statt des Plasmids pSB10 kann in diesem Verfahren ebenso das Plasmid pSB100X (
BEISPIEL 4:EXAMPLE 4
Herstellung von Minicircles aus GFP- bzw. SB10-ParentalplasmidenProduction of minicircles from GFP or SB10 parental plasmids
Die Kultivierung wird bei 37°C in einem MBR-Bioreaktor (MBR BIO REACTOR, Schweiz) mit einem Gesamtvolumen von 7 1 bei einer Füllmenge von 51 durchgeführt. Die Anpassung des pHs auf pH 7 wird mit 2 M Natriumhydroxidlösung und 2 M Phosphorsäure durchgeführt. Die Flussrate der Luft wird auf 5 l/min eingestellt. Die Sauerstoffkonzentration (60%) wird durch die Variierung der Rührergeschwindigkeit im Bereich von 500 bis 2000 pro Minute kontrolliert. Es wird LB-Medium ohne Zugabe von Antibiotika verwendet. Das Verfahren wird sowohl mit pP-IR-GFP- als auch p2-SB10-Parentalplasmiden durchgeführt.The cultivation is carried out at 37 ° C in a MBR bioreactor (MBR BIO REACTOR, Switzerland) with a total volume of 7 1 at a capacity of 51. The adjustment of the pH to pH 7 is carried out with 2 M sodium hydroxide solution and 2 M phosphoric acid. The flow rate of the air is set to 5 l / min. The oxygen concentration (60%) is controlled by varying the stirrer speed in the range of 500 to 2000 per minute. LB medium is used without the addition of antibiotics. The procedure is carried out with both pP-IR-GFP and p2-SB10 parental plasmids.
Der Bioreaktor wird mit 50 ml einer Vorkultur von E. coli K12, die mit Parentalplasmid transformiert und für etwa 15 h bei 28°C kultiviert wurden, angeimpft. Die Vorkulturen werden unter selektiven Bedingungen unter Zugabe von 75 mg/ml Kanamycin kultiviert. Das LB-Medium der Vorkulturen wird mit Glucose angereichert, um eine vorzeitige Expression der parA-Resolvase, die unter der Kontrolle des PBAD-Promotors steht, zu verhindern.The bioreactor is inoculated with 50 ml of a preculture of E. coli K12 transformed with parental plasmid and cultured for approximately 15 hours at 28 ° C. The precultures are cultured under selective conditions with the addition of 75 mg / ml kanamycin. The LB medium of the precultures is enriched with glucose to prevent premature expression of the parA resolvase, which is under the control of the P BAD promoter.
Die Expression der parA-Resolvase wird bei einer OD600 zwischen 3,5 und 5,0 durch die Zugabe von L-Arabinose zum Medium induziert. Nach einer Stunde weiteren Wachstums werden die Zellen mittels Zentrifugation für 6 min bei 9039 g geerntet, in Lagerbeutel überführt, eingefroren und bei –20°C gelagert, bevor die Rekombinationsprodukte aufgereinigt werden.The expression of the parA resolvase is induced at an OD 600 between 3.5 and 5.0 by the addition of L-arabinose to the medium. After one hour of further growth, the cells are harvested by centrifugation for 6 min at 9039 g, transferred to storage bags, frozen and stored at -20 ° C before the recombination products are purified.
Während der Kultivierung im Bioreaktor werden mit einem automatischen Probensammler Proben entnommen und bei 4°C zur weiteren Analyse gelagert. Die OD600 wird gemessen und die Plasmide werden aufgereinigt (NucleoBond® PC 100, Macherey-Nagel, Düren), um die Plasmidausbeute und die Rekombinationseffizienz zu bestimmen.During cultivation in the bioreactor, samples are taken with an automatic sampler and stored at 4 ° C for further analysis. The OD 600 is measured and the plasmids are to determine purified (NucleoBond ® PC 100, Macherey-Nagel, Duren) plasmid yield and the recombination efficiency.
Aus der erhaltenen Biomasse werden die Rekombinationsprodukte Minicircle und Miniplasmid mittels kommerziell erhältlicher Plasmidisolierungskits (NucleoBond® PC 10000, Macherey & Nagel, Düren) aufgereinigt.The recombination minicircle and miniplasmid are using commercially available Plasmidisolierungskits (NucleoBond ® PC 10000, Macherey & Nagel, Düren) purified from the resulting biomass.
Zur Isolierung des Minicircles aus der Mischung aus Minicircle und Miniplasmid wir eine spezifische Affinitätschromatographie verwendet. Hierzu wird ein biotinylierter Repressor des Lactose-Operons an Streptavidin Sepharose High Performance (GE Healthcare) gekoppelt (vgl.
