CN1030018A - 无毒微生物及其应用 - Google Patents

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Abstract

本发明提供了一种用于脊椎动物或非脊椎动物 免疫的疫苗，该疫苗包括病原微生物的一种无毒衍生 物，所说的衍生物基本上不能产生功能性腺苷酸环化 酶和环化AMP受体蛋白质。本发明还提供了另一 种用于脊椎动物或脊椎动物免疫的疫苗，该疫苗包括 病原微生物的一种无毒衍生物，其中所说的衍生物基 本上不能产生功能性腺苷酸环化酶和环化AMP受 体蛋白质，但却能表达由所述脊椎动物的病原体分离 得到的重组基因，从而产生一种抗原，它能够在所述 脊椎动物中诱发针对所述病原体的免疫应答。

Description

本申请是与此有关的美国申请的继续，该美国申请号为058360，申请日是1987年6月4日。
本发明涉及无毒微生物，它们的制备方法及在疫苗中的应用。
以前所用的抗传染病的疫苗一般组成如下：（Ⅰ）由病原因子纯化得到的特定组分，包括完整的抗原、抗原片段或天然存在的抗原或抗原决定簇的合成类似物，（Ⅱ）抗个体基因型抗体，（Ⅲ）被灭活的完整病原因子，或（Ⅳ）作为活疫苗的病原因子的无毒衍生物。这些类型的疫苗有许多，下面即是其中的一些实例：
美国专利4250262公开了从突变链球菌（Streptococcusmutans）回收葡糖基转移酶的方法，并将该纯化酶用于抗龋齿的局部免疫，即Ⅰ型疫苗。就突变链球菌的血清型a、c或g来说，都对细菌的培养、酶的纯化以及用酶刺激唾液中的IgA抗体等有详细描述。在美国专利4203971和3239749中，可见到从纯化细菌特定组分得到疫苗的其他一些例子，这些专利公开了用于抗淋病奈瑟氏菌（Neisseria    gonnorrhoeae）感染的疫苗，该细菌由淋球菌外膜物质中的糖蛋白组成。注射糖蛋白可刺激杀菌的抗体。
美国专利3931398公开了将死的突变链球菌细胞施用在口腔中防止牙齿衰败，这是Ⅲ型疫苗的一个例子。发明者发现，所产生的抗体是免疫球蛋白A（IgA）抗体，它们使蚀斑的形成减少。
活细菌疫苗（Ⅳ型）含有选择的大肠杆菌（E.coli）菌株，这是美国专利3975517公开的。这种细菌在注射到奶牛乳腺之前要用稀福尔马林进行减毒处理，使其部分钝化。在以后的奶中发现了这样产生的抗体，它能保护新生猪抵抗大肠杆菌的感染。使大肠杆菌钝化的福尔马林处理只是使细菌暂时减毒，因此在注射之前要小心防止细菌复原。这种复原会造成严重感染而不是起到保护作用。
将突变引入上述菌株以产生无毒菌株已是可行的，这样产生的菌株基本上在寄主内不能存活。这种菌株可以说是遗传学上的衰减。为了易于叙述，遗传衰减的原理将参照沙门氏菌系统予以说明，然而，正将如下面所讨论的，其原理能够广泛应用。
鼠伤寒沙门氏菌（Salmonella    typhimurium）、伤寒沙门氏菌（S.typhi）和具有侵染性质的其他沙门氏菌种，在口服之后通过附着、侵染和在与肠道相关的淋巴样组织（GALT;淋巴集结）的细胞中增殖而进入深层组织（Carter和Collins，J.Exp.Med.139：1189-1203，1974）。由于沙门氏菌介导的抗原至GALT的传递能诱发分泌型免疫应答及体液与细胞免疫应答，无毒沙门氏菌突变体虽已失去致病能力，但并未损伤其附着并侵袭GALT的能力，因此它们很可能作为有效的载体以传递外源抗原，例如将集群或毒性抗原等转移到GALT，并诱发针对衍生此抗原的病原体的保护性免疫。能够表达其他微生物抗原的无毒沙门氏菌疫苗菌株的构建，已通过经典的基因转移方法（Formal等人，Infect.Immun，34：746-750，1981））利用DNA重组技术得到实现。利用后一技术，曾经构建了这样的无毒沙门氏菌菌株，它们能表达与沙门氏菌正常交换遗传信息的生物的基因（Stevenson和Manning，FEMS    Microbiol.Lett.28：317-321，1985;Clements等人，Infect.Imm.53：685-692，1986），以及用经典的基因转移法不能将遗传信息转移给沙门氏菌的微生物的基因（Curtiss，J.Dent.Res.65：1039-1045，1986）。已经表明，这种二价无毒沙门氏菌菌株能诱发针对表达的抗原的抗体，并在一个例子中对表达的抗原产生细胞免疫应答（Brown等人，J.Infect.Dis.155：86-92，1987），但有关诱导抗提供集群或毒性抗原的病原体的保护性免疫的数据仍然不足。
Bacon等人（Brit.J.Exp.Pathol.32：85-96，1951）首先研究了伤寒沙门氏菌营养缺陷型突变体的无毒性。他们指出，要求嘌呤、对氨基苯甲酸和门冬氨酸的突变体已降低对鼠的毒性。Germanier和Furer（Infect.Immun.4：663-673，1971）首先用鼠研究了使用鼠伤寒沙门氏菌galE突变体Ty21a作为人体抗伤寒热的疫苗（J.Infect.Dis.131：553-558，1975）。Stocker（美国专利4550081）利用Tn10进行转座子诱变，再选择萎 酸抗性，这导致Tn10和邻近DNA顺序的缺失性丢失，从而产生不能回复的缺失突变，这是一个Bacon等人使用的突变体中很明显的问题。Stocker首先是分离aro A缺失（△）突变体，其缺陷是不能合成芳族氨基酸组的化合物，包括叶酸生物合成所需要的对氨基苯甲酸和二羟基苯甲酸，后者是肠螯合素的前体，并且最近将△aro A突变与排除腺嘌呤生物合成的缺失突变结合。由Tn10诱导和萎 酸抗性产生的△asd突变，产生了对于二氨基庚二酸的要求，这一点被用来使鼠伤寒沙门氏菌变为无毒，并且不损害其诱导全身分泌免疫应答的能力。因为许多沙门氏菌具有一种提供毒性的质粒，曾研究过去除此质粒的衍生物，并提出用它作为活疫苗使用（Nakamura等人，Infect.Immun.50：586-587，1985）。
尽管前面描述的提供无毒沙门氏菌而不损害其免疫原性的每一种方法都有其优点，但每一种方法都存在问题。gal    E突变体难于生长以保持其免疫原性，因为它们对半乳糖敏感，必须在半乳糖存在的场合下生长以产生正常的LPS，然而正常的LPS选择性地导致非免疫原性的抗半乳糖突变体的产生。尽管△aro    A突变体排除了肠螯合素和叶酸二者的合成，肠螯合素对鼠伤寒沙门氏菌的毒性的必要性曾因Benjamin等人（Infect.Immun.50：392-397，1985）的大量结果而受到怀疑，这些结果表明，干扰鼠伤寒沙门氏菌络合与铁运输能力的任何和所有突变都对毒性无很大的影响。因此△aro    A突变体的无毒性很可能只是由于不能合成对氨基苯甲酸（pABA）与叶酸。由于Bacon等人（见上）观察到，在用不能合成pABA的突变体侵染的小鼠的饮食中施用对氨基苯甲酸导致野生型毒性水平，因此人们必须注意疫苗菌株无毒性的表型逆转，在饮食中消耗了其合成途径被无毒突变体所阻断的代谢物时则可能发生这种逆转。而△asd突变体，尽管没有这些困难，但它们在口服和侵入GALT后迅速死亡，因此△asd突变体只能有效地诱导全身粘膜性免疫，而不能有效地诱导体液与细胞免疫。
本发明利用转座子诱导的突变体而克服现有技术中疫苗的许多缺点，在转座子诱导的突变体中，导致无毒性的损伤不可能通过食物或动物宿主能提供的任何东西进行修复。这些缺失当然可由DNA重组技术引入。
本发明还提供一种使脊椎动物或非脊椎动物免疫的疫苗，它由一种病原微生物的无毒衍生物组成，所述衍生物基本上不能产生功能性腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质。
本发明还提供一种使脊椎动物或非脊椎动物免疫的疫苗，该疫苗由微生物的无毒衍生物组成，所述衍生物不能产生功能性腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质，而能表达由所述脊椎动物或非脊椎动物的病原体衍生的重组基因从而在该脊椎动物或非脊椎动物中产生一种抗原，该抗原能在该动物体内诱发针对所说病原体的免疫应答。
本发明还提供一种刺激脊椎动物或非脊椎动物内免疫系统的方法，其组成步骤如下：
给予所说的脊椎动物或非脊椎动物施用一种使脊椎动物或非脊椎动物免疫的无毒疫苗，该疫苗由病原微生物的无毒衍生物组成，所述衍生物不能产生功能性腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质。
本发明还提供刺激脊椎动物或非脊椎动物免疫系统的一种方法，其组成步骤如下：
给所述脊椎动物或非脊椎动物施用一种无毒的微生物衍生物，所述衍生物不能产生功能性腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质，但能表达由所述脊椎动物或非脊椎动物的病原体衍生的重组基因，从而在所述脊椎动物或非脊椎动物中产生一种抗原，它能在该动物体内诱发针对所述病原体的免疫应答。
本发明还为脊椎动物或非脊椎动物宿主蛋白质的合成提供一种载体微生物，它由病原微生物的无毒衍生物组成，所述衍生物不能产生功能性腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质，而能表达由所述脊椎动物或非脊椎动物宿主衍生的重组基因，从而产生一种能在所述脊椎动物或非脊椎动物体内抑制、调节或增强免疫应答的产物。
本发明还提供一种调控脊椎动物或非脊椎动物免疫应答的方法，该方法包括将病原微生物的无毒衍生物引入所说的脊椎动物中，所述衍生物不能产生功能性腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质，但能表达由所述脊椎动物或非脊椎动物衍生的重组基因，从而产生一种能够抑制、调节或增强所述脊椎动物或非脊椎动物免疫应答的基因产物。
本发明还提供一种针对变应原而使脊椎动物或非脊椎动物脱敏的方法，该方法包括给所说的脊椎动物施用一种病原微生物的无毒衍生物的步骤，该病原微生物表达一种由某种生物衍生的重组基因，该生物能够产生针对所述脊椎动物或非脊椎动物的一种活性变应原，从而在该动物中产生一种抗原，它能使所说的脊椎动物或非脊椎动物针对所述脊椎动物的所述变应原脱敏，所说的无毒衍生物不能产生功能性腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质。
本发明还提供一种产生病原微生物的无毒衍生物的方法，所说的衍生物不能产生功能性腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质，该方法包括使病原微生物产生突变，即使腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质的基因通过转座子诱变产生缺失突变，并对衍生物进行分离。利用DNA重组技术在腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质基因中产生缺失也可达到相同目的。
图1说明在用7.4×108CFUχ4064和4.0×108CFUχ3456进行口服接种后一定时间，由淋巴集结（即GALT）回收鼠伤寒沙门氏菌△cya△crp
Figure 881043176_IMG3
χ4064（O）和野生型χ3456（O）的情况。垂直线条表示标准偏差。
图2说明在用7.4×108CFUχ4064和4.0×108CFUχ3456口服接种后一定时间，由隔膜淋巴结（■□）和脾（△△）回收鼠伤寒沙门氏菌△cya△crpχ4064（■▲）和野生型χ3456（□△）的情况。垂直线条表示标准偏差。
图3说明某些鼠伤寒沙门氏菌菌株的质粒含量。用Birnboim方法（Methods，Enzymol.100：243-255，1983）提取质粒DNA，溶于0.5%（重量/体积）琼脂糖凝胶中，并用溴化乙锭染色。χ3344和χ3337溶解产物用苯酚/氯仿/乙醚提取，不经过密度梯度离心。各道中的菌株（100Kb质粒）：a，χ3000（pStLT100）;b，χ3344（-）;c，χ3347（pStLT101）;d，χ3306（pStSR100）;e，χ3337（-）;f，χ3338（pStSR101）;g，χ3339（pStSL100，90Kb，8Kb）;h，χ3340（90Kb，8Kb）;i，χ3351（pStSR101）。标记质粒是Rldrd（100kb）和二聚pACYC184（8kb）（未示出）。
图4说明100kb质粒的限制性酶消化的图谱。用Hind    Ⅲ消化质粒DNA，溶于0.6%（重量/体积）琼脂糖凝胶中，并用溴化乙锭染色。道a含有用HindⅢ消化的噬菌体λDNA。其他道上还示出以下菌株（和相应的质粒含量）：b，χ3000（pStLT100）;c，χ3306（pStSR100）;d，χ3338（pStSR101）;e，χ3339（pStSL100，90kb，8kb）;以及f，χ3340（90kb，8kb）。