Mit 5 ml dieser Chromatograhiematrix wird eine XK 16 Chromatographiesäule befüllt und mit dem fünffachen Säulenvolumen 50 mM Tris pH 8, 400 mM NaCl equilibriert. Die Mischung der Rekombinationsprodukte (1 mg/ml in 50 mM Tris pH 8, 400 mM NaCl) wird anschließend in einem ÄKTA-System (GE Healthcare) bei einer Flussrate von 0,5 ml/min auf das Säulenmaterial aufgetragen. Die Säule wird mit 50 mM Tris pH 8, 400 mM NaCl bei einer Flussrate von 1 ml/min gewaschen bis das am Gerät detektierte UV260nm-Signal auf eine stabile Basislinie absinkt. Nun wird die Minicircle-DNS mit 50 mM Tris pH8, 500 mM NaCl, 5 mM IPTG eluiert, danach wird die Säule mit 50 mM Tris pH 8, 1 M NaCl und 50 mM Tris pH 8 gewaschen und zur weiteren Verwendung erneut eqilibriert.An XK 16 chromatography column is filled with 5 ml of this chromatographic matrix and equilibrated with five times the column volume 50 mM Tris pH 8, 400 mM NaCl. The mixture of recombination products (1 mg / ml in 50 mM Tris pH 8, 400 mM NaCl) is then applied to the column material in an ÄKTA system (GE Healthcare) at a flow rate of 0.5 ml / min. The column is washed with 50 mM Tris pH 8, 400 mM NaCl at a flow rate of 1 ml / min until the UV 260 nm signal detected on the instrument drops to a stable baseline. The minicircle DNA is then eluted with 50 mM Tris pH8, 500 mM NaCl, 5 mM IPTG, then the column is washed with 50 mM Tris pH 8, 1 M NaCl and 50 mM Tris pH 8 and re-equilibrated for further use.
Durch Präzipitation wird die DNS aus der Hochsalzmischung entfernt und schließlich in Wasser resuspendiert. Precipitation removes the DNA from the high salt mixture and finally resuspends in water.
Die DNS der MC-IR-GFP und MC-SB10 werden jeweils auf eine Konzentration von 1 mg/ml eingestellt.The DNA of the MC-IR-GFP and MC-SB10 are each adjusted to a concentration of 1 mg / ml.
Statt des Parentalplasmids pP-SB10 kann alternativ auch das Parentalplasmid pP-SB100X als Ausgangsmaterial verwendet werden. Dabei wird der Minicircle MC-SB100X erhalten.Instead of the parent plasmid pP-SB10, alternatively, the parent plasmid pP-SB100X can be used as the starting material. This will get the minicircle MC-SB100X.
Außerdem kann statt des Parentalplasmids pP-IR-GFP kann alternativ auch das Parentalplasmid pP11-IR-GFP als Ausgangsmaterial verwendet werden. Dabei wird der Minicircle MC-IR-GFP mit einer statt mit zwei tag-Sequenzen erhalten.In addition, instead of the parent plasmid pP-IR-GFP, alternatively the parent plasmid pP11-IR-GFP can be used as starting material. The minicircle MC-IR-GFP is obtained with one instead of two tag sequences.
BEISPIEL 5:EXAMPLE 5
Kotransfektion von Zielzellen mit GFP- und SB10-Minicircles und Transposition der ExpressionskassetteCotransfection of target cells with GFP and SB10 minicircles and transposition of the expression cassette
Jurkat-Zellen (humane T-Zell-Leukämie-Linie, DSMZ) werden in RPMI 1640-Medium in Anwesenheit von FCS (fötalem Kälberserum; PAA, Linz) bei 37°C und 5% CO2 kultiviert.Jurkat cells (human T cell leukemia line, DSMZ) are cultured in RPMI 1640 medium in the presence of FCS (fetal calf serum, PAA, Linz) at 37 ° C and 5% CO 2 .
Zur Transfektion werden die Zellen in serumfreiem Medium resuspendiert, so dass eine Zelldichte von ca. 7,5 × 105 Zellen/ml entsteht. 400 μl dieser Zellsuspension werden mit 20 μg MC-IR-GFP und 10 μg MC-SB10 versetzt und durch vorsichtiges Umschwenken gut durchmischt. Der elektroporative Gentransfer erfolgt anschießend mit einem Bio-Rad Gene-Pulser II (Bio-Rad, Foster City, CA, USA). Hierzu werden die Zellen in entsprechende Küvetten mit einem Elektrodenabstand von 4 mm gegeben und bei einer am Gerät eingestellten Spannung von 200 V und einer Kapazität von 1600 μF elektroporiert. Die Küvette mit der Zellsuspension wird unmittelbar danach für 5 min auf Eis gelagert, anschließend werden die Zellen in Kulturschalen mit vorgewärmtem Kulturmedium (37°C, mit FCS) pipettiert und wie oben beschrieben weiter kultiviert.For transfection, the cells are resuspended in serum-free medium to give a cell density of approximately 7.5 × 10 5 cells / ml. 400 μl of this cell suspension are mixed with 20 μg of MC-IR-GFP and 10 μg of MC-SB10 and mixed thoroughly by gently inverting. The electroporative gene transfer is then carried out with a Bio-Rad Gene-Pulser II (Bio-Rad, Foster City, CA, USA). For this purpose, the cells are placed in corresponding cuvettes with an electrode gap of 4 mm and electroporated at a set voltage of 200 V and a capacity of 1600 μF. The cuvette with the cell suspension is immediately stored on ice for 5 min, then the cells are pipetted into culture dishes with prewarmed culture medium (37 ° C., with FCS) and cultivated further as described above.
Die Kotransfektion der beiden DNS (20 μg MC-IR-GFP und 10 μg MC-SB10) führt zur konstitutiven Expression der SB10-Transposase in den Zielzellen. Nach Erreichen einer ausreichenden Menge an SB10 Protein in der Zelle interagiert dieses mit den für die Transposition relevanten DNS-Strukturen und die Transposition erfolgt. Eine Transfektion unter Weglassen von MC-SB10 (also ohne Transposase-Expression) führt zu keiner Transposition, wohl aber zur Expression des GFP vom episomalen Vektor aus.The cotransfection of the two DNAs (20 μg MC-IR-GFP and 10 μg MC-SB10) leads to the constitutive expression of the SB10 transposase in the target cells. After reaching a sufficient amount of SB10 protein in the cell, this interacts with the transposition-relevant DNA structures and the transposition takes place. Transfection omitting MC-SB10 (ie without transposase expression) leads to no transposition, but to the expression of GFP from the episomal vector.
Die Detektion und Quantifizerung durch die GFP-Expression fluoreszenter Zellen erfolgt zu definierten Zeitpunkten, z. B. 24 h, 48 h, etc. nach Transfektion mit einem handelsüblichen Fluoreszenzmikroskop mit entsprechendem Filtersatz. Die Bestimmung der Effizienz der Transposition beruht auf der Annahme, dass, neben einer sich über die Zeit ausverdünnenden transienten GFP-Expression nicht-transponierter Sequenzen, die GFP-Expression der im Chromosom der Zielzelle integrierten Expressionseinheiten mit der Zeit konstant bleibt. Als Maß für die Transpositionseffizienz wird deshalb der konstante Basiswert der GFP-Expression verwendet, der nach dem Abklingen der transienten Expression gemessen wird.The detection and quantification by the GFP expression of fluorescent cells occurs at defined times, eg. B. 24 h, 48 h, etc. after transfection with a commercially available fluorescence microscope with a corresponding filter set. The determination of the efficiency of the transposition is based on the assumption that, in addition to a time-deficient transient GFP expression of non-transposed sequences, GFP expression of the expression units integrated into the chromosome of the target cell remains constant over time. As a measure of the transposition efficiency, therefore, the constant basal level of GFP expression is used, which is measured after the transient expression has subsided.
Statt des Minicircles MC-SB10, kann in diesem Verfahren alternativ auch 10 μg des Minicircle MC-SB100X mit 20 μg MC-IR-GFP versetzt und analog vorgegangen werden.Instead of the minicircle MC-SB10, alternatively 10 μg of the minicircle MC-SB100X can be mixed with 20 μg MC-IR-GFP in this method and the procedure can be analogous.
Darüber hinaus kann auch lediglich eine der beiden kotransfizierten DNS ein Minicircle sein, während das andere ein Standardplasmid ist (siehe auch Beispiel 6).In addition, only one of the two cotransfected DNA can be a minicircle, while the other is a standard plasmid (see also Example 6).
Die Verfahren aus den Beispielen 1–5 sind auch schematisch in
Die Transposition nach Kotransfektion kann durch die Verwendung induzierbarer und in eukaryontischen Zellen funktionsfähiger Promotoren gesteuert werden. Im hier gezeigten Beispiel erfolgte sie unreguliert.Transposition after cotransfection can be controlled by the use of inducible promoters which are functional in eukaryotic cells. In the example shown here it was unregulated.
BEISPIEL 6:EXAMPLE 6
Vergleich der Transpositionseffizienz zwischen Transposon-Minicircle und Transposon-PlasmidComparison of transposition efficiency between transposon minicircle and transposon plasmid
Der Versuch aus Beispiel 5 wird wiederholt, allerdings wird statt des Minicircles MC-IR-GFP eine äquimolare Menge des Vergleichsplasmids pT2-IR-GFP (siehe Beispiel 2) transfiziert. Die Transpositionseffizienz wird mit derjenigen aus Beispiel 5 verglichen.The experiment of Example 5 is repeated, but instead of the minicircle MC-IR-GFP, an equimolar amount of the comparison plasmid pT2-IR-GFP (see Example 2) is transfected. The transposition efficiency is compared with that of Example 5.