图5说明用鼠伤寒沙门氏菌SR-11作小鼠口服接种以后在（A）淋巴集结和（B）脾中的总CFU。χ3306（O□），χ3337（O□）。几何平均值±标准偏差，n＝2-7只小鼠。在测定CFU的单向跟踪的Student氏t试验中，χ3306比χ3337的P值大：a＜0.0125，b＜0.0005。
图6说明用野生型和去除100kb质粒的SR-11混合口服感染小鼠的结果。由淋巴集结（O）、隔膜淋巴结（△）和脾（□）回收的野生型χ3456与去除型χ3337之比的几何平均值±标准偏差。n＝3-7只小鼠，接种7天后为n＝1，在测定比值大于1的几何平均值的单向跟踪的Student氏t试验中的P值：a＜0.05，b＜0.0125，c＜0.0025，d＜0.0005。
在感染3天（P＜0.0125）、4天（P＜0.0005）和5天（P＜0.0025）后，脾的比值比淋巴集结的比值大。在感染3天（P＜0.05）和5天（p＜0.005）后，隔膜淋巴结的比值比淋巴集结的比值大。
图7说明在用SL1344作小鼠的口服接种后，小鼠组织中的CFU。χ3339（空心符号）、χ3340（实心符号）。淋巴集结（□，■），隔膜淋巴结（△，▲），脾（O，●）。几何平均值±标准偏差，n＝2-7只小鼠。在测定CFU的单向跟踪的Student氏t试验中，χ3339的P值比χ3340大;a＜0.025，b＜0.0125，c＜0.0005。
本发明是基于这一发现，即某些突变可以使微生物变为无毒而基本上不影响它的免疫原性。更具体说，本发明涉及微生物疫苗，其中微生物携有缺失（△）突变△cya和△crp，它们分别除去了合成腺苷酸环化酶（ATP焦磷酸裂合酶（成环）EC4.6.1.1）和环化AMP受体蛋白质（CRP）的能力。
环-3′，5′-AMP（cAMP）和环化AMP受体蛋白质对大量涉及传输和降解大量分解代谢产物的基因和操纵子的转录是必需的。曾有实验证据表明，用以传输燃料/碳源的系统都处在cAMP正控制之下，好几种氨基酸透性酶也是如此。除了在分解代谢中非常重要的作用外，细胞中cAMP的浓度还通过温和噬菌体、伞毛合成、鞭毛合成和至少一种外膜蛋白质的合成影响溶原化。尽管CAMP存在于哺乳动物细胞中，但在沙门氏菌可能侵入和增殖的巨噬细胞和其他细胞中存在的cAMP浓度低于0.1-1.0mM    CAMP，这种浓度对于使△cya突变体在体外表现出野生型表型是必需的。而且，所含有的△crp突变会基本上消除由这种△cya突变体在体外吸收cAMP可能积累的任何益处。
一旦因引入△cya△crp突变而赋予无毒性后，该微生物即可作为诱发抗该微生物免疫的疫苗的免疫原性组分。因此，具有腺苷酸环化酶和cAMP受体蛋白质基因的任何微生物，都可考虑按本发明使用，包括而不限于沙门氏菌、大肠杆菌-鼠伤寒沙门氏菌杂种，志贺氏菌属（Shigella）、欧文氏菌属（Erwinia）、耶尔森氏菌属（Yersinia）、巴斯德氏菌属（Pasteurella）、拉基欧氏菌属（Legionella）、或布鲁氏菌属（Brucella）。较好的微生物是沙门氏菌属的成员，如鼠伤寒沙门氏菌、伤寒沙门氏菌、付伤寒沙门氏菌（S.Paratyphi）、鸡沙门氏菌（S.gallinarum）、肠炎沙门氏菌（S.enteritidis）、霍乱沙门氏菌（S.Choleraesuis）、亚利桑那沙门氏菌（S.arizona）或S.dublin。
本发明的另一个具体方案是，用病原微生物的无毒衍生物（本文还称为载体细菌）将选定的抗原转移给GALT，例如转移给回肠的淋巴集结。大家都知道某些属的细菌（如沙门氏菌）寄宿在淋巴集结（Carter，P、B.和F.M.Collins，J.Exp.Med.139：1189，1974）。鼠伤寒沙门氏菌-大肠杆菌杂种也表明聚集在小鼠中的淋巴集结（Hohmann    A.W.等人，Infect.and    Immun.22：763，1978）。如果这些载体细菌含有并表达病原生物的重组基因，将会诱发出针对由病原体产生的抗原基因产物的抗体。随着DNA重组技术的出现，现在已有可能研制这样一种非常独特的疫苗，它的特异抗原不是由病原因子而是由能表达那种抗原基因的另一种宿主细菌菌株产生。当抗原与哺乳动物宿主的基因可能发生交叉反应，并因此加强自身免疫的诱发时，也有可能使用DNA重组技术改变基因，使其不产生引起交叉反应的抗原决定簇。因此，DNA重组技术可用于研制这样的疫苗，这种疫苗没有任何能与脊椎动物宿主抗原发生交叉反应的物质，也不会诱发自身免疫状态。
很明显，本发明对研制抗细菌、真菌、寄生虫或病毒致病因子（在局部免疫是重要的并可能是第一道防线时）的有效疫苗具有广泛的适用范围。这些疫苗的例子是，控制由鼠疫耶尔森氏菌（Yersiniapestis）引起的肺病，由淋病奈瑟氏菌引起的淋病，由钯密螺旋体（Treponema    pallidum）引起的梅毒，以及由沙眼衣菌（Chlamyolia    trachomatis）引起的性病和眼的感染。A组与B组链球菌种，如引起咽喉疼痛或心脏病的那些种，Neisseria    meningitidis、肺炎分枝支原体（Mycoplasma    pneumoniae）、流感嗜血杆菌（Hemophilus    influenzae）、百日咳博德特氏菌（Bordetella    Pertussis）、结核分枝杆菌（Mycobacterium    tuberculosis）、麻疯分枝杆菌（Mycobacterium    leprae）、禽类博德特氏菌（Bordetellaavium）、大肠杆菌、等链球菌（Streptococcus    equi）、肺炎链球菌（S.Pneumoniae）、流产布鲁氏菌（Brucella    abortus）、溶血巴斯德氏菌（Pasteurella    hemolytica）、霍乱弧菌（Vibrio    cholera）、志贺氏杆菌以及嗜肺拉基欧氏菌（Legionella    pneumophila）等都是本发明范围内附加的可由此获得基因的细菌实例。病毒疫苗，如抗流感病毒的疫苗，也可为本发明所包括。还可产生抗其他病毒的病毒疫苗，无论是DNA还是RNA病毒都行，例如来自Papovirus、腺病毒、疱疹病毒、痘病毒、细小病毒、呼吸道和肠道病毒、细小核糖核酸病毒、粘病毒、副粘病毒、或后病毒类的病毒。本发明还可考虑使用预防病原真菌、原生动物和寄生虫等感染的疫苗。
在进一步的具体方案中，当疫苗的免疫原性组分是一种宿主的变应原时，可在设计的接触摄取法中使用这种疫苗使敏感宿主特异性脱敏。
在一个具体方案中，本发明可描述为一种使脊椎动物或非脊椎动物免疫的疫苗，该疫苗含有病原微生物的活的无毒衍生物，所述衍生物不能产生功能性腺苷酸环化酶和cAMP受体蛋白质，但能表达由某种生物得到的重组基因，该生物是所说动物的一种病原体，或该生物产生所说动物的一种变应原。
在另一个具体方案中，可以使用本发明的无毒微生物作为合成各种宿主蛋白质的载体。由于本发明的无毒微生物在引入宿主后能穿越多种免疫活性结构，包括GALT、隔膜淋巴结和脾，所以可用这些微生物瞄准多种免疫调节产物。因此，编码免疫调节蛋白质或肽的一种或多种基因可通过重组导入无毒微生物中，这样，当此微生物寄宿在适当的免疫活性组织中时，能够表达在宿主中抑制、增强或修饰免疫应答的重组产物。免疫调节分子包括但不限于下述例子：集落刺激因子（巨噬细胞、粒细胞或混合细胞）、巨噬细胞化学毒素（Chemotoxin）、巨噬细胞抑制因子、白细胞抑制因子、淋巴细胞毒素、胚变因子、干扰素及白细胞间素。
本发明还有另一个具体方案，即利用此处所述的无毒微生物传递与产生药理活性产物，它们可能刺激或抑制各种生理功能（即增长速率、血压等）。
对本发明的这些具体方案中的每个术语作如下的分析讨论。
疫苗是指用于刺激活体生物免疫系统（因此能对未来的伤害提供保护）的一种制剂。免疫作用是指连续高水平地诱导抗体和/或细胞免疫应答的过程，在该过程中，T-淋巴细胞可在生物内杀死病原体和/或活化其他细胞（例如吞噬细胞）以杀死病原体，该抗体针对于生物体以前已经接触过的病原体或抗原。尽管“免疫系统”这一短语可能包含单细胞生物对存在的外来物体的反应，例如干扰素的产生，但在本申请中，该短语限于与解剖学有关的特点和机制，即是指由多细胞生物产生针对侵入该生物的细胞或体液的抗原物质的抗体。如此产生的抗体可能属于免疫学分类中的任一类，如免疫球蛋白A、D、E、G或M。对于刺激产生免疫球蛋白A（IgA）的疫苗是特别感兴趣的，因为这是由恒温动物的分泌系统产生的主要免疫球蛋白，当然本发明的疫苗并不限于刺激产生IgA的那些疫苗。例如，具有本文描述的特性的疫苗，除了形成IgA外，很可能产生广泛的其他的免疫应答，如细胞和体液的免疫。对抗原的免疫应答的研究深入而广泛。Barrett，James，T.（Textbook    of    Immunology：Fourth    Edition，C.V.Mosby    Co.，St.Louis，MO，1983）对免疫学作了评述，此书全文被引作为本文的参考文献。
脊椎动物是指脊椎动物门的主要部-脊椎动物亚门的任何成员，包括鱼类、两栖类、爬行类、鸟类和哺乳动物，它们的特征是都具有分节骨骼或软骨脊柱。全部脊椎动物都具有功能性的免疫系统，通过产生抗体对抗原作出反应。因此，所有脊椎动物均能对疫苗发生反应。尽管疫苗一般主要用于哺乳动物，例如人或狗（狂犬病疫苗），但商业养殖的其他类脊椎动物的疫苗（如鱼类和鸟类），如具有这里所述的性质，也都在本发明的范围之内。
非脊椎动物是指动物界的任何成员，脊椎动物除外。这类动物构成非脊椎动物部，它们没有椎骨或脊柱。这一类包括除鱼类、两栖类、爬行类、鸟类和哺乳动物外的所有动物。很多非脊椎动物能对抗原刺激产生原始免疫应答，并对本发明公开的感染脊椎动物的相同的微生物敏感。这类非脊椎动物的例子有贝类、软体动物和其他有关动物。虽然至今还没有很好地记载疫苗在保护非脊椎动物方面的应用，但熟悉本领域的专业人员将知道，本发明通过使用非脊椎动物的原始免疫系统能够应用于它们。根据本发明举例来说，贝类受沙门氏菌感染的敏感性将允许导入沙门氏菌的无毒菌株，并因此提供原始免疫系统应答的可能性。因此，应用病原微生物的无毒衍生物（能使非脊椎动物感染的）刺激存在于所述非脊椎动物中的免疫系统对于病原体的应答也在本发明范围内。
本发明的一个具体方案是应用病原微生物的无毒衍生物作为基因产物的载体寄宿于GALT或BALT，所述基因产物用来刺激对病原体或变应原的抗体应答。无毒性并不意味着那一属或种的微生物在任何时候都不可能以病原体起作用，而是指对于被治疗的特定动物来说，所用的特定微生物是无毒的。这种微生物可能属于一个通常是病原体的属或甚至是种，但它必须属于一种无毒菌株。病原体是指能引起疾病或破坏正常的生理功能。无毒菌株不能诱发通常与相应的毒性病原体相关的全部病症。这里使用的微生物包括细菌、原生动物和单细胞真菌。
将第一种生物的基因物质转移到一般不与第一种生物交换基因物质的第二种生物中的技术，近来由于DNA重组技术的迅速发展而得到非常广泛的采用。在这类应用中，以这样的方式将遗传物质由一种生物转移到第二种生物，即使第二种生物繁殖后能产生含有被称为重组基因的相同的遗传物质的后代。这里使用的术语基因是利用它最广泛的意义，即代表任一种生物学遗传单位。重组基因不必如同亲本生物中存在的那样是完整基因，它能够产生或调节一种大分子的生成，例如一种功能性多肽。基因只要能够作为模板指导抗原产物的生产就行。这种产物可能是没有以那种严格形式存在于亲本生物中的物质。例如，编码包括100个氨基酸残基的多肽抗原的功能基因可部分转移到载体微生物中，使得由宿主细胞的细胞机制产生的肽只由75个，或甚至10个氨基酸残基组成。然而，如果这种基因产物是这样一种抗原，它能够针对亲本生物中存在的类似抗原导致抗体形成，则这种基因被认为是在本发明定义的基因范畴之内。另外，如果已知一种特定抗原或其片段的氨基酸顺序，则有可能用自动基因合成仪或类似装置化学合成DNA片段或其类似物，并将所述DNA顺序导入合适的表达载体中。在此谱系的另一端是编码几种基因产物的一长段DNA，其中一个或全部都能是抗原。因此，本发明定义与要求保护的基因是能产生抗原的任何遗传单位。基因可以是染色体、质粒或病毒来源的。
为了使基因能有效地诱导免疫应答，该基因必须被表达。基因的表达意味着基因结构中的固有信息（DNA碱基的顺序）通过基因源于其中的细胞的生化机制，以RNA分子、多肽或其他生物分子的形式转换成一种有形产物。这样产生的生物分子称为基因产物。这里使用的术语基因产物是指在基因控制下由生化反应产生的任一种或多种生物产品。基因产物可以是例如RNA分子、肽、或在酶或最初是基因产物的其他分子控制下产生的产物，即代谢产物。例如，基因可以首先控制RNA分子的合成，RNA分子通过核糖体的作用翻译成酶，而酶又在与基因来源的原始细胞不同的环境条件下控制葡聚糖的生成。RNA分子、酶、葡聚糖等按本发明使用的术语都是基因产物。这些基因产物中的任何一种，以及其他许多类型的基因产物，如糖蛋白和多糖，如果将它们引入动物的免疫系统都将起抗原作用。蛋白基因产物，其中包括糖蛋白和脂蛋白，是作为抗原用于疫苗中的优选的基因产物。