Die Effizienz der Transposition im Vergleich zwischen Plasmid-basierter Transposition (Transfektion mit pP-IR-GFP) und Minicircle-basierter Transposition (Transfektion mit MC-IR-GFP, siehe Beispiel 5) zeigt, dass die Zahl der durch Minicircle-Transposons transformierten Zellen höher ist als die, deren Transposon auf einem Plasmid kodiert vorliegt. Die Effizienz wird nicht dadurch gesteigert, dass die SB10 Transposase Minicircle-basiert statt Plasmid-basiert vorliegt, sofern äquimolare Mengen an MC-SB10- und pSB10-DNS pro Zelle verglichen werden.The efficiency of transposition compared between plasmid-based transposition (transfection with pP-IR-GFP) and minicircle-based transposition (transfection with MC-IR-GFP, see Example 5) shows that the number of cells transformed by minicircle transposons is higher than that whose transposon is encoded on a plasmid. Efficiency is not enhanced by the fact that SB10 transposase is minicircle-based rather than plasmid-based, provided that equimolar amounts of MC-SB10 and pSB10 DNA per cell are compared.
ZITATE ENTHALTEN IN DER BESCHREIBUNG QUOTES INCLUDE IN THE DESCRIPTION
Diese Liste der vom Anmelder aufgeführten Dokumente wurde automatisiert erzeugt und ist ausschließlich zur besseren Information des Lesers aufgenommen. Die Liste ist nicht Bestandteil der deutschen Patent- bzw. Gebrauchsmusteranmeldung. Das DPMA übernimmt keinerlei Haftung für etwaige Fehler oder Auslassungen.This list of the documents listed by the applicant has been generated automatically and is included solely for the better information of the reader. The list is not part of the German patent or utility model application. The DPMA assumes no liability for any errors or omissions.
Zitierte PatentliteraturCited patent literature
- WO 96/26270 [0003, 0059] WO 96/26270 [0003, 0059]
- EP 1620559 [0059] EP 1620559 [0059]
- EP 350341 [0062] EP 350341 [0062]
- EP 1505089 [0077] EP 1505089 [0077]
- US 5219746 [0077] US 5219746 [0077]
Zitierte Nicht-PatentliteraturCited non-patent literature
- Bigger et al. (J. Biol. Chem. 2001, 276: 23018–23027) [0004] Bigger et al. (J. Biol. Chem. 2001, 276: 23018-23027) [0004]
- Kreiss et al. (Appl. Microbiol. Biotechnol. 1998, 49: 560–567) [0005] Kreiss et al. (Appl. Microbiol Biotechnol 1998, 49: 560-567) [0005]
- Chen et al. (Mol. Ther. 2003, 8: 495–500) [0005] Chen et al. (Mol. Ther. 2003, 8: 495-500) [0005]
- D. J. Lampe et al., Genetics 1998, 149(1): 179–187 [0007] DJ Lampe et al., Genetics 1998, 149 (1): 179-187 [0007]
- J. C. Way et al., Genetics 1985, 111(4): 705–713 [0007] JC Way et al., Genetics 1985, 111 (4): 705-713 [0007]
- A. Krieg et al., Nature 1995, 374: 546–9 [0038] A. Krieg et al., Nature 1995, 374: 546-9 [0038]
- Z. Ivics et al., Cell 1997, 91: 501–510 [0046] Z. Ivics et al., Cell 1997, 91: 501-510 [0046]
- Z. Ivics et al., Cell 1997, 91: 501–510 [0047] Z. Ivics et al., Cell 1997, 91: 501-510 [0047]
- L. Mátés et al., Nat. Genet. 2009, 41: 753–761 [0047] L. Mátés et al., Nat. Genet. 2009, 41: 753-761 [0047]
- Z. Ivics et al., Cell 1997, 91: 501–510 [0049] Z. Ivics et al., Cell 1997, 91: 501-510 [0049]
- A. Krieg et al., Nature 1995, 374: 546–9 [0056] A. Krieg et al., Nature 1995, 374: 546-9 [0056]
- B. J. Andrews et al., Cell 1985, 40(4): 795–803 [0058] BJ Andrews et al., Cell 1985, 40 (4): 795-803 [0058]
- A. Landy et al., Science 1977, 197(4309): 1147–1160 [0062] A. Landy et al., Science 1977, 197 (4309): 1147-1160 [0062]
- J. M. Leong et al., J. Biol. Chem. 1985, 260(7): 4468–4470 [0062] JM Leong et al., J. Biol. Chem. 1985, 260 (7): 4468-4470 [0062]
- M. A. Hauser et al., J. Biol. Chem. 1992, 267(10): 6859–6864 [0062] MA Hauser et al., J. Biol. Chem. 1992, 267 (10): 6859-6864 [0062]
- B. J. Andrews et al., Cell 1985, 40(4): 795–803 [0062] BJ Andrews et al., Cell 1985, 40 (4): 795-803 [0062]
- J. R. Bateman et al., Genetics 2006, 173(2): 769–777 [0062] JR Bateman et al., Genetics 2006, 173 (2): 769-777 [0062]
- L. Eberl et al., Mol. Microbiol. 1994, 12(1): 131–141 [0062] Eberl et al., Mol. Microbiol. 1994, 12 (1): 131-141 [0062]
- W. M. Stark et al., Trends Genes. 1992, 8(12): 432–439 [0062] WM Stark et al., Trends Genes. 1992, 8 (12): 432-439 [0062]
- Hartley, J. L., Temple, G. F., and Brasch, M. A. (2000) DNA Cloning Using in vitro Site-Specific Recombination. Genome Research 10, 1788–1795 [0067] Hartley, JL, Temple, GF, and Brasch, MA (2000) DNA Cloning Using In Vitro Site-Specific Recombination. Genome Research 10, 1788-1795 [0067]
- P. Wils et al., Gene Therapy 1997, 4(4): 323–330 [0072] Wils et al., Gene Therapy 1997, 4 (4): 323-330 [0072]
- J. Lundeberg et al., Genet. Anal. Techn. Appl. 1990, 747–52 [0072] J. Lundeberg et al., Genet. Anal. Techn. Appl. 1990, 747-52 [0072]
- A. Müller et al., Nucleic Acids Research 1995, 23(11): 1894–1900 [0072] A. Muller et al., Nucleic Acids Research 1995, 23 (11): 1894-1900 [0072]
- F. L. Graham et al., Virology 1973, 52(2): 456–467 [0077] Graham, FL et al., Virology 1973, 52 (2): 456-467 [0077]
- H. L. Fu et al., Journal of Control Release 2007, 124(3): 181–188 [0077] HL Fu et al., Journal of Control Release 2007, 124 (3): 181-188 [0077]
- P. L. Felgner et al., P. N. A. S. 1987, 84(21): 7413–7417 [0077] PL Felgner et al., PNAS 1987, 84 (21): 7413-7417 [0077]
- E. Neumann et al., EMBO J. 1982, 1(7): 841–845 [0077] E. Neumann et al., EMBO J. 1982, 1 (7): 841-845 [0077]
- M. Tsukakoshi et al., Applied Physics B-Photophysics and Laser Chemistry 1984, 35(3): 135–140 [0077] Tsukakoshi, Ts., Applied Physics B-Photophysics and Laser Chemistry 1984, 35 (3): 135-140. [0077]
- F. Scherer et al., Gene Ther. 2009, 9(2): 102–109 [0077] F. Scherer et al., Gene Ther. 2009, 9 (2): 102-109 [0077]
- T. E. McKnight et al., Nano Letters 2004, 4(7): 1213–1219 [0077] TE McKnight et al., Nano Letters 2004, 4 (7): 1213-1219 [0077]
- P. Mayrhofer et al., J. Gene Med. 2008, 10(11): 1253–1269 [0091] P. Mayrhofer et al., J. Gene Med. 2008, 10 (11): 1253-1269 [0091]
- P. Mayrhofer et al., J. Gene Med. 2008, 10(11): 1253–1269 [0095] P. Mayrhofer et al., J. Gene Med. 2008, 10 (11): 1253-1269 [0095]
- P. Mayrhofer et al., J. Gene Med. 2008, 10(11): 1253–1269 [0097] P. Mayrhofer et al., J. Gene Med. 2008, 10 (11): 1253-1269 [0097]
- P. Mayrhofer et al., J. Gene Med. 2008, 10(11): 1253–1269 [0098] P. Mayrhofer et al., J. Gene Med. 2008, 10 (11): 1253-1269 [0098]
- L. Mátés et al., Nat. Genet. 2009, 41: 753–761 [0099] L. Mátés et al., Nat. Genet. 2009, 41: 753-761 [0099]
- Mayrhofer et al., 2008 [0105] Mayrhofer et al., 2008 [0105]
Claims (14)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE102011118018.8A DE102011118018B4 (en) | 2011-10-25 | 2011-10-25 | Minicircles with transposition cassettes and their use for transforming cells |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE102011118018.8A DE102011118018B4 (en) | 2011-10-25 | 2011-10-25 | Minicircles with transposition cassettes and their use for transforming cells |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE102011118018A1 true DE102011118018A1 (en) | 2013-04-25 |
DE102011118018B4 DE102011118018B4 (en) | 2017-10-26 |
Family
ID=48051376
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE102011118018.8A Active DE102011118018B4 (en) | 2011-10-25 | 2011-10-25 | Minicircles with transposition cassettes and their use for transforming cells |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE102011118018B4 (en) |
Cited By (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE102013220859A1 (en) | 2013-10-15 | 2015-04-16 | Plasmidfactory Gmbh & Co. Kg | Minicircles with viral expression cassettes and their use to transform cells to produce recombinant viruses or viral gene vectors |
WO2017050884A1 (en) * | 2015-09-22 | 2017-03-30 | Julius-Maximilians-Universität Würzburg | A method for high level and stable gene transfer in lymphocytes |
EP3219800A1 (en) * | 2016-03-15 | 2017-09-20 | Max-Delbrück-Centrum Für Molekulare Medizin | A transposon-based transfection system for primary cells |