为了使疫苗能有效地产生抗体，应该以这样的方式释放抗原物质，即使接种动物的产生抗体的机制运转起来。因此，应该把基因产物的微生物载体引入动物中。如同前面所讨论，为了刺激GALT或BALT细胞更好地反应，最好以口服、胃插管或以气溶胶的形式将微生物或基因产品直接引入肠道或支气管中，当然其他施用疫苗的方法也是可能的，这些方法有例如静脉、肌肉、皮下注射或乳腺、阴茎、阴道用药。
当无毒微生物以载体微生物使用以及载体微生物存在于动物中后，抗原需要变成动物免疫系统能够接触的。这一点在载体微生物死后可以达到，因为此时抗原分子被释放。当然，使用不需溶解便释放周质内含物的“渗漏”无毒突变体也是可能的。另外，可以选择一种基因以控制抗原的产生，使得载体细胞在其死亡之前就使其外部环境能够接触抗原。用这种办法能使用一种活的微生物，它将滞留在接种动物中（如在淋巴集结处）继续产生抗原，因而连续地诱发抗体的生成。在这些情况下，一种较好的基因产物是通过细胞膜转移到外部环境中的产物，或者附着或嵌入外膜中的产物，使得该基因产物的全部或部分都暴露在环境里。典型的后一类基因产物是通常在生物体表面发现的抗原，而针对它们的预防正是所期望的。如果这些抗原以正常方式转移到细胞表面，则针对此抗原的抗体生成将会增加。
使用病原体向GALT或BALT传递来自其他病原体的抗原是不合适的，除非这种病原体能被赋予无毒性，并同时保持侵染淋巴集结或BALT的能力。
产生重组基因的生物可以是接种动物的任何病原体，或者可以是产生动物变应原或其他抗原的生物。变应原是引起动物变态反应的物质，该动物将进行抗变应原的接种。很多不同的物质都可以是变应原，如动物的毛发皮屑和花粉，而动物个体的变态反应将因任一种特定的变应原而不同。有可能在通常表现出变态反应的动物中诱导对变应原的耐性。诱导耐性的方法是公知的，通常包括给动物施用剂量不断提高的变应原。在前面引用的Barrett教科书中对诱导耐性作了进一步的讨论。最后，如果免疫调节基因或其他药理活性物质的基因是通过载体表达的，则宿主生物本身也可作为遗传物质来源。
给动物服用上面公开的这类活疫苗可用任何已知的或标准的技术。这些技术包括口服、胃插管或支气管-鼻喷雾。所有这些方法都能使活疫苗很容易到达GALT或BALT细胞诱发抗体生成，它们是优选的施用方法。可以使用其他的施用方法，如静脉注射使载体微生物达到动物血流中。
正如后面叙述的，静脉、肌肉或乳腺注射在本发明的其他具体方案中也都是可接受的。
由于施用的较好方法是口服、气溶胶喷雾和胃插管，因此较好的载体微生物是属于这些种，即它优先寄宿在接种动物的肠或支气管的淋巴上皮结构中。这些菌株最好是通过遗传操作肠病菌株所产生的肠病菌株的无毒衍生物。寄宿在淋巴集结并因此直接刺激IgA生成的菌株是最好的。在动物中，这些菌株包括寄宿在淋巴集结的沙门氏菌和沙门氏菌-大肠杆菌杂种的特殊菌株。
DNA重组技术目前已经是众所周知和广为传布了，以至于可看作是一种常规技术。根据普遍使用的广泛定义，此方法包括将一种生物的遗传物质，或更通常是遗传物质的一部分转移到第二种生物中，使得这种被转移的遗传物质成为该生物遗传物质的永久部分（与之重组）。这通常包括由亲本生物首先得到小片段DNA，该DNA来自质粒或亲本染色体。质粒（也称为染色体外元件）是一种与细胞染色体空间上分离的遗传单位。DNA可能具有任何大小，常常由限制性核酸内切酶的作用得到，该酶将DNA分子在特定的碱基对位置切开。与质粒、噬菌体或柯斯载体连接以形成重组分子后，该重组分子可通过各种方法转移到宿主细胞中，例如转化（从外部环境中吸收裸露的DNA，这可以通过各种化学试剂如钙离子人工诱发）。其他方法如转导也是适用的，这里重组DNA包装在诸如转导噬菌体或柯斯载体之类的噬菌体内。重组DNA处于载体细胞内后，它可能继续以分离片段存在（一般来说完全转移的质粒是这样）或者可能插入宿主细胞染色体中，并在细胞分裂时与染色体一起复制。
尽管遗传物质的转移是相当简单的，但目前仍无法预测哪一个转移体将导致基因的表达。然而，这种选择过程对本发明来说不存在任何困难。由于宿主微生物必须表达被转移的基因并因此产生一种抗原，因此“鸟枪法”能很好地发挥作用。首先，用标准技术生产抗所希望抗原的抗体，例如抗病原微生物的细胞膜片段，来自抗原来源的生物的DNA用核酸内切酶切成多个片段，将这些片段随机插入载体微生物中，比较好的是通过克隆载体。表达病原体抗原的微生物可以很容易地由它们与针对病原体抗原的抗体的反应进行鉴定。可以选择并克隆表达抗原的微生物以得到所希望的重组生物。“鸟枪法”克隆是公知的，并在Maniatis，T.等人，Molecular    Cloning，Cold    Spring    Harbor    Laboratories（1982）中作了详细描述，该书列为本文参考文献。基因转移技术不被认为是本发明的一部分，能够产生包括来自某种生物的基因（它在无毒微生物中被表达）的重组生物的任何方法将足以满足本发明的要求。
在生物种正常地交换遗传信息的情况下，可以采用更为经典的基因转移方法如结合、转化或转导等。
无毒微生物衍生物也被认为在本发明范围内。衍生物意指无毒菌株的有性或无性繁衍的后代和突变体，其中包括单碱基或多碱基置换、缺失、插入、倒位，它们保留了不能产生功能性腺苷酸环化酶和cAMP受体蛋白质的性质，不论它们是否有天然存在的有毒质粒。例如，带有gyr A突变的χ4062和χ4064菌株具有萘啶酸抗性，这里方便地用它作为口服接种后跟踪菌株的标记。然而，对于用作疫苗的菌株来说，最好不具有抗药性。因此，通过对紧密连接的Tn10进行遗传选择，然后通过选择萎
Figure 881043176_IMG4
酸抗性以去除Tn10，从而将gyr A+（赋予萘啶酸敏感性）基因转导入菌株，这样便很容易除去gyr A+突变。
所需要的剂量将随基因产物的抗原性变化，需要量以诱发典型的现有疫苗的免疫应答就足够了。常规试验很容易确定所需要的量。典型的起始疫苗剂量可以是0.001-1mg抗原/Kg体重，按需要增加剂量或剂量次数可提供所希望的保护水平。
疫苗是悬浮或溶解在药物载体中，这种载体可以是任何溶剂、固体或用一种材料做成胶囊，这种材料对接种动物无毒性，并与载体生物或抗原基因产物是相容的。适当的药物载体包括液体载体，如一般的生理盐水和其他无毒盐溶液，其浓度是或接近生理浓度，还有固体载体如滑石或蔗糖，对于农场动物还可加在饲料里。如希望的话，可以加入佐剂以提高抗原性。当通过支气管施用时，疫苗以气溶胶形式是比较好的。
用产生基因产物的病原体进行免疫，还可与病原微生物的无毒衍生物的在先免疫结合使用，该病原微生物作为载体表达由来自病原体的重组基因编码的基因产物。在用表达病原体的基因产物（它刺激GALT或BALT的淋巴细胞）的载体微生物进行免疫，从而诱发了分泌免疫系统对于该基因产物的应答后，可用这种肠胃外免疫作为提高分泌性免疫应答表达的加强剂。提高的应答被称为二次的、增强的或记忆应答，并且能延长宿主的免疫保护。增强免疫可以重复很多次而获得有益结果。
上述公开一般地说明了本发明。更为完全的理解可参看下面的特殊实例，这些实例只是作为说明，除非特别指出，它们不作为限制。
实例1
本实例说明通过导入影响cAMP合成和利用的缺失突变来构建一种无毒衍生物。
细菌菌株    所用鼠伤寒沙门氏菌菌株列于表1。它们保存在冰冻培养液里，其培养物悬浮在含5%甘油的1%细菌胨（Bacto-Peptone）中，并在干冰-乙醇中快速冷冻，双份贮存于-70℃，对于常规使用，也可在含50%甘油的1%细菌胨中于-20℃悬浮贮存。
培养基    对于常规培养，复合培养基是L-肉汤培养基（Lennox;Virology    1：190-206，1965）和Luria肉汤培养基（Luria和Burrous，J.Bacteriol.74：461-476，1957）。对碱性琼脂来说，将1.2%    Difco琼脂加入Luria肉汤中，对软琼脂来说，则加入0.65%    Difco琼脂。常规的细菌计数使用Penassay琼脂。以最终浓度为1%的合适碳水化合物补充MacConkey碱性琼脂或Eosin亚甲基蓝琼脂（Curtiss，Genetics    58：9-54，1968）来评价发酵作用。
合成培养基是按前述（Curtiss，J.Bact.89：28-40，1965）补充有最佳水平养分的最低液体（ML）和最低琼脂。按照常规使用带明胶的缓冲生理盐水作稀释剂。
转导    按照常规，使用噬菌体P22HTint按标准方法进行转导（Davis等人，“Aman for Genet.Eng.-Adv.Bact.Genetics”，Cold Spring Harbor Laboratory，Cold Spring Harbor，NY，1979）。供体菌株的过夜培养物于预热的Luria-肉汤中按1∶20稀释，于37℃振荡生长60分钟，然后用0.01倍的P22HTint侵染。侵染混合物振荡过夜大约15小时。加氯仿后再于37℃振荡10分钟，悬浮液离心（Sorvall RC5C，SS-34 rotor，7000转/分，10分钟）去除细菌碎片。含噬菌体（约1010/ml）的上清液在氯仿中于4℃贮存。用浓度为12.5μg/ml的四环素选择Tn10诱发突变的转导。
缺失突变的萎 酸选择 使用由Maloy和Nunn所述的培养基和方法（J.Bact.145：1110-1112，1981）。带有Tn10诱发突变的菌株，在含12.5μg四环素/ml的L-肉汤中于37℃生长过夜，达到约5×108CFU/ml。培养液以1∶40稀释于无四环素的预热L-肉汤中，并于37℃通气至滴度约为2×109CFU/ml。合适数目（107-108）的细胞稀释在BSG中，再涂布在含萎
Figure 881043176_IMG6
酸的培养基上于37℃培养48小时。用相同的选择培养基纯化抗萎
Figure 881043176_IMG7
酸的分离物。挑出单一的提取物，培养后用或者不用12.5μg四环素/ml测定在Penassay琼脂上的四环素敏感性。
小鼠    全部的感染和免疫试验都使用雌性BALB/c小鼠（Sasco，St.Louis，MO）。购买3或7周龄的小鼠，在用于试验之前，关在检疫室一个星期。实验小鼠放在具金属丝底板并有Nalgene滤器盖住的笼子中。随意地喂饲料和水。动物房的温度保持在22-23℃，照明期为12小时。
动物感染 在口服或腹腔接种后，测定鼠伤寒沙门氏菌菌株的毒性。为小鼠接种的细菌于L-肉汤中在37℃静置培养过夜。这种培养液以1∶50稀释于预热的L-肉汤中，并于37℃通气约4小时，达到OD600为大约0.8-1.0。在Sorvall RC5C离心机中离心使细胞浓缩50倍，使用GSA转子，转速为7000rpm，在4℃离心10分钟，接着将浓缩细胞悬浮在BSG中。将适当稀释的浓缩细胞涂布在Penassay琼脂上以测定滴度，以及涂布在含有1%麦芽糖的MacConkey琼脂上以检验Cya/Crp表型。
对于所有口服接种的小鼠，在侵染前4小时停止进食和进水。在用Pipetman    P20口服20μl鼠伤寒沙门氏菌BSG悬浮液前五分钟，用Pipetman    P200给小鼠喂30μl10%（重量/体积）碳酸氢钠。口服接种以后30分钟恢复喂食与水。观察小鼠的病态和死亡率达30天以上。
放松的小鼠用26号针头腹腔接种300μl用BSG稀释的细菌悬浮液。此后观察小鼠的病症和死亡率达30天以上。
保护性免疫的评价 在初始试验中，对于用任一种鼠伤寒沙门氏菌突变株侵染30天后存活下来的任何小鼠，在第31天通过口服施用具小鼠毒性的野生型鼠伤寒沙门氏菌SR11χ3306菌株，所用剂量为LD50的103-104倍。接着，对多组小鼠通过口服用不同剂量的无毒突变体进行免疫，然后在初次免疫后的不同时间施用不同剂量的毒性χ3306细胞。整个实验过程中要观察病态和死亡率，在施用χ3306细胞后还要观察至少30天。