EP3359676A4 (en) * | 2015-12-14 | 2018-08-15 | Genomefrontier Therapeutics, Inc. | Transposon system, kit comprising the same, and uses thereof |
US10611837B2 (en) | 2014-04-10 | 2020-04-07 | Seattle Children's Hospital | Transgene genetic tags and methods of use |
US11123369B2 (en) | 2015-08-07 | 2021-09-21 | Seattle Children's Hospital | Bispecific CAR T-cells for solid tumor targeting |
US11345926B2 (en) | 2015-12-14 | 2022-05-31 | GenomeFrontier Therapeutics, Inc. | Transposon system, kit comprising the same, and uses thereof |
US11408005B2 (en) | 2016-12-12 | 2022-08-09 | Seattle Children's Hospital | Chimeric transcription factor variants with augmented sensitivity to drug ligand induction of transgene expression in mammalian cells |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0350341A1 (en) | 1988-05-18 | 1990-01-10 | Centre National De La Recherche Scientifique | Cloning and expression vectors in an Aktinomyces strain,method of transformation of this strain,obtained strain and preparation of proteins |
US5219746A (en) | 1990-07-19 | 1993-06-15 | Chris Brinegar | Ice-mediated introduction of substances into biological material |
WO1996026270A1 (en) | 1995-02-23 | 1996-08-29 | Rhone-Poulenc Rorer S.A. | Dna molecules, preparation thereof and use thereof in gene therapy |
EP1505089A1 (en) | 2003-08-07 | 2005-02-09 | OctoPlus Technologies B.V. | Cationic (alkyl)acrylamide derivative, polymer based on these derivates, and transfection system comprising said polymer |
EP1620559A1 (en) | 2003-05-08 | 2006-02-01 | MAYRHOFER, Peter | Minicircle vector production |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA2715852A1 (en) * | 2007-03-07 | 2008-09-12 | Aarhus Universitet | A pig whose genome comprises a site-specific, heterologous recombination site |
CA2788635A1 (en) * | 2010-02-01 | 2011-08-04 | The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University | Enhanced efficiency of induced pluripotent stem cell generation |
-
2011
- 2011-10-25 DE DE102011118018.8A patent/DE102011118018B4/en active Active
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0350341A1 (en) | 1988-05-18 | 1990-01-10 | Centre National De La Recherche Scientifique | Cloning and expression vectors in an Aktinomyces strain,method of transformation of this strain,obtained strain and preparation of proteins |
US5219746A (en) | 1990-07-19 | 1993-06-15 | Chris Brinegar | Ice-mediated introduction of substances into biological material |
WO1996026270A1 (en) | 1995-02-23 | 1996-08-29 | Rhone-Poulenc Rorer S.A. | Dna molecules, preparation thereof and use thereof in gene therapy |
EP1620559A1 (en) | 2003-05-08 | 2006-02-01 | MAYRHOFER, Peter | Minicircle vector production |
EP1505089A1 (en) | 2003-08-07 | 2005-02-09 | OctoPlus Technologies B.V. | Cationic (alkyl)acrylamide derivative, polymer based on these derivates, and transfection system comprising said polymer |
Non-Patent Citations (28)
Title |
---|
A. Krieg et al., Nature 1995, 374: 546-9 |
A. Landy et al., Science 1977, 197(4309): 1147-1160 |
A. Müller et al., Nucleic Acids Research 1995, 23(11): 1894-1900 |
B. J. Andrews et al., Cell 1985, 40(4): 795-803 |
Bigger et al. (J. Biol. Chem. 2001, 276: 23018-23027) |
Chen et al. (Mol. Ther. 2003, 8: 495-500) |
D. J. Lampe et al., Genetics 1998, 149(1): 179-187 |
E. Neumann et al., EMBO J. 1982, 1(7): 841-845 |
F. L. Graham et al., Virology 1973, 52(2): 456-467 |
F. Scherer et al., Gene Ther. 2009, 9(2): 102-109 |
H. L. Fu et al., Journal of Control Release 2007, 124(3): 181-188 |
Hartley, J. L., Temple, G. F., and Brasch, M. A. (2000) DNA Cloning Using in vitro Site-Specific Recombination. Genome Research 10, 1788-1795 |
J. C. Way et al., Genetics 1985, 111(4): 705-713 |
J. Lundeberg et al., Genet. Anal. Techn. Appl. 1990, 747-52 |
J. M. Leong et al., J. Biol. Chem. 1985, 260(7): 4468-4470 |
J. R. Bateman et al., Genetics 2006, 173(2): 769-777 |
Kreiss et al. (Appl. Microbiol. Biotechnol. 1998, 49: 560-567) |
L. Eberl et al., Mol. Microbiol. 1994, 12(1): 131-141 |