活体存活的鼠伤寒沙门氏菌细胞的计数    通过上述方法用大约1×109细胞对小鼠进行口服接种后，测定野生型和突变型鼠伤寒沙门氏菌SR11菌株的集群化和持续时间。在口服侵染后4、24、48、72、96小时和7天时，测定小肠和结肠内含物中和淋巴集结、位于已除去淋巴集结的回肠远端部分的一段10厘米的小肠壁以及结肠壁的匀浆（8-10）中的鼠伤寒沙门氏菌细胞的滴度。还测定了隔膜淋巴结和脾的匀浆中的细胞的滴度。通过CO2窒息致死小鼠，并立刻将隔膜淋巴结、脾、小肠和结肠置于在冰上冷冻的ML+15%蔗糖最低盐（MLS）中。小肠置于装有4.0ml冷冻MLS的培养皿中，并用外科手术剪刀除去淋巴集结。淋巴集结用冷冻BSG冲洗两次，每次1ml，冲洗后放进一个带玻璃螺旋帽的管（15×100mm）中，其中装有10ml冷冻的MLS和玻璃珠。然后将小肠纵向切割，并将内容物和壁放进50ml易处理的锥形管中，把冷冻的MLS加至5.0ml体积，再摇动1分钟。取出10厘米长的小肠，用5mlBSG冲洗两次，再放进带玻璃螺旋帽的管中（15×100mm），其中装有2.5ml冷冻MLS和玻璃珠。从纵向切割和洗涤小肠时使用过的冷冻MLS中回收小肠内容物，并将其加进50ml易处理的装有小肠内容物的锥形管中。用装有4.0ml冷冻MLS的培养皿装结肠，纵向切割盲肠。结肠内容物与结肠壁置于50ml的最终体积后，摇动1分钟。然后取出结肠壁，用5mlBSG冲洗2次，其后放进带玻璃螺旋帽的管中（15×100mm），其中装有2.5ml冷冻MLS和玻璃珠。从纵向切割和洗涤结肠时使用的冷冻MLS中收集结肠内容物，并加其加到50ml易处理的装有结肠内容物的锥形管中。将隔膜淋巴结与其相连的脂肪组织放进一个带玻璃螺旋帽的管中（15×100mm）摇动，其中装有1.0ml冷冻MLS和玻璃珠。把96小时和7天时收集的脾直接放进一个Dounce研棒型组织匀浆器中，与2.5ml冷冻MLS一起研磨。每支带玻璃珠的管和组织用Super-混合器高速摇动4-5分钟。悬浮液用BSG稀释，并涂布在MacConkey琼脂上，该琼脂含1%乳糖和40μg萘啶酸/ml。通过悬浮液、稀释液体积和平板计数确定总的存活滴度。使用含1%各种碳水化合物的MacConkey琼脂以鉴定所回收的生物具有期待的表型。
用Cya和crp突变构建鼠伤寒沙门氏菌SR11菌株    对于BALB/c小鼠的口服侵染使用鼠伤寒沙门氏菌SR11菌株χ3041。五天后严重生病的动物死亡，然后由淋巴集结回收到确定为具有完全小鼠毒性的分离物χ3181。用P22转导把赋予萘啶酸抗性的gyr    A突变导入χ3181中而得到χ3306，它即是本文所述所有菌株的亲本（表1）。
由于已表明去除100kb毒性质粒的鼠伤寒沙门氏菌分离物完全能附着、侵入和存在于淋巴集结中，但不能穿越隔膜淋巴结和脾，因此，将Cya和Crp突变引入去除质粒的鼠伤寒沙门氏菌SR11菌株χ3337中，以及引入含质粒的SR11衍生物χ3306中。应该强调的是，把pStSR100质粒再引入χ3337能完全恢复该质粒的毒性（见实例3），因此保证了在去除毒性质粒时不会在χ3337中出现第二次突变。
表2列出所有突变菌株及其亲本关于糖的发酵和在各种碳源上生长的表型性质。以关于分解代谢活性对环化AMP和环化AMP受体蛋白的需要而发表的报告为基础，表型与所期望的一致（χ4060是一个例外，它的行为类似于Cya    Crp双突变体，而与cya单突变体不相似）。所有的cya/crp突变体菌株缺乏伞毛和鞭毛，基于从前的结果，这些都与所期望的一致（Saier等人，J.Bact.134（1）：356-358，1978;Yokota和Gots，J.Bact.103：513-516，1970;Komeda等人，Mol.Gen′l    Genet.142：289-298，1975）。另外很明显的是，pStSR100质粒的存在对这些表型无什么影响。
在选择萎
Figure 881043176_IMG8
酸抗性四环素敏感性的衍生物以后的每一步构建中，都要确定一下是否能以比χ3306亲本菌株更高的频率观察到四环素抗性的回复突变体/突变体。在所有的情况下，未观察到这种四环素抗性的回复突变体/突变体。
表3列出了好几种突变菌株及其亲本在含有0.5%葡萄糖的MA上的菌落直径（以不同的时间保温时），以及在含有0.5%葡萄糖的ML中的代时。明显可见，有或无△crp突变并与pStSR100质粒存在与否无关的△cya菌株，其生长要比其亲本χ3306培养物慢得多。
Figure 881043176_IMG10
突变菌株对小鼠的毒性 用105突变体细胞腹腔侵染单个小鼠，或者用108突变体细胞口服侵染单个小鼠，记录其病症和死亡率，这样得到突变体菌株毒性的初步信息。由于cya：Tn10突变的χ3395和crp：Tn10突变的χ3396显然是无毒的，还由于用这两者侵染后存活的小鼠对野生型χ3306细胞的攻击有免疫能力，所以对χ3395和χ3396的毒性进行进一步研究。表4的数据表明，用cya：Tn10突变体或crp：Tn10突变体LD50剂量的大约103倍侵染，小鼠还能继续存活。然后对缺失Tn10和相邻DNA顺序的菌株开始进行研究。表5列出通过口服鼠伤寒沙门氏菌野生型、△cya和△crp菌株侵染小鼠所出现的症状和死亡率。很明显，不考虑侵染时小鼠的年龄，所有小鼠受到任一种突变菌株1000-4000倍野生型LD50剂量的侵染后而存活。表5中关于pStSR100去除的衍生物χ3337的无毒性的数据与实例3中详尽的研究结果是一致的。
表6还列出另外一些数据，即关于用△cya和△cya△crp菌株χ4060和χ4062（去除质粒的）和χ4032和χ4064（含有质粒的）侵染的数据，用1×109细菌口服侵染小鼠，与未受侵染的小鼠实际上一样生长。
表7列出了有关鼠伤寒沙门氏菌突变体的腹腔施用的数据。小鼠对各种突变菌株以102-103倍野生型LD50剂量侵染仍然存活。在较高剂量下观察到疾病，这可能部分是由于内毒素的影响。
无毒突变体免疫作用的效果 表8列出有关下述方面的数据：鼠伤寒沙门氏菌△cya和△cya△crp不同突变体诱导对于口服104倍于LD50剂量的完全毒性的鼠伤寒沙门氏菌SR11χ3306细胞的免疫能力。在这种强烈侵染的情况下，许多小鼠出现中度疾病而且食量降低，但用χ4064进行免疫的小鼠仍然健康，进食和生长正常。在服用30天后死亡的所有动物（甚至用χ4064免疫的那些动物）显示脾肿大（Spleenomeglia），以及能够回收χ3306野生型服用菌株，但不能回收无毒的△cya或△cya△crp疫苗菌株。相反地，用完全毒性的χ3306亲本菌株的仅仅100-1000倍于LD50剂量施用于用大约1×109χ4064免疫的小鼠时，未观察到脾肿大和服用菌株的回收。
无毒突变体在体内的组织营养作用和稳定性    图1和图2列出如下数据：在口服后的不同时间，△cya△crp菌株χ4064的回收与萘啶酸敏感的野生型菌株χ3456（Tnminitet标记;见表1）的回收的比较。很明显，△cya和△crp突变没有严重损害鼠伤寒沙门氏菌在淋巴集结上附着、侵入和持续存在的能力，至少在足以诱发保护性免疫的时间内如此（图1），但确实损害达到脾脏或在其中存活的能力（图2）。
无毒突变体的遗传稳定性    以活疫苗口服的菌株必须在无毒性和致免疫能力两方面具有完全的稳定性。因此，在通气下用L-肉汤培养几种优选的疫苗菌株至晚对数期，浓缩50倍后以不同稀释度涂布在一系列含有碳源的最低琼脂培养基上，这些培养基不支持亲本突变体的生长（表2）。将一组复制平板在紫外光下照射，其光强可造成70%细胞死亡。在△cya菌株χ4032中以低而可测的频率（表9）观察到自发回复突变体/突变体，在△cya菌株χ4060中以较高频率观察到自发的回复突变体/突变体。许多这种回复突变体能在大多数碳源上生长，因此很可能是crp＊（Schalte和Postma，J.Bact.141：751-757，1980;Gargos和Adhya，Cell 41：745-751，1985）或csm（Melton等人，Mol.Gen′l Genet.182：480-89，1981）突变，这些突变在无环化AMP时能使CRP活化转录。△cya△crp菌株的回复突变体/突变体如χ4064是极少的（表9），它们尽管能在选择它们的碳源（即甘露醇）上生长，但不能在其他任何原始菌株不能利用的碳源上生长（表2）。这些回复突变体/突变体无疑具有启动子突变，从而使特定基因/操纵子的转录与CRP无关。紫外光照射不能提高突变/回复的频率。
对六种回复突变体/突变体的毒性作了评价。用四只小鼠试验了每种回复突变体。一只口服剂量为105细胞，一只口服剂量为约108细胞，一只腹腔剂量为102细胞，一只腹腔剂量为105细胞。在所有情况下，△cya突变体的四种回复突变体和△cya△crp菌株的二种回复突变体保留它们亲本的无毒性，因为所有32只小鼠仍然健康而无明显的疾病。因此，看来△cya菌株的无毒性不可能只是由于碳水化合物分解代谢的缺陷所致。
上述结果证明了鼠毒鼠伤寒沙门氏菌SR11菌株χ3306若干衍生物的构建，这些衍生物不能合成腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质，而且它们具有或不具有pStSR100毒性质粒。尽管所有菌株经口服接种时均无毒性并且都能对毒性鼠伤寒沙门氏菌野生型细胞的攻击诱发较高的保护免疫力，但含有△cya和△crp突变的
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χ4062和χ4064仍是优先选择的。使用带有crp基因缺失的双突变体能排除crp突变的回复，此回复能在无需任何环化AMP的条件下允许需要CRP蛋白活化的基因和操纵子进行转录。类似地，crp基因的缺乏也能排除cms阻遏基因突变的回复（该突变和crp基因紧密相连）并也可避免环化AMP的需要。虽然所试验的△cya△crp＊或cms回复突变菌株仍保留无毒性，但并没有对足够的独立的回复突变分离菌进行毒性试验，从而断定毒性不能恢复，因此，不管这种变化是多么不可能，△crp突变体应能排除这种毒性恢复。此外，△crp：：Tn10突变有效地降低了鼠伤寒沙门氏菌的毒性（表4），因此，即使在某些种类的基因转移过程中失去△cya突变这种不大可能发生的情况下，△crp突变仍然赋予菌株无毒性。
仍具有pStSR100质粒的疫苗菌株χ4064能诱发比无质粒菌株χ4062更高的免疫力（表8）。这无疑得归因于χ4064（图1和图2）和含质粒的菌株增加了这样一种能力，即在隔膜淋巴结和脾中达到比无质粒菌株更高的效价和更长的持久性（见实例3）。另一方面，在年幼动物或营养不良或遭到损伤的个体中，对于用χ4064进行免疫的耐性不及用χ4062进行免疫的耐性。因此，如果两种免疫都需要，应首先用χ4062而后用χ4064进行免疫。
疫苗菌株如χ4062和χ4064的一种期望的用途是，作为载体向肠系淋巴组织定向集群化或转移毒性抗原（由来自其他病原体的基因表达），从而诱发全身分泌免疫应答和体液及细胞免疫（如有需要的话）。因此，大量克隆载体已被导入χ4062和χ4064中，这些质粒表现出在野生型亲本菌株中相等或更大的稳定性。事实上，χ4062和χ4064较慢的生长速率（表3）无疑提高了质粒复制跟上染色体复制的能力，从而确保子代细胞中含有质粒。此外，还构建了多种重组衍生物，而且发现集落抗原Spa    A在△cya    crp突变体中的表达水平比在具有赋予无毒性的其他突变的鼠伤寒沙门氏菌中的表达水平更高，所述Spa    A抗原对于使突变沙门氏菌（S.mutans）和S.sobrinus群集于唾液糖蛋白覆盖的牙齿表面是必需的（Curtiss，J.Dent.Res.65：1034-1045，1986）。
实例2
本实例说明如何将△cya、△crp突变体导入其他沙门氏菌种中，以使所说的种具有无毒性并因此能用作疫苗组分。
用来实行本发明此实例的沙门氏菌种包括亚利桑那沙门氏菌和鸡沙门氏菌，以作为禽类沙门氏菌菌株。霍乱沙门氏菌作为专一于猪的沙门氏菌，S.dublin作为专一于牛的沙门氏菌以及许多由鸡、火鸡、小牛、猪和马分离获得的鼠伤寒沙门氏菌衍生物。这些菌株可用来构建带有和不带有毒性质粒的△cya△crp突变体，从而首先在小鼠中，而后在特定动物宿主中评价其保护性免疫力。这些无毒的沙门氏菌衍生物还可用来构建二价活疫苗菌株，以刺激对集群和其他细菌病原的毒性蛋白质的保护性免疫。具体地说，可以制备得到预防鸟沙门氏菌（B.avium）和大肠杆菌的疫苗，这两种呼吸道病原体引起家禽的高发病率及死亡率，以及制备在马群中引起马腺疫的等链球菌的疫苗。
无毒沙门氏菌菌株的构建    在培养基中具有带有△〔gal-uvrB〕1005突变（此突变根据是否有半乳糖存在而分别导致光滑或粗糙表型）的cya：：Tn10或crp：：Tn10的鼠伤寒沙门氏菌LT-2菌株可用来产生△cya△crp基因型。用P22HTint转导可以将cya：：Tn10和crp：：Tn10突变导入由各种宿主获得的鼠伤寒沙门氏菌菌株、伤寒沙门氏菌、付伤寒沙门氏菌及其他带有相似的O抗原的沙门氏菌中去。特异于粗糙型的普遍性转导噬菌体plL4被用来将Tn10诱导的突变导入亚利桑那沙门氏菌、鸡沙门氏菌、S.dublin和霍乱沙门氏菌中。上述沙门氏菌的plL4转导要求将粗糙突变体分离。选择2-脱氧半乳糖抗性会导致galE突变体。最后可通过plL4转导除去galE缺陷，所说的plL4是在带有野生型gal+基因的粗糙突变体上增殖的。
可以通过选择菌株的萎 酸抗性衍生物来分离稳定的缺失突变体，所说的菌株含有cya：：Tn10和/或crp：：Tn10插入突变。萎
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酸抗性衍生物由于转座子和相邻宿主染色体基因的不精确切除而对四环素过敏。要想成功地使用Tn10，就必须证实萎
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酸抗性衍生物已完全失去了Tn10（例如，可以采用λ：：Tn10载体作为杂交探针）。
去除毒性质粒的沙门氏菌菌株可以用为鼠伤寒沙门氏菌所发展的方法及遗传工具来构建（见实例1和3）。在此构建环节可采用Way等人所描述的Tnmini-tet（Gene    32：369-79，1984）。将缺乏转位酶并且不能自发缺失的转座子插入到100kb毒性质粒的毒性相关区域中，所说的质粒很可能和S.dublin、鸡沙门氏菌和霍乱沙门氏菌的毒性质粒同源（Popoff等人，Ann.Microbiol，（Inst.Pasteur）135A：389-398，1984）。转座子插段被转导到其他种的galE突变体的同源顺序中。通过使细菌在升高的温度（约43℃）下在新生霉素（一种DNA解旋酶抑制剂）中生长来去除Tnmini-tet标记的毒性质粒。通过用32P标记的天然毒性质粒和去除质粒的衍生物杂交能够证实毒性质粒的去除。
对所有构建的菌株确定其遗传属性的稳定性，并确定在鼠伤寒沙门氏菌突变体中显示的表型也显示在其他沙门氏菌种中。用以促进动物研究的最后一步是导入一种药物抗性标志，从而在动物试验期间对跟踪沙门氏菌菌株提供帮助。使用通常采用的萘啶酸抗性或利福平抗性，因为这些抗性在鼠、鸡、火鸡的正常菌丛中并不流行。
通过转导将某些转座子诱发的突变导入某些沙门氏菌种中去也许是不可能的。但利用结合法可能较好，它是将转座子诱发的突变克隆在某质粒上，该质粒能从整合有IncF或IncP质粒的Hfr移入沙门氏菌中。转化提供了另一种方法，其中所进行的步骤是，选择顺序进入染色体中的重组体、质粒的去除及证实精确的基因损伤。
免疫原性、集群化和持久性的评价    前面构建的无毒沙门氏菌菌株可以通过对小鼠进行口服接种、胃插管或腹腔注射而进行评价。
在此方法中，首先使沙门氏菌菌株生长到对数期，然后在有明胶的缓冲盐水中将它们浓缩到接近1010细胞/ml。要口服接种或胃插管的动物在接种前4小时停止进食和水。在接种前5分钟向小鼠施用碳酸氢钠以中和胃酸。接种后30分钟可以让小鼠进食和水。根据以前在小鼠上使用鼠伤寒沙门氏菌突变菌株的实验，一般对于小鼠的攻击剂量为103LD50。如果对各种野生型沙门氏菌的LD50不及在鼠毒鼠伤寒沙门氏菌中观察到的剂量高，则此剂量就可能是不切实际的。这一点对于口服接种更成问题，因为施用109以上的生物是很困难的。由腹腔接种也可用达到此水平的剂量进行，这将导致内毒素休克（约107细胞）。每月记录1次动物的重量和健康状况。
对接种了突变沙门氏菌菌株、存活30天的小鼠用103LD50毒性沙门氏菌亲本菌株进行口服或腹腔攻击。受感染动物的健康状况可通过每天定期测定其增长速度确定。在进行攻击前，通过毛果碱刺激获取唾液试样，对每只动物抽血以收集其血清。然后确定针对沙门氏菌表面抗原的唾液中分泌的IgA和IgG以及血清中IgA和IgG的定量滴度。还测定二次免疫对抗体滴度和免疫持久性的影响。
无毒并能诱发较高免疫力且对体重增加无不利影响的疫苗菌株可用来确定菌株的定量滴度，所说菌株是附着在小肠和结肠的壁上，存在于淋巴集结、小肠和结肠内容物中、隔膜淋巴结中和脾中，测定时间可在4、24、48、72、96小时及以后一周间隔（如有必要）进行。其结果与获得的免疫应答的数据有关。
然后用对小鼠无毒且致免疫的菌株在适当的动物种中进行试验，例如亚利桑那沙门氏菌、鸡沙门氏菌、鸟类的鼠伤寒沙门氏菌在鸡和火鸡幼禽中进行测试。确定了在禽类宿主中的无毒性及致免疫性以后，测定沙门氏菌在嗉囊、盲肠和法布里齐奥氏囊中的毒性滴度，还包括所检查的鼠组织。
针对禽类博德特氏菌免疫的二价疫苗菌株的构建及检测    针对禽类博德特氏菌的疫苗应表达这种表面结构，该结构涉及到集群化和抗原性，但又不是皮肤坏死毒素的毒性决定子。针对表面蛋白的疫苗应该通过阻断气管的集群化产生免疫力，而针对皮肤坏死毒素的抗体应当中和其不利影响。虽然还不了解涉及集群化的禽类博德特氏菌的表面结构，但在λgt11表达载体中的禽类博德特氏菌的基因文库和转座子诱发的禽类博德特氏菌突变体的可得性，使得能够分离和鉴别编码表面蛋白质的基因。通过将含有表面蛋白质和/或皮肤坏死毒素决定子基因的重组质粒导入无毒沙门氏菌中，就能通过阻断集群化（并因此鉴别涉及集群化的基因）或中和毒素而选择出诱发保护性免疫的二价菌株。
根据Curtiss法（Manual    of    Meth.in    Bacteriol.，ASM，Washington，D.C.，1981），通过转化将禽类博德特氏菌外膜蛋白质和/或皮肤坏死毒素的基因转移至适当的无毒亚利桑那沙门氏菌、鸡沙门氏菌和/或鼠伤寒沙门氏菌衍生物中，这些蛋白质的表达可用Western斑点印迹法（Towbin等，Proc.Natl.Acad.Sci.USA76：4350-54，1979）进行检查。在进行转化前，在50℃下用5分钟热休克来克服沙门氏菌中的任何限制性障碍。以前的报告已经表明，博德特氏菌基因在大肠杆菌中不能有效地表达，除非它们是由大肠杆菌启动子转录的。这一关于禽类博德特氏菌基因表达和蛋白质向沙门氏菌外膜转移的问题可通过利用一种重组载体而消除，在该载体中，所说基因融合在大肠杆菌LamB或omp    A基因中。此外，一旦二价疫苗菌株群集于淋巴集结，则禽类博德特氏菌蛋白质将转移到沙门氏菌外膜并提高激起强免疫应答的可能性。当禽类博德特氏菌插入沙门氏菌中以后，就可以利用由Chorbit等人（EMBO    J.5：3029-37，1986）公开的方法，通过利用特异抗体的集落免疫斑点和免疫标记的沙门氏菌的电镜法分析重组体克隆中基因的表达。
用二价疫苗口服免疫接种到1-3天龄的幼禽上，观察其血清和呼吸道分泌物以确定抗体应答的类型〔IgY（IgG、7SIg），IgM，IgA（IgB）〕及数量。比较免疫和未免疫的幼禽的体重减少以观察二价疫苗可能的付作用。另外，对火鸡幼禽由鼻内接种109有毒禽类博德特氏菌，或将它们暴露于感染鸟群中进行攻击。对受攻击的火鸡幼禽进行疾病观察、尸体剖检，察看其气管组织损伤以及生物滴度的变化。
如果针对禽类博德特氏菌的粘膜免疫应答不足以保护年幼的鸡和火鸡，可以改对下蛋母鸡免疫接种表达禽类博德特氏菌集群化和/或毒性抗原的无毒沙门氏菌，以使母体抗体通过鸡蛋转移。随着幼鸡或火鸡幼禽逐渐长大，这种处理将增加其针对禽类博德特氏菌的免疫性能。在生长期间也可以利用同样的重组载体对其进行保护性的口服免疫。
对禽类大肠杆菌免疫的二价疫苗菌株的构建及检测    通过上述方法，将使无毒大肠杆菌毒性增加或使其具有集群于小鸡气囊能力的重组体克隆导入鸡沙门氏菌和/或鼠伤寒沙门氏菌的无毒菌株中。用荧光抗体技术确定毒性决定子在沙门氏菌细胞表面的表达，但应该注意，大肠杆菌细胞表面决定子也可能表达在沙门氏菌的表面。
将二价疫苗菌株口服免疫接种到鸡中，并将有毒大肠杆菌注射到其尾气囊中进行攻击。如果没有发展败血症，可将鸡进行尸体剖检以确定集群于气囊的能力是否受到影响。接着，如前面对火鸡幼禽所述，对呼吸分泌物和血清中抗体应答的类型、数量及持续时间作综合研究。
疫苗的施用及测定技术和前面对禽类博德特氏菌疫苗一样。
针对等链球菌免疫的二价疫苗菌株的构建及检测    已经构建了表达等链球菌M蛋白质的鼠伤寒沙门氏菌的无毒衍生物。
将等链球菌M蛋白质基因的DNA酶Ⅰ产生的随机片段克隆到λgt11表达载体中。然后用能够诱导保护性免疫的针对M蛋白片段的抗血清，和存在于带有出血性紫癜的马免疫复合物中的针对M蛋白决定子的抗血清对文库进行顺序筛选。选择能表达保护作用但不产生紫癜的克隆基因，将它们融合到Lam    B或omp    A基因中。首先在小鼠身上研究针对携带这些决定子的无毒沙门氏菌的免疫应答，然后再在小马和大马身上研究。
在其表面表达等链球菌M蛋白质的相关抗原决定基的所述沙门氏菌菌株的可用性，构成了激活针对马腺疫的粘膜性鼻咽保护性免疫应答的有效途径。M蛋白质中产生紫癜的决定子的切除能增加疫苗的安全性。
实例3
此实例说明毒性质粒缺失对几种沙门氏菌菌株的免疫原性及毒性的影响。
细菌菌株    此实例中所用的细菌菌株列于表10中，并附有质粒说明。使用了三种鼠伤寒沙门氏菌菌株：来自小鼠的有毒菌株SR-11和SL1344及毒性较小的菌株LT2。大肠杆菌HB101和C600用于遗传操作中。
培养基和生长条件    除非另有说明，否则细菌都是生长在L肉汤中或在L琼脂平皿上（Lennox，Virology    1：190-206，1955），并补充有下列浓度的（μg/ml）的合适抗菌素：氨苄青霉素（Amp）100-200，四环素（Tet）12.5-25，氯霉素（Chl）30，卡那霉素（Kan）50，链霉素（Str）50和萘啶酸（Nal）50。为了便于粘附、侵入及巨
Figure 881043176_IMG22
Figure 881043176_IMG23
噬细胞感染，可将某些培养物在脑心浸液培养基（Difco，Detroit）中生长，因为这种培养基能增加细菌对所用哺乳动物细胞的粘附力。所有培养物都在37℃下在适当培养基中静置生长过夜，然后再使它们在震动培养基中生长至对数期（OD600约0.4～0.7）。
遗传交换    转化过程采用Bagdasarian和Timmis方法（Curr.Top.Microbiol.Immunol.96：47-67，1981）进行。以噬菌体P22HTint作为媒介的转导过程按Schmeiger所述的方法（Mol.Genl    Genet.119：75-88，1972）进行。结合过程既可以通过平皿接合，也可以通过滤器接合（Willetts，Meth.in    Microbiol.17：33-58，1984）。
DNA操作 利用Birnboim法（Meth.Enzymol.100：243-255，1983）进行大规模、快速提取微量溶菌产物质粒。用标准方法进行氯化铯密度梯度离心、Southern斑点印迹杂交、集落斑点杂交和凝胶电泳等。根据制造者的指示，用〔r-32p〕ATP（Amershem，Arlington Heights，Ill.;比活：1445Ci/mmol）进行的DNA缺口翻译由Bethesda Research Laboratories，Gaithersburg，Md.（BRL）的药盒进行。限制酶消化则由来自BRL的酶根据生产厂家的说明进行。
用Tnmini-tet标记鼠伤寒沙门氏菌的100Kb质粒 用具有Tnmini-tet的pNK861（Way等，Gene 32：369-79，1984）转化含有pStLT100的菌株χ3000。Tnmini-tet基本上就是倒位重复中Tn10的TetR基因。通过利用F：Tn5在不相容的来自χ3000（pNK259，F：：Tn5）的质粒pNK259中的转移，从而将pNK861排除在AmpR、TetRχ3000（pStLT100，pNK861）文库之外。为了选择Tnmini-tet的在由F转移的100kb质粒中的插段，需将χ3000：：Tnmini-tet（pNK259，F：：Tn5）文库与大肠杆菌HB101进行接合并选择TetR、KanR和StrR。HB101中潜在的Tnmini-tet标记的100kb质粒通过选择TetR和NalR又转回到鼠伤寒沙门氏菌菌株χ3147中。排出好几种不具有F：：Tn5的NalR、TetR、KanS分离物。
利用以噬菌体P22HTint为媒介的转导过程，将100kb质粒中的Tnmini-tet插段转导到每一个含有100kb质粒的野生型鼠伤寒沙门氏菌菌株中。筛选TetR转导体中增大的100kb质粒和与亲本质粒具有不同限制酶图谱的转导体。
另一种分离pStLT100：：Tnmini-tet插段的方法是由χ3000（pStLT100，pNK861）获取质粒DNA，并转化大肠杆菌HB101（pNK259），选择TetR和ChlR。
去除鼠伤寒沙门氏菌中Tnmini-tet标记的100kb质粒使100kb质粒中带有Tnmini-tet插段的鼠伤寒沙门氏菌菌株经受两种去除过程-在43℃生长或在含有新生霉素的肉汤中生长。对于每一种去除过程，每天都要对Tnmin-tet标记的菌株给以少量接种物（103-104集落形成单位，CFU）。当培养物达到静止期时（OD600约0.9），将其一部分稀释并在含有萎 酸的L琼脂上进行平皿培养。然后，从萎 酸抗性集落中筛选TetS，然后利用微量溶菌产物分析法检查萎