L. Mátés et al., Nat. Genet. 2009, 41: 753-761 |
M. A. Hauser et al., J. Biol. Chem. 1992, 267(10): 6859-6864 |
M. Tsukakoshi et al., Applied Physics B-Photophysics and Laser Chemistry 1984, 35(3): 135-140 |
Mayrhofer et al., 2008 |
P. L. Felgner et al., P. N. A. S. 1987, 84(21): 7413-7417 |
P. Mayrhofer et al., J. Gene Med. 2008, 10(11): 1253-1269 |
P. Wils et al., Gene Therapy 1997, 4(4): 323-330 |
T. E. McKnight et al., Nano Letters 2004, 4(7): 1213-1219 |
W. M. Stark et al., Trends Genes. 1992, 8(12): 432-439 |
Z. Ivics et al., Cell 1997, 91: 501-510 |
Cited By (23)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP2862935A1 (en) | 2013-10-15 | 2015-04-22 | PlasmidFactory GmbH & Co. KG | Minicircles with viral expression cassettes and their use in the transformation of cells to generate recombinant viruses or viral gene vectors |
DE102013220859A9 (en) | 2013-10-15 | 2015-07-02 | Plasmidfactory Gmbh & Co. Kg | Minicircles with viral expression cassettes and their use to transform cells to produce recombinant viruses or viral gene vectors |
US9382552B2 (en) | 2013-10-15 | 2016-07-05 | PlasmidFactory GmbH + Co KG | Minicircles with viral expression cassettes and their use in the transformation of cells for generating recombinant virus or viral gene vectors |
DE102013220859A1 (en) | 2013-10-15 | 2015-04-16 | Plasmidfactory Gmbh & Co. Kg | Minicircles with viral expression cassettes and their use to transform cells to produce recombinant viruses or viral gene vectors |
US10611837B2 (en) | 2014-04-10 | 2020-04-07 | Seattle Children's Hospital | Transgene genetic tags and methods of use |
US11155616B2 (en) | 2014-04-10 | 2021-10-26 | Seattle Children's Hospital | Drug regulated transgene expression |
US11414486B2 (en) | 2014-04-10 | 2022-08-16 | Seattle Children's Hospital | Transgene genetic tags and methods of use |
US10865242B2 (en) | 2014-04-10 | 2020-12-15 | Seattle Children's Hospital | Method and compositions for cellular immunotherapy |
US11458167B2 (en) | 2015-08-07 | 2022-10-04 | Seattle Children's Hospital | Bispecific CAR T-cells for solid tumor targeting |
US11123369B2 (en) | 2015-08-07 | 2021-09-21 | Seattle Children's Hospital | Bispecific CAR T-cells for solid tumor targeting |
WO2017050884A1 (en) * | 2015-09-22 | 2017-03-30 | Julius-Maximilians-Universität Würzburg | A method for high level and stable gene transfer in lymphocytes |
JP7142571B2 (en) | 2015-09-22 | 2022-09-27 | ユリウス-マクシミリアン-ウニヴェルシテート・ヴュルツブルク | Methods for high-level and stable gene transfer in lymphocytes |
JP2018532426A (en) * | 2015-09-22 | 2018-11-08 | ユリウス−マクシミリアン−ウニヴェルシテート・ヴュルツブルク | Method for high level and stable gene transfer in lymphocytes |
CN108601849A (en) * | 2015-09-22 | 2018-09-28 | 尤利乌斯·马克西米利安维尔茨堡大学 | A method of high-caliber in lymphocyte and stable gene transfer |
AU2016325384B2 (en) * | 2015-09-22 | 2021-07-22 | Julius-Maximilians-Universitat Wurzburg | A method for high level and stable gene transfer in lymphocytes |
EP3359676A4 (en) * | 2015-12-14 | 2018-08-15 | Genomefrontier Therapeutics, Inc. | Transposon system, kit comprising the same, and uses thereof |
US11345926B2 (en) | 2015-12-14 | 2022-05-31 | GenomeFrontier Therapeutics, Inc. | Transposon system, kit comprising the same, and uses thereof |
EP3219800A1 (en) * | 2016-03-15 | 2017-09-20 | Max-Delbrück-Centrum Für Molekulare Medizin | A transposon-based transfection system for primary cells |
US10975136B2 (en) | 2016-03-15 | 2021-04-13 | Max-Delbrück-Centrum Für Molekulare Medizin In Der Helmholtz-Gemeinschaft | Transposon-based transfection system for primary cells |
CN109312360A (en) * | 2016-03-15 | 2019-02-05 | 马克思-德布鲁克-分子医学中心亥姆霍兹联合会 | The transfection system based on transposons for primary cell |
WO2017158019A1 (en) * | 2016-03-15 | 2017-09-21 | Max-Delbrück-Centrum Für Molekulare Medizin In Der Helmholtz-Gemeinschaft | A transposon-based transfection system for primary cells |
CN109312360B (en) * | 2016-03-15 | 2022-10-28 | 马克思-德布鲁克-分子医学中心亥姆霍兹联合会 | Transposon-based transfection system for primary cells |