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酸抗性和TetS的质粒含量。去除型衍生物进一步利用32P标记的pStSR100通过微量溶菌产物的Southern斑点印迹杂交法和细菌细胞的集落斑点杂交法进行检查，从而证实已经去除并且没有染色体整合的质粒。
小鼠感染    用7-10周龄的雌性BALB/c小鼠（Harlan    Sprague/Dawley〔Indianapolis〕和Sasco〔St.Louis〕）进行所有的动物感染实验。较大的小鼠用来获取腹膜巨噬细胞。由不同年龄的雄鼠获取正常鼠血清。
对于口服接种，小鼠须6小时不进食和水，然后喂入50μl    10%（重量/体积）的碳酸氢钠，而后再喂入20μl悬浮于含有0.1%（重量/体积）明胶的缓冲盐水中的细菌（BSG）。口服接种是将微量移液管尖直接放在门牙之后以避免损坏口腔粘膜。小鼠在接种后30分钟喂入食物和水。
在皮下接种及侧向尾部静脉接种时，用0.1-0.2ml悬浮于BSG中的细菌注射放松的小鼠。
检查受感染小鼠的器官和组织以确定是否存在沙门氏菌，具体过程如下：利用CO2窒息法将小鼠杀死。无菌摘取脾脏并匀浆于2.5ml BSG中，匀浆既可在备有小杯的OMNI混合器（Dupont，Wilmington，Del.）中进行，也可在玻璃组织匀浆器中进行。从小肠上摘取淋巴集结，通过在2ml BSG中搅动冲洗2次，将冲洗过的淋巴集结匀浆于2.5ml BSG中，该过程既可在OMNT混合器中进行，也可在含有玻璃珠的玻璃管中搅动进行。隔膜淋巴结用玻璃组织匀浆器匀浆于2.5ml BSG中。将组织和器官匀浆的稀释液涂在含有合适抗菌素的L琼脂平皿上。
统计方法    为了对用野生型或去除型鼠伤寒沙门氏菌感染的小鼠组织中的CFU作出比较，先确定几何平均值，并利用单向跟踪的Student氏t试验与野生型CFU（大于去除型CFU）作比较。为了分析混合感染，利用单向跟踪的Student氏t试验，将来自单个小鼠的野生型与质粒去除型CFU的比值的几何平均值与其常用对数平均值大于0（即比值大于1）的比值作比较。采用Reed和Muench法（Amer.J.Hyg.27：493-497，1938）确定小鼠LD50值。组织培养物中的细菌CFU和巨噬细胞感染通过双向跟踪的Student氏t试验比较CFU平均值/孔。
100kb质粒在鼠伤寒沙门氏菌菌株中的存在    所研究的三种鼠伤寒沙门氏菌菌株都具有100kb质粒（图3）。此外，χ3339还具有90kb和8kb两种质粒。在此研究中，对鼠伤寒沙门氏菌菌株的100kb质粒采用下述的三部分命名系统。为了识别象鼠伤寒沙门氏菌这样的血清型，使用“St”符号。后面是菌株符号（LT2中的“LT”，SR-11中的“SR”，SL1344中的“SL”）。最后用数字符号区别野生型质粒（100）或衍生物（101代表特异的Tnmini-tet插段等）。因此菌株SR-11的野生型质粒就是pStSR100。利用限制性酶消化分析纯化的质粒制备物，用Hind    Ⅲ（图4）和EcoR    Ⅰ（数据未示出）在三种菌株的100kb质粒中都得到完全相同的图谱。去除100kb质粒的SL1344、χ3340的限制性酶消化（图4，f道）表明，相应于pStLT100（图4，b道）和pStSR100（图4，c道）的带已丧失。而这两个带存在于χ3339中（e道）。因此，本研究中所检查的三种鼠伤寒沙门氏菌菌株的每一种100kb质粒即使不是完全相同，也是非常相似的。
菌株构建    用Way等人（见上）所述的转座子Tnmini-tet标记带有Tet抗性标记的100kb质粒。Tnmini-tet（一种Tn10衍生物）在倒位重复中不具有IS10R转化酶基因，因此转化酶基因在由供体质粒（pNK861）转位时丧失，因此不能作为Tnmini-tet转位或缺失的媒介。因此，Tnmini-tet插段要比亲本的插段（Tn10）稳定得多。
Tnmini-tet插入到菌株χ3000的100kb质粒中（导致pStLT101形成）后，使得能以10-6-10-7/细胞/代的频率在新生霉素中或在43℃生长以后选择去除100kb质粒的衍生物，从而产生χ3334。将相同的Tnmini-tet插段转导到χ3339和χ3306中，并用来去除这些菌株中的100kb质粒，分别产生χ3340和χ3344。χ3340保留有90kb和8kb质粒（图3，h道）。通过来自洗净的溶菌液的质粒DNA的凝胶电泳（图3），以及通过用32P标记的pStSR100使微量溶菌产物进行Southern印迹杂交与溶解细菌的集落斑点杂交（数据未给出），可以证明100kb质粒已被去除。去除型衍生物不能进行集落斑点杂交表明，没有染色体整合的质粒存在。没有观察到具有整合质粒的去除质粒的衍生物。
通过转化将χ3000，pStLT101和χ3306，pStSR101的Tnmini-tet标记质粒导入去除型衍生物中，分别产生χ3347和χ3338。pStSR101被转化到χ3340中，从而产生χ3351（表3，图3，i道）。
小鼠毒性 确定野生型、去除型和再转化的衍生物对于BALB/c小鼠的口服LD50剂量（表11）。小鼠排出的χ3306和
χ3339的口服LD50分别是3×105CFU和6×104CFU，而χ3000的口服LD50量大于108CFU。各种去除型衍生物的口服LD50都大于108CFU。用χ3337和χ3340感染的小鼠出现病症，且偶有死亡。用100kb质粒再转化的衍生物的LD50恢复到亲本野生型菌株的水平。这证实去除型衍生物的遗传损害事实上就是100kb质粒的丧失。
表11    野生型和去除100kb质粒的鼠伤寒沙门氏
菌的小鼠LD50值a（CFU）
菌株    100kb质粒    口服    皮下
SR-11：
χ3306 + 3×105＜50
χ3337 - ＞108＜50b
χ3338 + 105＜50
SL1344：
χ3339 + 6×104＜50
χ3340 - ＞6×108400
χ3351 + ＜5×104＜50
LT2-2：
χ3000 + ＞1082×103
χ3344 - NTc2×103
χ3347 + ＞109NT
a：用Reed和Meunsch法确定（见上）
b：χ3337的平均死亡时间（12.3天）大于χ3306
的（7.0天）（p＜0.001，Student氏t试验）
c：NT：未测
野生型和去除型衍生物的皮下LD50值与口服LD50值不一样（表11）。χ3306和χ3339的皮下LD50小于50CFU，每一种接种物达到100%死亡率。χ3306、χ3337的去除型衍生物还杀死大多数注射量低于50CFU的小鼠。但是χ3337的平均死亡时间（12.3天）高于χ3306的（7.0天）（p＜0.001，单向跟踪的Student氏试验）。而去除100kb质粒的SL1344，χ3340的皮下LD50都由低于50CFU提高到400CFU。Tnmini-tet标记的100kb质粒再导入χ3340中则恢复到野生型的皮下LD50值。野生型和去除型LT2菌株的皮下LD50大约分别为2000CFU。
菌株SR-11和LT2之间质粒交换的效应 在口服时，菌株LT2的毒性比菌株SR-11的要小得多（表11）。为了确定这两种菌株的100kb质粒在此毒性差别中是否起作用，将每一种100kb质粒的Tnmini-tet衍生物转化到异源去除型菌株中。被109CFU具有pStLT101或pStSR101的菌株SR-11感染的小鼠在接种后7天死亡，而具有任一种质粒的菌株LT2却无毒（口服接种109CFU）。因此，菌株LT2的无毒并不是由于缺乏100kb质粒。除了通过将SR-11质粒、pStSR101导入菌株SL1344以产生毒性χ3351的结果（表11）以外，这一结果也证明这三种菌株的100kb质粒在功能上是等价的。
口服接种后的发病机理    野生型和去除型衍生物之间经口服比经皮下途径存在更为明显的毒性差别提高了这种可能性：即100kb质粒涉及在肠道中的毒性，而不是涉及后来的疾病侵入阶段。为了检查这种可能性，用野生型SR-11，χ3306或100kb质粒去除的SR-11，χ3337口服感染小鼠，并在感染后不同时间检查其淋巴集结和脾中的鼠伤寒沙门氏菌。三种实验的综合结果示于图5中。感染后3小时，在淋巴集结可以观察到很少量的鼠伤寒沙门氏菌（＜100CFU）。这不是接种物由口腔向肠无效通过的结果，因为在接种后2小时内，差不多100%接种物由肠道（基本是大肠内容物）回收。进一步，小肠内容物中的CFU在接种后3天，野生型和去除型的SR-11彼此相等。在接种后1-2天内，淋巴集结里的CFU就逐渐地增加到103-104CFU，而脾中的CFU仍然较低。在接种后3天，淋巴集结和脾所具有的野生型χ3306比去除型χ3337多得多。淋巴集结中CFU的差别不是一直可在不同实验中观察到的，这是因为各个时刻指示的数据都是短暂的。但是，脾中χ3306、χ3337的CFU显著不同，χ3306对于χ3337的超出值逐渐增大，直到用χ3306感染的小鼠在接种后第8天死亡。脾中χ3337达到104CFU的数量级，并且直到接种后25天仍可检测到。因此，口服接种后，野生型和有毒质粒被去除的鼠伤寒沙门氏菌SR-11之间在发病机理上的基本差别在于鼠伤寒沙门氏菌达到脾中和/或繁殖的数量。
为了更准确地比较野生型和质粒去除的SR-11的相对毒性，需用TetR，野生型SR-11，χ3456和NalR，去除质粒的SR-11，χ3337进行混合感染实验。对每只小鼠确定其野生型CFU与质粒被去除的CFU的比率。此外，还需确定隔膜淋巴结的CFU比率，因为隔膜淋巴节是由淋巴集结向脾侵入过程的中介。观察每只鼠之间的CFU的大范围及比率，分析比率的几何平均值。三种实验的综合结果示于图6中。与用野生型或去除质粒的鼠伤寒沙门氏菌感染小鼠进行的实验所观察到的一样（图5），一直到接种后第3天，当野生型与去除型的比率在淋巴集结、隔膜淋巴结和脾中分别为11∶1、200∶1和79∶1时，才在混合感染的小鼠中检测到淋巴集结或脾中存在明显的CFU差别。在接种后第4天，只有脾的比率明显大于1.0（比率＝160∶1），而淋巴集结和隔膜淋巴结的比率分别为1.5∶1和13∶1。另外，与在分别感染的小鼠中所看到的一样，在接种后3天出现短暂的差别后，淋巴集结中野生型和去除型SR-11的CFU几乎相等。接种后5天，隔膜淋巴结和脾所具有的比率分别为200∶1和1600∶1，淋巴集结的比率为1.1∶1。接种后第7天，只有一只小鼠存活，其淋巴集结、隔膜淋巴结和脾的比率分别为2.1∶1，290∶1，210∶1。相对于淋巴集结，各种器官中CFU的最大差别是在脾和隔膜淋巴结中。在接种后3、4、5天，脾中比率显著大于淋巴集结的比率，在接种后第3、5天，隔膜淋巴结的比率显著大于淋巴集结的比率（图6）。
通过口服感染小鼠研究野生型SL1344，χ3339和100kb质粒被去除的SL1344，χ3340的发病机理。两种试验的结果示于图7中。接种后3天，在野生型和去除型SL1344之间，看不到淋巴集结、隔膜淋巴结或脾中CFU存在明显差别。在接种后7-8天，可以看到三种器官中野生型χ3339数目明显大于去除型χ3340的。而在隔膜淋巴结和脾中能看到比在淋巴集结中更大的差别。进一步，在此实验之一中，淋巴集结的CFU差别是不明显的。因此，隔膜淋巴结和脾的感染代表野生型和100kb质粒去除的SL1344之间在发病机理上主要而一致的差别。接种后14天，所有感染野生型χ3339的小鼠都死亡，而感染去除型χ3340的小鼠其淋巴集结和脾中分别感染了2×103CFU和6.3×103CFU。在接种后31天，感染χ3340的小鼠的淋巴集结和脾中分别具有400CFU和320CFU。因此在口服接种后，去除100kb质粒的SL1344能在淋巴集结和脾中存活更长的时间。
静脉接种后脾的感染 上述结果表明，100kb质粒主要与口服接种后由淋巴集结向隔膜淋巴结和脾的侵入有关，而不是与淋巴集结感染或更早的过程有关。为检查鼠伤寒沙门氏菌在脾中的生长情况，用野生型SR-11，χ3456和去除质粒的SR-11，χ3337的混合物静脉接种到小鼠上，并监视脾的CFU（表12）。当小鼠由静脉接种105CFUχ3456和χ3337时，在接种后1小时，这些菌株被同等地清除到脾中。因此，100kb质粒的存在不会影响血液清除。用1×103到4×103CFUχ3456和χ3337的混合物由静脉接种到其他小鼠身上。在接种后4天，检测不到脾中CFU存在明显的差别（表12）。但是，在接种后6-7天，野生型与由脾回收的去除型鼠伤寒沙门氏菌的比率为11.5∶1。此刻，脾中χ3456和χ3337的平均量分别为2.7×106和2.3×105CFU。因此，去除质粒的SR-11能在静脉接种后在脾中存活并复制更长的时间。静脉接种后1周，脾中野生型与去除型SR-11的比率为11.5∶1，而口服接种后5和7天，该比率为1600∶1和210∶1，两者之间形成鲜明对比。由静脉混合接种获得的比率之所以较低，其原因不是χ3456和χ3337之间的协同作用，因为在接种后第6天，单用2×103CFUχ3337感染的小鼠或用混合了等量χ3456的χ3337感染的小鼠，其脾中χ3337水平的平均值均为2.3×105CFU（表12）。