US11408005B2 (en) | 2016-12-12 | 2022-08-09 | Seattle Children's Hospital | Chimeric transcription factor variants with augmented sensitivity to drug ligand induction of transgene expression in mammalian cells |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE102011118018B4 (en) | 2017-10-26 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
DE102011118018B4 (en) | Minicircles with transposition cassettes and their use for transforming cells | |
DE60221801T3 (en) | CPG-FREE SYNTHETIC GENES AND BACTERIAL PLASMIDES | |
DE102013220859B4 (en) | Minicircles with viral expression cassettes and their use to transform cells to produce recombinant viruses or viral gene vectors | |
DE212012000234U1 (en) | Modified cascade ribonucleoproteins and applications thereof | |
EP3222728A1 (en) | Method for regulating gene expression using cas9 protein expressed from two vectors | |
DE212015000061U1 (en) | CRISPR-enabled multiplex genome engineering | |
DE2759053A1 (en) | METHOD FOR MANUFACTURING GENE PRODUCTS FROM PLASMID DNA | |
DE112006003608T5 (en) | A method of presenting target proteins at the cell surface using Bacillus Anthracis Exosporium | |
EP2205767B1 (en) | Method for determining frameshift mutations in coding nucleic acids | |
DE19720839B4 (en) | Modular principle technology for the production of long, exact DNA constructs in vitro, in particular for the production of constructs for the production of artificial chromosomes (MAC, mammalian artificial chromosomes) from two stably cloned DNA components and the ditelomeric vector prototype PTAT | |
WO2012045722A1 (en) | Methods for semi-synthetically producing highly pure minicircle dna vectors from plasmids | |
DE69836745T2 (en) | HIGHLY TRANSFORMABLE BACTERIAL CELLS AND METHOD FOR THE PRODUCTION THEREOF | |
DE19851415A1 (en) | New transactivator containing mutant tetracycline repressor, useful e.g. as pharmaceutical and for regulation of gene expression, has amino acids exchanged at selected sites | |
DE10140030C1 (en) | Method for performing multiple recombination events in a genetic system, useful e.g. for removing antibiotic resistance genes, uses mutant recombinase recognition sites | |
DE10101761B4 (en) | Use of isolated homogeneous nucleic acid multimers for non-viral gene therapy or genetic vaccination | |
DE102008051708A1 (en) | Site-specific recombination for gene activation in genetic systems | |
EP1913139B1 (en) | Methods for carrying out the selective evolution of proteins in vivo | |
DE60315179T2 (en) | A method of inserting a nucleic acid into a prokaryotic or eukaryotic cell by homologous recombination | |
DE19956513A1 (en) | Resolvase-catalyzed, sequence-specific DNA recombination in eukaryotic cells | |
DE10133928A1 (en) | Preparation of deletional mutants, useful for high-throughput screening to identify essential genes, potential targets for biologically active agents, comprises a polymerase chain reaction | |
DE10210284A1 (en) | Methods for identifying specific RNA inhibitors | |
Philip et al. | Using Recombineering Technology to Create Genetically Engineered Mouse Models | |
EP1623043A1 (en) | Method for the identification of cell lineages | |
WO2001075127A2 (en) | Cloning system used in the construction of homologous recombination vectors | |
WO2003027241A2 (en) | Animal integration vector and methods for its use |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
R123 | Application deemed withdrawn due to non-payment of filing fee | ||
R409 | Internal rectification of the legal status completed | ||
R409 | Internal rectification of the legal status completed | ||
R012 | Request for examination validly filed |
Effective date: 20130803 |
|
R016 | Response to examination communication | ||
R084 | Declaration of willingness to licence | ||
R016 | Response to examination communication | ||
R016 | Response to examination communication | ||
R018 | Grant decision by examination section/examining division | ||
R020 | Patent grant now final |