表12 小鼠静脉接种以后脾的感染a
接种后时间
1小时b4天c6-7天c
CFUχ3456d1.9×1054.6×1042.7×106
CFU3337d1.4×1052.5×1042.3×105e
比率（χ3456∶    1.3∶1    1.8∶1    11.5∶1
χ3337）f（P＜0.0025）
比率±SD90.11±0.25 0.26±0.38 1.06±0.39
a.小鼠用等量的野生型χ3456和去除100kb质粒的χ3337混合物由静脉接种，n＝3-5只小鼠
b.接种物＝χ3456和χ3337各5×105CFU
c.接种物＝χ3456和χ3337各1×104-4×104CFU（每次实验给予相等的接种物）
d.来自脾的CFU的几何平均值
e.接种后6天，单用2×103CFUχ3337感染的小鼠脾中具有2.3×105CFUχ3337
f.χ3456∶χ3337比率的几何平均值（对于比率＞1.1者作单向跟踪的Student氏t试验的P值）
g.比率的常用对数平均值±统计分析中所用的标准偏差
去除质粒的鼠伤寒沙门氏菌在口服接种后能在淋巴集结中扩增并到达隔膜淋巴结（图5、6、7）。但是，一直发现野生型与去除质粒的鼠伤寒沙门氏菌之间向隔膜淋巴结和脾侵入的能力具有差别。还证实在口服接种小鼠以后，野生型鼠伤寒沙门氏菌在感染脾方面更为有效（野生型对去除型比率为1600∶1，图6）。但是，即使是去除型衍生物所达到的脾水平也高达104CFU，并一直到接种后31天还可在脾中检测到（图5）。在用野生型和去除型SR-11的混合物口服接种以后，脾中和隔膜淋巴结中所发现的野生型与去除型SR-11的比率明显高于淋巴集结中的（图6）。
去除质粒的SR-11和SL1344的皮下LD50分别小于50CFU和400CFU，这表明去除100kb质粒的鼠伤寒沙门氏菌通过此途径接种时仍保持较大的毒性。必须注意的是，没有一种去除型菌株与32P标记的毒性质粒杂交，因而不存在能产生毒性的染色体整合的该质粒的拷贝。研究了野生型和去除型菌株在静脉接种后感染脾的能力，发现用野生型和去除型鼠伤寒沙门氏菌混合物静脉接种后1周，脾中CFU出现明显差别（野生型与去除型的平均比率为7.5∶1和20∶1）。静脉接种后脾中CFU的差别没有口服接种后5-7天的大（1600∶1和210∶1倍）。这些实验再次证明去除质粒的鼠伤寒沙门氏菌在脾中能达到较高的数量并进行扩增，而且100kb质粒对发病机理的最大影响是在口服接种之后。我们假定去除100kb质粒的鼠伤寒沙门氏菌由皮下接种时仍保持毒性，这是因为该细菌能在细胞外快速扩增，在腹腔中没有被有效地吞噬掉;因此，在小鼠能够通过巨噬细胞清除细菌以控制感染之前就会发生不可克服的感染。当口服施用时，假设全部或大多数侵入细菌在到达隔膜淋巴结时是位于细胞之内。

Claims (17)

1、一种使脊椎动物或非脊椎动物免疫的疫苗，它包括一种病原微生物的无毒衍衍物，所述衍生物基本上不能产生功能性腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质。
2、根据权利要求1的疫苗，其中的微生物能够表达由所述脊椎动物或非脊椎动物的病原体分离得到的重组基因，从而产生一种抗原，它能在所述脊椎动物或非脊椎动物中诱发针对该病原体的免疫应答。
3、根据权利要求2的疫苗，其中所述重组基因编码一种具有药理活性的产物。
4、根据权利要求1或2的疫苗，其中所述的病原微生物是一种细菌。
5、根据权利要求4的疫苗，其中所述的细菌是志贺氏菌属、欧文氏菌属、耶尔森氏菌属、巴斯德氏菌属、拉基欧氏菌属或布鲁氏菌属。
6、根据权利要求4的疫苗，其中的细菌属于寄宿于所说脊椎动物淋巴上皮结构的种或属于感染所述非脊椎动物的种。
7、根据权利要求6的疫苗，其中所说的细菌是沙门氏菌属或沙门氏菌一大肠杆菌杂种。
8、根据权利要求7的疫苗，其中所述细菌是由下组中选出：鼠伤寒沙门氏菌、伤寒沙门氏菌、付伤寒沙门氏菌、鸡沙门氏菌、肠炎沙门氏菌、S.dublin、霍乱沙门氏菌和亚利桑那沙门氏菌。
9、根据权利要求1到8中任一项的疫苗，其中所述病原体是病毒、细菌、原生动物、寄生虫或真菌。
10、根据权利要求9的疫苗，其中所述病原体是淋病萘瑟氏菌、沙眼衣菌、突变链球菌、结核分枝杆菌、麻风分枝杆菌、肺炎链球菌、化脓性链球菌、钯密螺旋体、Neisseria  maningitidis、肺炎分枝支原体、流感嗜血杆菌、百日咳博德特氏菌、禽类博德特氏菌、大肠杆菌或等链球菌。
11、一种用于脊椎动物或非脊椎动物宿主蛋白质合成的载体微生物，它包括一种病原微生物的无毒衍生物，所述衍生物基本上不能产生功能性腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质，但能够表达由脊椎动物宿主分离得到的重组基因，从而得到一种能够在所述脊椎动物或非脊椎动物中抑制、调节或增强免疫应答的产物。
12、根据权利要求11的微生物，其中所述的载体微生物是一种细菌。
13、根据权利要求11或12中的微生物，其中所述的细菌是沙门氏菌属或沙门氏菌-大肠杆菌杂种，而且该细菌是寄宿于所述脊椎动物的淋巴上皮结构或感染所述的非脊椎动物。
14、根据权利要求13的微生物，其中所述的细菌是鼠伤寒沙门氏菌。
15、一种激活脊椎动物或非脊椎动物中免疫系统的方法，该方法包括下列步骤：
向所说的脊椎动物或非脊椎动物施用权利要求1到10中任一项中的疫苗。
16、一种激活、调节脊椎动物或非脊椎动物免疫系统或使其脱敏的方法，它包括下列步骤：
向所说的脊椎动物或非脊椎动物施用权利要求1到10中的任一项所述的疫苗。
17、一种制备病原微生物的无毒衍生物的方法，所说的衍生物基本上不能产生功能性腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白质，该方法包括通过DNA重组技术或转座子诱变使病原微生物发生突变，即使腺苷酸环化酶和环化AMP受体蛋白的基因形成缺失突变，并将所说的衍生物进行分离。
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ZA (1) ZA883954B (zh)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102140430A (zh) * 2011-01-13 2011-08-03 河南科技大学 一种不含抗性标记的鼠伤寒沙门氏菌基因缺失突变菌株、疫苗及应用
CN105602924A (zh) * 2009-03-23 2016-05-25 巴斯德研究院 适合将免疫原性分子递送到细胞中的突变CyaA多肽及多肽衍生物

Families Citing this family (89)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH04504656A (ja) * 1989-03-31 1992-08-20 ワシントン ユニバーシティー ボルデテラワクチン
CA2094718A1 (en) * 1990-10-25 1992-04-26 Anthony J. Radford Corynebacteria and related organisms as vaccine vectors
US5637303A (en) * 1990-10-25 1997-06-10 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Use of a phospholipase D mutant of Corynebacterium pseudotuberculosis for vaccination
ATE234917T1 (de) * 1990-11-09 2003-04-15 Univ Washington Avirulente salmonella mikroben mit einer mutation in dem cdt gen und ihre verwendung
US5599537A (en) * 1990-12-18 1997-02-04 The General Hospital Corporation Salmonella virulence genes
US5843426A (en) * 1990-12-18 1998-12-01 The General Hospital Corporation Salmonella vaccines
US6793927B1 (en) 1993-12-06 2004-09-21 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Agriculture Construction of Pasteurella haemolytica vaccines
US5587305A (en) * 1993-12-06 1996-12-24 The United States Of America As Represented By The Department Of Agriculture Pasteurella haemolytica transformants
US5922583A (en) * 1995-10-17 1999-07-13 Biostar Inc. Methods for production of recombinant plasmids
US5925354A (en) * 1995-11-30 1999-07-20 Michigan State University Riboflavin mutants as vaccines against Actinobacillus pleuropneumoniae
US20030202980A1 (en) * 1995-12-29 2003-10-30 Caplan Michael J. Methods and reagents for decreasing clinical reaction to allergy
ZA97452B (en) * 1996-01-25 1997-08-15 Trinity College Dublin Streptococcus equi vaccine.
GB9615022D0 (en) * 1996-07-17 1996-09-04 Mini Agriculture & Fisheries Vaccine preparations
US6020144A (en) * 1996-09-12 2000-02-01 Symbiontics, Inc. Sustained delivery device comprising a Leishmania protozoa and methods of making and using the same
CA2243730C (en) * 1997-07-29 2009-12-22 Akzo Nobel N.V. Streptococcus equi vaccine
JP2001519162A (ja) 1997-10-07 2001-10-23 ユニバーシティ・オブ・メリーランド・バイオテクノロジー・インスティチュート 動物細胞にｒｎａを導入して発現させる方法
US6024961A (en) 1997-11-14 2000-02-15 Washington University Recombinant avirulent immunogenic S typhi having rpos positive phenotype
DE69940805D1 (de) 1998-01-31 2009-06-10 Sinai School Medicine Verfahren und reagenzien zur verminderung der klinischen reaktion zur allergie
US7879977B2 (en) 1998-01-31 2011-02-01 University Of Arkansas Methods and reagents for decreasing clinical reaction to allergy
MXPA00008352A (es) 1998-02-27 2002-10-17 Univ Pennsylvania Vacunas, composiciones inmunoterapeuticas y metodos para usar las mismas.
US6713073B1 (en) * 1998-07-24 2004-03-30 Megan Health, Inc. Method of vaccination of newly hatched poultry
WO2000034498A1 (en) * 1998-12-04 2000-06-15 University Of Manitoba Two-step immunization procedure against chlamydia infection
IL144845A0 (en) * 1999-03-03 2002-06-30 Univ Pennsylvania Vaccines and gene therapy compositions and methods of making and using the same
EP1171577A2 (en) * 1999-04-09 2002-01-16 PHARMACIA & UPJOHN COMPANY Anti-bacterial vaccine compositions
US6790950B2 (en) * 1999-04-09 2004-09-14 Pharmacia & Upjohn Company Anti-bacterial vaccine compositions
CN1196495C (zh) 1999-04-30 2005-04-13 宾夕法尼亚大学理事会 突变的人cd80及其制备和应用组合物和方法
US8246945B2 (en) 2000-04-06 2012-08-21 University Of Arkansas Methods and reagents for decreasing clinical reaction to allergy
CA2403292C (en) * 2000-04-06 2011-02-08 Panacea Pharmaceuticals, Llc Microbial delivery system
US20050063994A1 (en) * 2000-04-06 2005-03-24 Caplan Michael J. Methods and reagents for decreasing clinical reaction to allergy
US6780405B1 (en) 2000-04-28 2004-08-24 Avant Immunotherapeutics, Inc. Regulated antigen delivery system (RADS)
CN1312171C (zh) * 2000-07-14 2007-04-25 宾夕法尼亚州立大学托管会 可编码hiv辅助蛋白的dna疫苗
WO2002029088A2 (en) * 2000-10-04 2002-04-11 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Highly expressible genes
US6872547B1 (en) 2000-10-11 2005-03-29 Washington University Functional balanced-lethal host-vector systems
US20040137003A1 (en) * 2001-04-30 2004-07-15 Curtiss Iii Roy Regulated antigen delivery system (rads)
EP1499191B1 (en) 2002-04-15 2012-05-09 Washington University in St. Louis Regulated attenuation of live vaccines to enhance cross protective immunogenicity
US8008265B2 (en) 2003-06-13 2011-08-30 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Vaccines, immunotherapeutics and methods for using the same
NZ570709A (en) 2003-06-13 2010-04-30 Univ Pennsylvania Nucleic acid sequences encoding and compositions comprising IgE signal peptide and/or IL-15 and methods for using the same
US20070087013A1 (en) * 2003-12-09 2007-04-19 Donata Sizemore Orally-administered live bacterial vaccines for plague
US20080274140A1 (en) * 2004-11-19 2008-11-06 David B Weiner Vaccines and Methods for Using the Same
CA2636867C (en) * 2006-01-13 2015-12-01 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Vaccines and immunotherapeutics using codon optimized il-15 and methods for using the same
EP1981905B1 (en) 2006-01-16 2016-08-31 THE GOVERNMENT OF THE UNITED STATES OF AMERICA as represented by THE SECRETARY OF THE DEPARTMENT OF HEALTH AND HUMAN SERVICES Chlamydia vaccine
WO2007106073A2 (en) 2006-03-02 2007-09-20 University Of Massachusetts Modified pathogens for use as vaccines
KR101710981B1 (ko) 2006-07-28 2017-02-28 더 트러스티스 오브 더 유니버시티 오브 펜실바니아 개선된 백신 및 이의 사용 방법
US20080124355A1 (en) 2006-09-22 2008-05-29 David Gordon Bermudes Live bacterial vaccines for viral infection prophylaxis or treatment
WO2009025888A2 (en) 2007-05-10 2009-02-26 The Arizona Board Of Regents For And On Behalf Of Arizona State University Regulated synthesis of antigen and/or regulated attentuation to enhance vaccine immunogenics and/or safety
US20100317084A1 (en) * 2007-05-10 2010-12-16 The Arizona Board Of Regents For And On Behalf Of Arizona State University Recombinant bacteria comprising vectors for expression of nucleic acid sequences encoding antigens
WO2009046451A1 (en) 2007-10-05 2009-04-09 The Arizona Board Of Regents For And On Behalf Of Arizona State University Recombinant bacterium capable of eliciting a protective immune response against c. perfringens
WO2009124312A2 (en) * 2008-04-04 2009-10-08 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Consensus sequences of chikungunya viral proteins, nucleic acid molecules encoding the same, and compositions and methods for using the same
AU2009231598B2 (en) 2008-04-04 2015-03-12 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Vaccines and immunotherapeutics using IL-28 and compositions and methods of using the same
US8647642B2 (en) 2008-09-18 2014-02-11 Aviex Technologies, Llc Live bacterial vaccines resistant to carbon dioxide (CO2), acidic PH and/or osmolarity for viral infection prophylaxis or treatment
WO2010045620A1 (en) 2008-10-17 2010-04-22 The Arizona Board Of Regents For And On Behalf Of Arizona State University Recombinant bacterium capable of eliciting an immune response against streptococcus pneumoniae
US8921536B2 (en) 2008-10-29 2014-12-30 The Trustees Of The University Of Pennsylvania HCV vaccines and methods for using the same
US8829174B2 (en) 2008-10-29 2014-09-09 The Trustees Of The University Of Pennsylvania HCV vaccines and methods for using the same
CA2653478A1 (en) 2009-01-23 2010-07-23 Gregg Martin Automated wash system for industrial vehicles
US9050287B2 (en) 2009-01-23 2015-06-09 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Vaccines for human papilloma virus and methods for using the same
US9163219B2 (en) 2009-04-14 2015-10-20 Arizona Board Of Regents On Behalf Of Arizona State University Single expression vector for generation of a virus with a segmented genome
GB2483595B (en) 2009-05-22 2017-03-29 The Arizona Board Of Regents For And On Behalf Of Arizona State Univ Recombinant bacterium and methods of antigen and nucleic acid delivery
US9045742B2 (en) 2009-05-29 2015-06-02 The Arizona Board Of Regents For And On Behalf Of Arizona State University Recombinant Edwardsiella bacterium
WO2011032179A1 (en) 2009-09-14 2011-03-17 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Vaccines and immunotherapeutics comprising il-15 receptor alpha and/or nucleic acid molecules encoding the same, and methods for using the same
KR101965337B1 (ko) 2009-11-02 2019-04-03 더 트러스티스 오브 더 유니버시티 오브 펜실바니아 구제역 바이러스(ｆｍｄｖ) 공통 단백질, 이를 위한 코딩 서열 및 이로부터 만들어진 백신
US9062297B2 (en) 2010-01-13 2015-06-23 The Arizona Board Of Regents For And On Behalf Of Arizona State University Yersinia pestis vaccine
EP2526185A4 (en) 2010-01-22 2013-07-24 Univ Arizona BACTERIUM WITH REGULATED RFAH NUCLEIC ACID
US8298820B2 (en) 2010-01-26 2012-10-30 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Influenza nucleic acid molecules and vaccines made therefrom
WO2011097640A1 (en) 2010-02-08 2011-08-11 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Nucleic acid molecules encoding rantes, and compositions comprising and methods of using the same
US9598697B2 (en) 2010-05-28 2017-03-21 The Arizona Board Of Regents For And On Behalf Of Arizona State University Recombinant bacterium to decrease tumor growth
US9255283B2 (en) 2010-07-02 2016-02-09 The Arizona Board Of Regents For And On Behalf Of Arizona State University Compositions and methods for bacterial lysis and neutral lipid production
BRPI1003750A2 (pt) 2010-07-22 2012-04-10 Univ Sao Paulo microrganismos recombinantes, métodos de preparação de linhagens vacinais, antìgenos, composições vacinais vetorizadas, seus usos, anticorpos, kit de diagnóstico e métodos de tratamento e/ou profilaxia
SI3536703T1 (sl) 2010-11-12 2022-04-29 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Konsenzni prostatični antigeni, molekule nukleinske kisline, ki jih kodirajo in uporabe le-teh
JP6099573B2 (ja) 2011-01-31 2017-03-22 ザ トラスティーズ オブ ザ ユニバーシティ オブ ペンシルバニア 新規なヘルペス抗原をコードする核酸分子、それを含むワクチン及びその使用方法
WO2012109668A1 (en) 2011-02-11 2012-08-16 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Nucleic acid molecule encoding hepatitis b virus core protein and vaccine comprising the same
US9238679B2 (en) 2011-02-11 2016-01-19 The Trustees Of The University Of Pennslyvania Nucleic acid molecule encoding hepatitis B virus core protein and surface antigen protein and vaccine comprising the same
WO2012123269A1 (en) 2011-03-11 2012-09-20 Proyecto De Biomedicina Cima, S.L. Immunogenic compositions and methods for their use
US9446114B2 (en) 2011-07-11 2016-09-20 Inovio Pharmaceuticals, Inc. Cross-protective arenavirus vaccines and their method of use
WO2013055326A2 (en) 2011-10-12 2013-04-18 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Vaccines for human papilloma virus and methods for using the same
CA2851336C (en) 2011-10-24 2021-01-12 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Improved hcv vaccines and methods for using the same
JP6407028B2 (ja) 2011-12-12 2018-10-17 ザ トラスティーズ オブ ザ ユニバーシティ オブ ペンシルバニア ＭＲＳＡのＰＢＰ２ａ及びその断片を含むタンパク質、それをコードする核酸、並びにＭＲＳＡ感染を予防する及び治療するための組成物及びそれらの使用
KR20220132652A (ko) 2011-12-12 2022-09-30 더 트러스티스 오브 더 유니버시티 오브 펜실바니아 개선된 il-12 유전적 컨스트럭트 및 백신을 포함하는 조성물, 면역치료제 및 이를 이용하는 방법
KR20140146651A (ko) 2012-04-10 2014-12-26 더 트러스티스 오브 더 유니버시티 오브 펜실바니아 인간 호흡기 합포체 바이러스 공통 항원, 핵산 컨스트럭트 및 이들로부터 제조된 백신, 및 이들을 사용하는 방법
US9303264B2 (en) 2012-05-18 2016-04-05 The Arizona Board Of Regents For And On Behalf Of Arizona State University Photosynthetic microorganisms expressing thermostable lipase
KR101381793B1 (ko) 2013-02-27 2014-04-07 씨제이제일제당 (주) 신규 박테리오파지 및 이를 포함하는 항균 조성물
EP3586870A1 (en) 2013-03-12 2020-01-01 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Improved vaccines for human papilloma virus and methods for using the same
KR102276405B1 (ko) 2013-03-15 2021-07-12 더 트러스티스 오브 더 유니버시티 오브 펜실베니아 구제역 바이러스 (fmdv) 공통 단백질, 그에 대한 코딩 서열 및 그로부터 제조된 백신
KR20150130284A (ko) 2013-03-15 2015-11-23 더 트러스티스 오브 더 유니버시티 오브 펜실바니아 암 백신 및 이를 이용한 치료 방법
US9580718B2 (en) 2013-06-17 2017-02-28 Arizona Board Of Regents On Behalf Of Arizona State University Attenuated live bacteria with increased acid resistance and methods of use thereof
US11129906B1 (en) 2016-12-07 2021-09-28 David Gordon Bermudes Chimeric protein toxins for expression by therapeutic bacteria
US11180535B1 (en) 2016-12-07 2021-11-23 David Gordon Bermudes Saccharide binding, tumor penetration, and cytotoxic antitumor chimeric peptides from therapeutic bacteria
JP7441169B2 (ja) 2017-12-13 2024-02-29 イノビオ ファーマシューティカルズ，インコーポレイティド Ｍｕｃ１６を標的とするがんワクチンおよびその使用
JP7352547B2 (ja) 2017-12-13 2023-09-28 イノビオ ファーマシューティカルズ，インコーポレイティド メソセリンを標的とするがんワクチンおよびその使用
BR112020011443A2 (pt) 2017-12-13 2020-12-01 Inovio Pharmaceuticals, Inc. molécula de ácido nucleico e seu uso, vetor e seu uso, composição, proteína e vacina

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3239749A (en) 1964-07-06 1966-03-08 Gen Electric Transformer system
US3975517A (en) 1972-05-25 1976-08-17 Canadian Patents And Development Limited Enteric disease vaccine
US3931398A (en) 1973-06-20 1976-01-06 Colgate-Palmolive Company Method for local immunization against dental caries
US4203971A (en) 1978-03-23 1980-05-20 Government Of The United States Neisseria gonorrhoeae vaccine
US4250262A (en) 1979-12-14 1981-02-10 Forsyth Dental Infirmary For Children Method of preparing a purified glucosyltransferase
US4550081A (en) 1980-05-19 1985-10-29 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Jr. University Non-reverting salmonella
US4735801A (en) * 1982-09-07 1988-04-05 Board Of Trustees Of Leland Stanford Jr. University Novel non-reverting salmonella live vaccines
US4888170A (en) * 1981-10-22 1989-12-19 Research Corporation Vaccines obtained from antigenic gene products of recombinant genes
CA1338705C (en) * 1981-10-22 1996-11-12 Roy Curtiss Iii Vaccines obtained from antigenic gene products of recombinant genes
GB8314645D0 (en) * 1983-05-26 1983-06-29 Wellcome Found Bivalent vaccines

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN105602924A (zh) * 2009-03-23 2016-05-25 巴斯德研究院 适合将免疫原性分子递送到细胞中的突变CyaA多肽及多肽衍生物
CN102140430A (zh) * 2011-01-13 2011-08-03 河南科技大学 一种不含抗性标记的鼠伤寒沙门氏菌基因缺失突变菌株、疫苗及应用
CN102140430B (zh) * 2011-01-13 2013-10-23 河南科技大学 一种不含抗性标记的鼠伤寒沙门氏菌基因缺失突变菌株、疫苗及应用

Also Published As

Publication number Publication date
IL86583A0 (en) 1988-11-15
JP2640525B2 (ja) 1997-08-13
DK52789A (da) 1989-02-03
US5389368A (en) 1995-02-14
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DE3886506D1 (de) 1994-02-03
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KR0139950B1 (ko) 1998-06-01
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AU623599B2 (en) 1992-05-21
IE881646L (en) 1988-12-04
DK52789D0 (da) 1989-02-03
IE63905B1 (en) 1995-06-14
WO1988009669A1 (en) 1988-12-15
DK175512B1 (da) 2004-11-15
JPH01503442A (ja) 1989-11-22
ZA883954B (en) 1989-02-22
EP0315682B1 (en) 1993-12-22
KR890701125A (ko) 1989-12-19
EP0315682A1 (en) 1989-05-17
ATE98870T1 (de) 1994-01-15
DE3886506T2 (de) 1994-05-19

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